DNS法測定酶活實驗方法總結及優(yōu)化方案

1、dns法測定酶活實驗方法總結及優(yōu)化方案目前纖維素酶沒有統(tǒng)一的測定方法，諸多因素影響纖維素酶酶活測定大小的比較。選擇適宜的酶活測定條件，提高測定結果的準確性，可根據有關資料中采用的測定條件，以及通過控制變量法對酶活力測定中的主要影響因素進行研究。目前實驗室采用測酶活方法：1、葡萄糖標準曲線制作：試管號1234561mg/ml葡萄糖標準液/ml00.10.20.30.40.5蒸餾水量/ml0.50.40.30.20.10葡萄糖濃度/mg/ml00.20.40.60.81ph4.8磷酸氫二鈉-檸檬酸/ml1.51.51.51.51.51.5dns試劑/ml333333沸水浴7min后快速冷卻加入蒸餾

2、水/ml555555530nm比色。2、酶活測定方法：管號空白管0樣品管1樣品管2酶液/ml0.50.50.5沸水滅活10min1%cmc-na/ml1.51.51.545下反應30min，沸水滅活10mindns試劑/ml333沸水浴中7min顯色快速冷卻后蒸餾水/ml555考慮到酶液中培養(yǎng)基成分會對吸光值造成一定的影響，所以空白管0還是采用先將酶高溫滅活的方法，后面保持實驗條件一致，顯色時間與標準曲線的顯色時間保持一致。單位酶活的計算： n：稀釋倍數；k：曲線斜率；t：反應時間，min；1000：mg換算成ug.以下是近期所做的實驗結果：葡萄糖標準曲線兩種產纖維素酶細菌不同測試結果濃度mg

3、/ml吸光值總酶活（10ml）單位酶活濃度mg/ml吸光值總酶活（10ml）單位酶活r2上清（未破碎）0.2290.12566776.457727.645772183上清（未破碎）0.4020.22133.851713.385170.2390.13066779.49987.949980.4050.222135.068513.50685r2破碎（無緩沖未離心）0.4260.233333141.963914.19639183破碎（無緩沖未離心）0.43833330.24146.0214.6020.3840.21128.37612.83760.45466660.249151.495815.14958

4、r2破碎（無緩沖取上清）0.3070.167667102.011210.20112183破碎（無緩沖取上清）0.4270.234142.369514.236950.3120.170667103.836510.383650.4430.243147.845314.78453r2破碎（1：1緩沖取上清）0.21566660.11871.793197.179319183破碎（1：1緩沖取上清）0.2090.11569.967946.9967940.25166660.13883.961528.3961520.16166660.08954.14915.41491測定結果實驗結論：從以上幾種對酶液的處理方法來看，183的酶活要比r2高，兩種菌都是以胞外酶為主。目前尚沒找到有關于加緩沖溶液并且超聲破碎的文獻，所得測量結果與前面三種方法均不符，這一步需另外探索。根據纖維素酶活力測定條件研究（夏服寶等，飼料工業(yè)2005年第26卷第16期）和影響纖維素酶活力測定的幾個因素（劉妙蓮等，中國