細(xì)胞轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)_第1頁(yè)
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1、精選優(yōu)質(zhì)文檔-傾情為你奉上細(xì)胞轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)1實(shí)驗(yàn)?zāi)康膶W(xué)習(xí)和掌握外源基因?qū)胝婧思?xì)胞的主要方法脂質(zhì)體介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染。了解外源基因進(jìn)入的一般性方法,觀(guān)測(cè)外源蛋白的表達(dá)(綠色熒光蛋白),為染色準(zhǔn)備實(shí)驗(yàn)材料。2實(shí)驗(yàn)原理Transfect上圖所示是脂質(zhì)體介導(dǎo)轉(zhuǎn)染的示意圖,它顯示了外源質(zhì)粒進(jìn)入細(xì)胞的一般過(guò)程。外源基因進(jìn)入細(xì)胞主要有四種方法:電擊法、磷酸鈣法和脂質(zhì)體介導(dǎo)法和病毒介導(dǎo)法。電擊法是在細(xì)胞上短時(shí)間暫時(shí)性的穿孔讓外源質(zhì)粒進(jìn)入;磷酸鈣法和脂質(zhì)體法是利用不同的載體物質(zhì)攜帶質(zhì)粒通過(guò)直接穿膜或者膜融合的方法使得外源基因進(jìn)入細(xì)胞;病毒法是利用包裝了外源基因的病毒感染細(xì)胞的方法使得其進(jìn)入細(xì)胞。但是由于電擊法和磷酸鈣法的

2、實(shí)驗(yàn)條件控制較嚴(yán)、難度較大;病毒法的前期準(zhǔn)備較復(fù)雜、而且可能對(duì)于細(xì)胞有較大影響;所以現(xiàn)在對(duì)于很多普通細(xì)胞系,一般的瞬時(shí)轉(zhuǎn)染方法多采用脂質(zhì)體法。利用脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法最重要的就是防止其毒性,因此脂質(zhì)體與質(zhì)粒的比例,細(xì)胞密度以及轉(zhuǎn)染的時(shí)間長(zhǎng)短和培養(yǎng)基中血清的含量都是影響轉(zhuǎn)染效率的重要問(wèn)題,通過(guò)實(shí)驗(yàn)摸索的合適轉(zhuǎn)染條件對(duì)于效率的提高有巨大的作用。上圖是本次實(shí)驗(yàn)采用的脂質(zhì)體中陽(yáng)離子組分的結(jié)構(gòu)的示意圖。本次實(shí)驗(yàn)采用的脂質(zhì)體是promega公司的TransFast脂質(zhì)體試劑,它是一種陽(yáng)離子脂質(zhì)體和中性脂質(zhì)體的混合物,是對(duì)于本次實(shí)驗(yàn)中采用的293T細(xì)胞優(yōu)化的轉(zhuǎn)染試劑。3. 實(shí)驗(yàn)材料與器材1)材料293T細(xì)胞MyoD

3、表達(dá)質(zhì)粒和EGFP表達(dá)質(zhì)粒DMEM培養(yǎng)基鏈霉素/青霉素(雙抗)FCS(小牛血清)PBS(磷酸鹽緩沖溶液)胰酶/EDTA消化液轉(zhuǎn)染試劑(TransFast)2)器材20ul/200ul/1ml微量移液器和Tip頭酒精燈廢液缸血球計(jì)數(shù)板渦旋振蕩器恒溫水浴箱臺(tái)式離心機(jī)35mm培養(yǎng)皿轉(zhuǎn)染管15ml離心管觀(guān)察用倒置顯微鏡熒光顯微鏡和CCD4. 實(shí)驗(yàn)步驟細(xì)胞傳代(1) 試驗(yàn)準(zhǔn)備:200ul/1mlTip頭各一盒(以上物品均需高壓滅菌),酒精棉球,廢液缸,試管架,微量移液器,記號(hào)筆,培養(yǎng)皿,離心管。(2) 棄掉培養(yǎng)皿中的培養(yǎng)基,用1ml的PBS溶液洗滌兩次。(3) 用Tip頭加入1ml Trypsin液,消

4、化1分鐘(37。C,5%CO2 )。用手輕拍培養(yǎng)瓶壁,觀(guān)察到細(xì)胞完全從壁上脫落下來(lái)為止。(4) 加入1ml的含血清培養(yǎng)基終止反應(yīng)。(5) 用Tip頭多次吹吸,使細(xì)胞完全分散開(kāi)。(6) 將培養(yǎng)液裝入離心管中,1000rpm離心5min。(7) 用培養(yǎng)液重懸細(xì)胞,細(xì)胞計(jì)數(shù)后選擇0.8X106個(gè)細(xì)胞加入一個(gè)35mm培養(yǎng)皿。(8) 將合適體積完全培養(yǎng)液加入離心管中,混勻細(xì)胞后輕輕加入培養(yǎng)皿中,使其均勻分布。(9) 將培養(yǎng)皿轉(zhuǎn)入CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),第二天轉(zhuǎn)染。細(xì)胞轉(zhuǎn)染1)轉(zhuǎn)染試劑的準(zhǔn)備 A. 將400ul去核酸酶水加入管中,震蕩10秒鐘,溶解脂狀物。 B.震蕩后將試劑放在20攝氏度保存,使用前還需震蕩,。2) 選擇合適的混合比例(1:11:2/脂質(zhì)體體積:DNA質(zhì)量)來(lái)轉(zhuǎn)染細(xì)胞。在一個(gè)轉(zhuǎn)染管中加入合適體積的無(wú)血清培養(yǎng)基。加入合適質(zhì)量的MyoD或者EGFP的DNA,震蕩后在加入合適體積的轉(zhuǎn)染試劑,再次震蕩。5) 將混合液在室溫放置1015分鐘。6) 吸去培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基,用PBS或者無(wú)血清培養(yǎng)基清洗一次。7) 加入混合液,將細(xì)胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個(gè)小時(shí)。8) 到時(shí)后,根據(jù)細(xì)胞種類(lèi)決定是否移除混合液,之后加入完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)2448小時(shí)。第二次細(xì)胞傳代1) 在轉(zhuǎn)染后24小時(shí),觀(guān)察實(shí)驗(yàn)結(jié)果并記錄綠色熒光蛋白表達(dá)情況。2) 再次進(jìn)行細(xì)胞傳代,按照免疫染色合適的密度0.8X105個(gè)細(xì)胞/35m

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