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文檔簡介
DBXX
陜西省市地方標(biāo)準(zhǔn)
DBXX/TXXX-20xx
獅猴桃無病毒種苗生產(chǎn)技術(shù)規(guī)程
Technicalcodefortheproductionofvirus-freekiwifruitstock
(征求意見稿)
20xx-xx-xx發(fā)布20xx-xx-xx實施
陜西省市場監(jiān)督管理局發(fā)布
前言
本標(biāo)準(zhǔn)依據(jù)GB/T1.1-2020《標(biāo)準(zhǔn)化工作導(dǎo)則第1部分:標(biāo)準(zhǔn)化文件的結(jié)構(gòu)和起草規(guī)則
》起草。
本標(biāo)準(zhǔn)由陜西省農(nóng)業(yè)農(nóng)村廳提出并歸口。
本標(biāo)準(zhǔn)起草單位:西北農(nóng)林科技大學(xué)、楊凌夢綠生態(tài)農(nóng)業(yè)有限責(zé)任公司。
本規(guī)程起草人:劉占德,張阿玲,史遐,劉艷飛,賀浩浩,高志雄。
本標(biāo)準(zhǔn)為首次發(fā)布。
1適用范圍
本標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定了林猴桃病毒脫除方法、病毒檢測方法、脫毒種苗保存與繁殖。
本標(biāo)準(zhǔn)適用于搟猴桃脫毒種苗繁育及狒猴桃病毒檢測。
2術(shù)語和定義
下列術(shù)語和定義適用于本標(biāo)準(zhǔn)。
2.1莖尖培養(yǎng)脫毒Viruseliminationbyshoottipculiure
切取0.2~0.5mm帶毒試管苗莖尖,經(jīng)組織培養(yǎng)獲得無病毒植株的過程。
2.2莖尖超低溫療法脫毒Viruseliminationbyshoottipcryotherapy
切取l.0~2.0mm帶毒試管苗莖尖,經(jīng)液氮處理后進行組織培養(yǎng)獲得無病毒植株的過程。
2.3熱療法結(jié)合莖尖培養(yǎng)脫毒Viruseliminationbyihermotherapycombinedwithshoottip
culture
先對帶毒試管苗進行熱處理,熱處理結(jié)束后取莖尖進行莖尖培養(yǎng)獲得無病毒植株的過
程。
2.4化療法結(jié)合莖尖培養(yǎng)脫毒Viruseliminationbychemotherapycombinedwithshoottip
culture
先將帶毒試管苗置于含抗病毒藥物的培養(yǎng)基中培養(yǎng),培養(yǎng)結(jié)束后取莖尖進行莖尖培養(yǎng)
獲得無病毒植株的過程。
2.5熱療法結(jié)合莖尖超低溫療法脫毒Viruseliminationbytherniotherapycombinedwithshoot
tipcryotherapy
先對帶毒試管苗進行熱處理,熱處理結(jié)束后取莖尖進行超低溫處理,最后經(jīng)組織培養(yǎng)
獲得無病毒植株的過程。
2.6化療法結(jié)合莖尖超低溫療法脫毒Viruseliminationbychemotherapycombinedwithshoot
lipcryotherapy
先將帶毒試管苗置于含抗病毒藥物的培養(yǎng)基中培養(yǎng),培養(yǎng)結(jié)束后取莖尖進行超低溫處
理,最后經(jīng)組織培養(yǎng)獲得無病毒植株的過程。
2.7化療法結(jié)合熱療法和莖尖培養(yǎng)脫毒Viruseliminationbychemotherapycombined
withtherniotherapyandshoottipculture
先將帶毒試管苗置于含抗病毒藥物的培養(yǎng)基中培養(yǎng),之后進行熱處理,熱處理結(jié)束后
取莖尖進行組織培養(yǎng)獲得無病毒植株的過程。
2.8熱療法結(jié)合化療法和莖尖超低溫療法脫毒Viruseliminalionbyihennotherapycombined
withchemotherapyandshootlipcryoihcrapy
先將帶毒試管苗置于含抗病毒藥物的培養(yǎng)基中培養(yǎng),之后進行熱處理,熱處理結(jié)束后
再取莖尖進行超低溫處理,最后經(jīng)組織培養(yǎng)獲得無病毒植株的過程。
2.9無病毒母株virus-freemotherplant
通過病毒脫除處理或直接篩選獲得的、經(jīng)檢測并確認(rèn)不攜帶本文件規(guī)定的病毒的植株。
2.10無病毒苗木virusfreeseedling
未攜帶有本文件規(guī)定的病毒的猿猴桃苗木。
2.11無病毒母本園virus-freemotherblock
用于提供猾猴桃無病毒母株保存的闞地。
3脫毒原理
病毒在植物體內(nèi)分布不均勻,植物莖尖頂端分生組織中的病毒含量較低甚至不含病毒,
熱處埋及抗病毒約物處埋能夠抑制病毒RNA的合成,因此用通過莖尖培養(yǎng),或結(jié)合熱療
及化療對植物病毒進行脫除:在莖尖超低溫療法脫除植物病毒中,莖尖經(jīng)過冷凍保護處理
后轉(zhuǎn)入液氮中冷凍時,分化程度較低、核質(zhì)比大、自由水含量較低的莖尖頂端分生組織和
幼嫩葉原基細胞更容易存活。由于很多病毒無法侵入莖尖頂端分生組織,因此無病毒的頂
端分生組織可以在液氮冷凍后存活并再生為無病毒植株。
4病毒檢測與脫除
4.1病毒種類
病毒種類見表A.lo包括狒猴桃病毒A(ActinidiavirusA,AcVA)、舜猴桃病毒B
(ActinidiavirusB,AcVB)、物猴桃種傳潛隱病毒(Actinidiaseedbomelatentvirus,
ASbLV)>物猴桃黃化環(huán)斑病毒(.Actinidiayellowingringspotvirus,AYRSpV)、舜猴桃
病毒1{Actinidiavirus1,AcV-l)、梆猴桃黃化病毒1(.Actinidiayellowingvirus1,
AcYVl)、舜猴桃黃化病毒2(Aainidiayellowingvirus2,AcYV2)、蘋果莖溝病毒
(Applestemgroovingvirus.ASGV)、櫻桃卷葉病毒(CherrjLeafRollvirus*CLRV)、
天竺葵帶斑病毒(Pelargoniumzonatespotvirus?PZSV)、柑橘葉斑駁病毒(Citrusleaf
blotchvirus.CLBV)等。
4.2病毒檢測
采用RT-PCR的方法進行病毒檢測。具體參見附錄A。
4.3貓猴桃無病毒母株的獲取
4.3.1材料選擇
選擇品種純正、經(jīng)觀察未發(fā)現(xiàn)病毒病癥狀且生長健壯、性狀優(yōu)良的植株,參照4.2的
方法進行病毒檢測,確定不攜帶4.1規(guī)定的病毒的可作為無病毒母株:經(jīng)檢測,確定植株
已感染4.1規(guī)定的病毒,則應(yīng)進行脫毒處理,病毒脫除后培育的凍猴桃植株,經(jīng)檢測為無
病毒的,也可作為無病毒母株。
4.3.2外植體的建立
選取健壯驕猴桃植株當(dāng)年生新梢作為外植體,剪去葉片,用自來水和洗潔精溶液充分
清洗干凈。將枝條剪成長3~5cm的莖段,于超凈臺內(nèi)用75%酒精表面消毒10~305,再用
1%的次氯酸鈉溶液消毒570min,最后用無菌水沖洗4~5次。將消毒后的外植體切成長
1.5cm的帶芽莖段,用無菌濾紙吸干其表面的水分后,接種至初分化培養(yǎng)基中,誘導(dǎo)莖段
腋芽萌發(fā)。4周后萌發(fā)的腋芽切下,置于增殖培養(yǎng)基中進行繼代培養(yǎng),每4?6周繼代一次。
培養(yǎng)溫度24"C±2℃,光照強度3(XX)lx,光照時間16h/d。
4.3.3病毒的脫除
4.33.1莖尖培養(yǎng)脫毒
以4~6周苗齡的凍猴桃?guī)Ф驹嚬苊鐬椴牧?,于超凈工作臺中在體式顯微鏡下切取
0.2~0.5mm的莖尖,將其轉(zhuǎn)接至含增殖培養(yǎng)基的培養(yǎng)皿中培養(yǎng),每4周繼代一次。當(dāng)莖尖
長成小植株時轉(zhuǎn)至含增殖培養(yǎng)基的組培瓶中繼續(xù)培養(yǎng)。
433.2莖尖超低溫療法脫毒
以4~6周苗齡的驕猴桃?guī)Ф驹嚬苊鐬椴牧?,于超凈工作臺中在體式顯微鏡下切取
l.0~2.0mm的莖尖。先將莖尖置于0.25M蔗糖溶液中預(yù)培養(yǎng)24h;后轉(zhuǎn)置于0.5M蔗糖溶
液中預(yù)培養(yǎng)24h;預(yù)培養(yǎng)結(jié)束后,將莖尖轉(zhuǎn)置于加我液中室溫下處理20min;加我完成后,
符莖尖轉(zhuǎn)置于提前預(yù)冷的玻璃化冷凍保護液PVS2中冰上處理20?60min。PVS2處理結(jié)束
前兩分鐘,將莖尖轉(zhuǎn)移至滅菌鋁箔條上的PVS2液滴中,后將鋁箔條置于液氮中處理1h?
液氮處理完畢后將帶有莖尖的鋁箔條從液氮中取出,迅速放入卸載液中解凍20min:卸載
完成后,將莖尖轉(zhuǎn)置至恢兔培養(yǎng)基中,先于24±2℃的溫度條件下黑暗培養(yǎng)"1?后轉(zhuǎn)入正
常光照F培養(yǎng),每4周繼代一次。莖尖超低溫療法脫除源猴桃病毒所用溶液配方參見附錄
B,脫毒流程參見附錄C。
4.333熱療法結(jié)合莖尖培養(yǎng)脫毒
以4~6周苗齡的凍猴桃?guī)Ф驹嚬苊鐬椴牧?,切取約2cm大小的莖段先于正常條件下培
2周,后轉(zhuǎn)至熱處理箱(溫度:30℃~40℃:光照強度:3000lx:光照時間:16h/d).熱
處理的方式主要有三種:對于耐熱品種,可采用恒溫處理;中等耐熱品種及熱敏感品種則
可采用變溫處理或逐步升溫處理。處理時間為2~4周。熱處理結(jié)束后切取0.2~0.5mm莖尖
進行莖尖培養(yǎng),方法同4.3.3.1。
43.3.4化療法結(jié)合莖尖培養(yǎng)脫毒
以4~6周苗齡的獅猴桃?guī)Ф驹嚬苊鐬椴牧?,取約2cm大小的莖段置于含15-100rng/L
利巴韋林的培養(yǎng)基中培養(yǎng)4~6周,后取5mm莖尖進行莖尖培養(yǎng),方法同433.1。
43.3.5熱療法結(jié)合莖尖超低溫療法脫毒
以4-6周苗齡的蛛猴桃?guī)Ф驹嚬苊鐬椴牧?,取約2cm大小的莖段先進行熱處理,方法
同433.3。熱療結(jié)束后切取1.0?2.0mm大小的莖尖進行超低溫處理,方法同4.332。
43.3.6化療法結(jié)合莖尖超低溫療法脫毒
以4~6周苗齡的舜猴桃?guī)Ф驹嚬苊鐬椴牧?,切取約2cm大小的莖段進行化療,方法同
433.4?;熃Y(jié)束后切取1.0~2.0mm大小的莖尖講行貂低溫處理,方法同4.332。
4.337化療法結(jié)合熱療法和莖尖培養(yǎng)脫毒
以4~6周苗齡的梆猴桃?guī)Ф驹嚬苊鐬椴牧?,切取約2cm大小的莖段接種至含15-100
mg/L利巴韋林的培養(yǎng)基中先于正常條件下培養(yǎng)2周,之后將其轉(zhuǎn)至熱處理箱繼續(xù)培養(yǎng)2?4
周,熱療和化療方法同4.333和4.3.3.4。熱療和化療結(jié)束后取0.2~0.5mm莖尖進行莖尖培
養(yǎng),方法同4.3.3.1。
4.338熱療法結(jié)合化療法和莖尖超低溫療法脫毒
以4-6周苗齡的掰猴桃?guī)У迷嚬苊鐬椴牧?,取約2cm大小的莖段先進行熱療和化療,
方法同4.337。熱療和化療結(jié)束后取1.0~2.0mm大小的莖尖進行超低溫處理,方法同
433.2。
4.4病毒脫除后莖尖再生與病毒檢測
經(jīng)脫毒處理的莖尖培養(yǎng)2個月后,出現(xiàn)明顯的莖段伸長(>5mm)并再生出2~3片新
葉時視為再生,隨后將再生莖尖轉(zhuǎn)接到增殖培養(yǎng)基上繼續(xù)培養(yǎng),大約培養(yǎng)I個月后,脫毒
處理再生苗出現(xiàn)分株,此時將來源于同一個莖尖的植株轉(zhuǎn)至同一個組培瓶中并編號.繼代
培養(yǎng)4~6周后取樣進行第一次病毒檢測。將檢測結(jié)果為陰性的植株繼續(xù)繼代培養(yǎng)4-6周后
取樣進行第二次病毒檢測,將兩次檢測結(jié)果均為陰性的試管苗初步定為脫毒苗。此后,每
4~6周繼代一次脫毒苗。
4.5生根培養(yǎng)
以不帶病毒的增殖苗為材料,切取約2cm大小的莖段轉(zhuǎn)接到生根培養(yǎng)基(1/2MS+
0.6mg^IBA,pH=5.8),在24±2C條件下,進行4周左右的生根培養(yǎng)。
4.6煉苗和移栽
從生根培養(yǎng)至幼根長至1cm左右時,將組培瓶移入日光溫室煉苗,遮陰3d不開瓶口,
擰松瓶口放置Id,將瓶口敞開2d,之后進行移栽,控制氣溫不超過30C,空氣相對濕度
在90%以上。
將經(jīng)過煉苗的組培苗洗凈培養(yǎng)基,移栽至基質(zhì)為珍珠巖:泥炭:細沙=1:1:1或發(fā)酵餅
肥:土壤:基質(zhì)1:1:1并用多菌靈消毒晾干后的營養(yǎng)缽(口徑x高為16cmx16cm),澆透
水,置于覆蓋60目防蟲網(wǎng)的溫網(wǎng)室內(nèi),在營養(yǎng)缽上覆蓋塑料薄膜,期間及時噴水以保持莖
葉濕潤,15d后揭去薄膜。
4.7無病毒苗移栽后病毒復(fù)檢
脫毒苗移栽半年后進行病毒更檢,若復(fù)檢結(jié)果為陰性,則可認(rèn)定為脫毒苗:若匏檢結(jié)
果為陽性,則該再生苗不是脫毒苗,需進行進一步的脫毒處理。此后每年至少做一次病毒
復(fù)檢,以防病毒再次感染。
5無病毒母本園的建立
5.1圃地準(zhǔn)備
圃地所在區(qū)域應(yīng)為非驕猴桃潰瘍病發(fā)生區(qū)與掰猴桃適栽區(qū)。選擇疏松肥沃、排水良好、
微酸性的砂質(zhì)壤土,且5年內(nèi)未栽植過果樹的地塊。
5.2無病毒母株的栽植
經(jīng)檢測確定不攜帶4.1規(guī)定的掰猴桃病毒,或經(jīng)4.3殊猴桃病毒脫除的植株可作為無病毒
母株按株行距為3mx4m定植在網(wǎng)室中。調(diào)查、分析并記錄每單株的園藝學(xué)性狀,待顯示
固有的園藝學(xué)性狀后,選做母本樹,提供無病毒接穗。
5.3無病毒母本園的管理
無病毒母本園常用工具須專用,枝剪、刀、鋸子等在操作每個植株之前均需用75%的
酒精消毒。此外,工作人員進出園圃也應(yīng)消毒,并嚴(yán)格執(zhí)行其池人員進出登記、安全檢疫
制度。
每月定期觀察周內(nèi)掰猴桃無病毒母株是否有病毒病癥狀,每年春梢萌發(fā)后10d進行病毒
檢測,經(jīng)檢測,淘汰不符合2.10定義的植株。
6無病毒苗木的繁育
6.1苗圃準(zhǔn)備
選擇疏松肥沃、排灌水方便、光照良好、冬春季無霜凍的地塊作為苗圃地;冬春季有
霜凍的區(qū)域,在溫室大棚建立苗圃。
6.2砧木準(zhǔn)備
選擇生長健康、無病蟲害的,參照4.2的方法檢測后不攜帶病毒或脫毒后莖粗達0.6
cm以上的舜猴桃砧木苗,嫁接前砧木苗摘心,并去除基部萌薇。
6.3接穗采集
取生長健壯、芽體飽滿、無病害的當(dāng)年生木質(zhì)化的舜猴桃無病毒母株枝條,掛牌標(biāo)記
母株編號。冬季剪下的接穗,應(yīng)立即放在陰涼處,用2%濕沙埋藏備用。
6.4嫁接
春、夏嫁接多采用單芽枝接,也可采用單芽枝腹接法或帶木質(zhì)芽接。
6.5嫁接后管理
6.5.1剪砧及抹除砧槃
嫁接后砧木接口下萌發(fā)的不定芽及時剪除.接芽失敗或風(fēng)折不能再萌發(fā)的.應(yīng)在砧木
是選留一個枝條,以備后期補接。采用單芽枝腹接法或帶木質(zhì)部芽接法的嫁接苗成活后應(yīng)
立即剪砧,剪口離接芽3?4cm,砧木上萌麋應(yīng)及時抹除。。
6.5.2解綁
接穗嫁接部位完全愈合,新梢半木質(zhì)化以后及時解去嫁接時的綁扎帶。為防止風(fēng)劈促
進接口愈合牢固,扎帶自上而下分兩次解除,每次一半,間隔兩周。
6.5.3立支柱及摘心
當(dāng)接芽K到20cm時,在嫁接苗的旁邊插竹竿作立柱,引縛護苗防風(fēng)劈,綁縛時使用
“oc”字形活結(jié)。新梢拉直吊端向上生長,不要纏繞生長。
6.5.4土、水、肥管理
經(jīng)常保持育苗地土壤濕潤,土壤相對濕度在70%~80%之間。有積水時要及時排出,
及時中耕除草,根據(jù)苗木長勢進行葉面噴肥或結(jié)合中耕除草、澆水等進行追肥,用尿素或
磷酸二氫鉀進行葉面施肥,濃度不得超過0.3%,土壤追肥每667m?每次施入尿素或磷酸二
氫鉀7.5~10kg,9月中旬停止施肥,促進苗木木質(zhì)化。
6.5.5摘心
在幼苗生長6~8片葉50-50cm時,應(yīng)及時摘心,以促進組織充實苗木粗壯。
7無病毒苗木出圃
苗木出圃前,定期觀察狒猴桃苗木形態(tài)特征,剔除有病毒病癥狀的植株。病毒脫除的
凍猴桃苗木出圃前,每批次應(yīng)進行1次病毒檢測,按照GB/T2828.10規(guī)定的方法進行抽檢。
若檢測出攜帶病毒,應(yīng)根據(jù)標(biāo)記,追蹤其母株并進行病毒檢泱!。若母株也攜帶病毒,則立
即清除該母株及其周邊臨近的植株;若母樹不帶病毒,則立即清除攜帶病毒的苗木及其周
邊臨近植株。無病毒苗木出圃應(yīng)滿足表1所規(guī)定的質(zhì)量要求。
表I驕猴桃無病毒苗木質(zhì)量
級別
項目
一級二級三級
品種與砧木純正。實生苗和嫁接苗砧木應(yīng)以抗性強的
品種與砧木
美味、對萼、大籽物猴桃為主。
側(cè)根形態(tài)側(cè)根沒有缺失和劈裂傷
側(cè)根分布均勻、舒展而不卷曲
根側(cè)根數(shù)量(條)>4
側(cè)根長度(cm)當(dāng)4B生苗N20.0,二年生苗230.0
側(cè)根粗度(cm)>0.5>0.4>0,3
直曲度(cm)<15.0
高度(cm)>60>50>40
粗度(cm)>1.0>0.8>0.6
苗
實生苗,飽滿芽數(shù)
干>5>4>3
(個)
嫁接苗品種部位,飽滿
>5>4>3
芽數(shù)(個)
皮層鮮活有光澤,無干縮皺皮,無新?lián)p傷,老損傷處
根皮與莖皮
總面積不超過1.0cm?
愈合良好。枝接要求接口部位砧穗粗細一致,沒有大
腳(砧木粗、接穗細)、小腳(砧木細、接硬粗)或
接合部愈合情況
嫁接部位四起臃腫現(xiàn)象:芽接要求接口愈合完整,沒
有空、翹現(xiàn)象。
木質(zhì)化程度完全木質(zhì)化
無根結(jié)線蟲、無蛤殼蟲、無潰瘍病、無疫霉病、無根
病蟲害
腐、無飛虱、無蛾類等。無國家規(guī)定的檢疫對象。
病毒檢測不攜帶4.1規(guī)定的病毒種類
8無病毒苗木的標(biāo)識與包裝
8.1標(biāo)識
搟猴桃無病毒母株標(biāo)簽應(yīng)包括品種、母株編號、病毒檢測單位、母株培育單位等信息。
舜猴桃無病毒苗木標(biāo)簽應(yīng)包括品種、等級、株數(shù)、病毒檢測單位、生產(chǎn)單位、地址等信息。
8.2包裝
搟猴桃無病毒苗木應(yīng)按照品種和等級分別包裝。包裝內(nèi)外應(yīng)附有苗木標(biāo)簽。
附錄A
(資料性附錄)
貓猴桃病毒檢測方法(RT-PCR法)
A.1適用范圍
本附錄提供的RT-PCR法適用于己知核酸序列的物猴桃病毒的檢測。
A.2儀器設(shè)備
恒溫水浴鍋;渦旋儀:高速冷凍離心機;-20C冰箱:超微量分光光度計;PCR儀:
電泳儀:凝膠成像儀。
A.3試劑
CTAB裂解液、隹磕基乙醇、液氮、氯仿、異戊醉、氯化鋰、無水乙醇、RNase-free水、
反轉(zhuǎn)錄試劑盒、PCR擴增試劑盒、核酸染料、TAE緩沖液。
A.4操作步驟
A.4.1總RNA提取
(I)于1.5mL無酶離心管中加入600HLeTAB裂解液和40蟹伊利基乙醇,65c預(yù)
熱;
(2)稱取0.1g待檢植株葉片樣品于液氮中迅速研磨至粉末狀,將粉末轉(zhuǎn)至a中的離
心管,渦旋混勻30s,65'C水溶10min,期間顛倒混勻2-3次:
(3)加入等體積的氯仿異戊醇混合液(V:V=24:1),顛倒混勻,4C條件下,11000
rpm離心10min:
(4)取500池上清液,加入等體枳的氯仿異戊醇混合液(V:V=24:l),顛倒混勻,4*C
條件下,11000rpm離心10min:
(5)取400RL上清液,加入二分之一體積的氯化液溶液(6M),顛倒混勻,-20°C
沉淀2-3h:
(6)4℃條件下,12000rpm離心10min,棄上清;
(7)加入500HL75%乙醇洗滌沉淀,4c條件下,12000rpm短暫離心30s,棄上清。
(8)加入500nL無水乙醇洗滌沉淀,4℃條件下,12000rpm短暫離心30s,棄上清
并吸除殘留液體,后將離心管倒扣晾干5min。
(9)加入3()pLRNase-free水溶解沉淀,檢測所提取總RNA的濃度、純度及完整性。
若總RNA質(zhì)量合格,則立即進行cDNA合成或置于-80C超低溫冰箱保存?zhèn)溆?;若?/p>
RNA質(zhì)量不合格,則需重新提取。
A.4.2cDNA合成
按照反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書進行操作。
A.4.3PCR擴增
A.4.3.1PCR反應(yīng)體系
PCR反應(yīng)液組成為:12.5piL2xTaqMix,IgLcDNA模板,上下游引物(lO^M)各1
卜(,無菌蒸譚水補足至終體積25pL。目標(biāo)病毒對應(yīng)的特異性檢測引物及擴增產(chǎn)物大小見
表A.1。
A.4.3.2PCR反應(yīng)程序
PCR擴增程序為:94℃預(yù)變性5min:94c變性30s,54c退火30s,72c延伸15-
40s,循環(huán)35次;72c終延伸5min。
A.4.4PCR產(chǎn)物檢測
制備1%瓊脂糖凝膠,對PCR產(chǎn)物進行電泳檢測。電泳結(jié)束后,將瓊脂糖凝膠置于凝
膠成像儀中成像,并拍照記錄。
A.4.5檢測結(jié)果分析
(1)當(dāng)檢測樣品中出現(xiàn)目標(biāo)條帶.陰性對照和空白對照未出現(xiàn)目標(biāo)條帶時,視為陽性.
即檢測樣品中攜帶相應(yīng)病毒。
(2)當(dāng)檢測樣品中未出現(xiàn)目標(biāo)條帶,陰性對照和空白對照也未出現(xiàn)目標(biāo)條帶時,視為
陰性,即檢測樣品中不攜帶相應(yīng)病毒。
(3)當(dāng)陰性對照或空白對照出現(xiàn)目標(biāo)條帶時,無論檢測樣品中是否出現(xiàn)目標(biāo)條帶,檢
測結(jié)果均視為無效,應(yīng)重新檢測。
表A.1狒猴桃病毒檢測引物序列及擴增產(chǎn)物大小
病毒名稱引物序列(5VF)產(chǎn)物大小(bp)
都猴桃病毒AF:CATGGCAAAGAATATCTCAAG471
(AcVA)R:AGATCCAACCCAGAGTTGAAA
梆猴桃病毒BF:GTTTGCGAGGAGACGTAGGGC342
(AcVB)R:AGTTAAGTGCTCTYGGRGGTGTG
魅猴桃病毒CF:AAAGAACCCTACCTCCACC1106
(AcVC)R:CCATCTATATCTCAACAGCCTGCTCG
疥猴桃病毒DF:AGGACACTCAAGCCTCAACATC847
(AcVD)R:TTGTAGGCGACCCACAGAAG
獅猴桃褪綠環(huán)斑病毒F:ATCCAAGAATTCCTTAACAGCA477
(AcCRaV)R:TGTGCAATCATGGCTTATCAGA
麻猴桃黃化病毒1F:CAACGCCGCAAACATCCTTAT624
(AcYVl)R:CACCTGCTTCTCACAAACAGTCTCA
掰猴桃黃化病毒2F:AAAACAACTCAACAGAAACGCACTA530
(AcYV2)RTTCCCTGAAGTAGACAGAATAGACG
梆猴桃黃化環(huán)斑病毒F:TrrGGACTGGGAACGTAGAGG337
(AYRSpV)R:CGAGAAAGTGAGGTTATCGGG
舜猴桃種傳潛隱病毒F:GCDAARGCNGGNCARACHHTVGCBTGYTT363
(ASbLV)R:RAAYTCNCCNSWRAANCKCAT
掰猴桃病毒1F:AGGAATATTGGATCGGTTGTCG208
(AcV-1)R:GATGGTCAGTCTTAATCTCC
殊猴桃山樗病毒2F:CTGCTATACATCCTGAATGGT985
(AcEV-2)R:GATGTCTTTGTACTAGATGC
蘋果莖溝病毒F:CCCGCTGTTGGATTTGATACACCTC499
(ASGV)R:GGAATTTCACACGACTCCTAACCCTCC
柑橘葉斑駁病毒F:GAAAAGCAACGAAAGCAACCTA328
(CLBV)R:CGAACAAGATGTGATTCTCG
櫻桃卷葉病毒F:GTCGGAAAGATT/XCGTAAAAGG416
(CLRV)R:TGGCGACCGTGTAACGGCA
天竺葵輪斑病毒F:GATAAATTCAGAGCTCTCGG997
(PZSV)R:ATCTCTGCAGAITGTGTrCC
黃瓜花葉病毒F:GAGTCGTGCGTTTTCTTTGTGTTTT183
(CMV)R:AATGGCGAGGGTTTTyVTTGAGTC
馬鈴薯X病毒F:AGTGCGCGAGGTTTACCAATC790
(PVX)R:GTGGTTTGCCGCGAACGATTC
番茄壞死斑點相關(guān)病F:ATGATTTGTTTGGGGTTATG350
毒(TNSaV)R:GAATGGTTCTCCCTCTATGG
附錄B
(資料性附錄)
表B.1超低溫療法脫除麻猴桃病毒所用溶液配方
組分
溶液名稱
MS蔗糖丙三醇乙二醇二甲基亞碉
0.25M蔗糖溶液4.43g/L0.25M///
0.5M蔗糖溶液4.43g/L0.5M///
加載液4.43g/L0.4M2M//
PVS24.43g/L0.4M30%(w/v)15%(w/v)15%(w/v)
卸載液4.43g/L1.2M///
附錄c
(資料性附錄)
搐博目生
圖C.1莖尖超低溫療法脫除梆猴桃病毒流程圖
《貓猴桃無病毒種苗生產(chǎn)技術(shù)規(guī)程》
編制說明
一、工作概況
1.1任務(wù)來源
本標(biāo)準(zhǔn)是根據(jù)《陜西省市場監(jiān)督管理局關(guān)于下達2022年陜西省地方標(biāo)準(zhǔn)制修訂
計劃項目的通知》要求起草,項目編號SDBXM111-2022。
1.2目的與意義
獅猴桃原產(chǎn)于中國,是一種營養(yǎng)價值極高的水果,有“VC之王”之稱,在全球
水果生產(chǎn)中占有重要位置。目前全球有30多個國家栽培掰猴桃,主產(chǎn)國有中國、意
大利、新西蘭和智利。截至2019年年底,全球栽培面積已達36.3萬公頃,產(chǎn)量達
430萬噸。其中我國的栽培規(guī)模最大,栽培面積29.1萬公頃,產(chǎn)量300.6萬噸,分別
占世界舜猴桃栽培面積和產(chǎn)量的80.2%和69.9%o陜西作為中國最大的舜猴桃產(chǎn)區(qū),
栽培面積及產(chǎn)量分別占全國的30%和40%o
然而,近年米隨著舜猴桃栽培面積的不斷擴大,獅猴桃病毒病的擴散和蔓延也成
為威脅滁猴桃安全生產(chǎn)的隱患之一。目前,共鑒定出24種可侵染梆猴桃的病毒,包
括12種新病毒和12種已知的、狒猴桃是其新寄主的病毒,而在我國栽培掰猴桃中鑒
定出的病毒有17種。狒猴桃感染病毒后通常會表現(xiàn)出葉片花葉、斑駁、褪綠和畸形
等癥狀,嚴(yán)重時會引起樹干枯死、樹皮開裂、果實大小不均勻等癥狀,極大影響產(chǎn)量
和質(zhì)量,造成嚴(yán)重經(jīng)濟損失。有研究指出,狒猴桃病毒病在陜西不同地區(qū),不同殊猴
桃種及品種上廣泛發(fā)生,且對陜西貓猴桃產(chǎn)量及品質(zhì)造成了嚴(yán)重影響。
植物病毒是專性細胞內(nèi)寄生物,只寄生在寄主的活細胞內(nèi),可通過營養(yǎng)繁殖世代
傳播,還可通過昆蟲媒介從受病毒感染的植物傳播到健康的植物,長期以來一直是農(nóng)
業(yè)生產(chǎn)可持續(xù)發(fā)展的制約因素。掰猴桃常通過嫁接繁殖,因此導(dǎo)致了病毒在掰猴桃植
株上的積累和傳播。雖然化學(xué)藥品在控制病毒病方面有潛在的應(yīng)用,但培育無病毒植
物才是有效控制它們的一種農(nóng)業(yè)策略。目前.,世界各地廣泛種植無病毒植物,以控制
許多重要經(jīng)濟作物的病毒性疾病,如塊莖作物、草本觀賞植物。從其他國家進口新品
種及國家或地區(qū)之間交換育種材料也都需要無病毒材料。此外,植物種質(zhì)資源保存也
強調(diào)使用無病毒植物。因此,建立薄猴桃病毒脫除技術(shù)體系,制定“跺猴桃脫毒種苗
生產(chǎn)技術(shù)規(guī)程”具有重要的生產(chǎn)及經(jīng)濟意義,為后續(xù)滁猴桃脫毒苗的生產(chǎn)提供理論基
礎(chǔ)和技術(shù)支持。
1.3主要工作過程
項目任務(wù)下達后,立即成立了梆猴桃無病毒種苗生產(chǎn)技術(shù)規(guī)程地方標(biāo)準(zhǔn)起草小組,
組織起草小組對測試標(biāo)準(zhǔn)的意義和總體技術(shù)要求進行學(xué)習(xí),制定了本標(biāo)準(zhǔn)的工作方案、
技術(shù)路線、主要研究方法,標(biāo)準(zhǔn)的具體格式,確定了標(biāo)準(zhǔn)的總體框架和制定原則,明
確了標(biāo)準(zhǔn)制定的具體工作計劃和進度。起草小組通過多年自身試驗研究資料的整理,
結(jié)合對其他同行業(yè)無病毒種苗生產(chǎn)的數(shù)據(jù)資料的研究等方法,在總結(jié)起草單位多年來
徐猴桃無病毒種苗培育和實踐的基礎(chǔ)上,全面開展了該標(biāo)準(zhǔn)的制定工作。
1.4起草單位
標(biāo)準(zhǔn)由西北農(nóng)林科技大學(xué)主導(dǎo),楊凌夢綠生態(tài)農(nóng)業(yè)有限責(zé)任公司協(xié)助起草。
二、標(biāo)準(zhǔn)編寫原則和研究內(nèi)容
包括標(biāo)準(zhǔn)編制所遵循的原則,以及標(biāo)準(zhǔn)結(jié)構(gòu)、要索、技術(shù)要求、關(guān)鍵指標(biāo)的確定
依據(jù)和主要內(nèi)容;地方標(biāo)準(zhǔn)修訂項目還應(yīng)當(dāng)列出和原標(biāo)準(zhǔn)主要差異情況。
本標(biāo)準(zhǔn)遵循適用性、先進性、統(tǒng)一性和協(xié)調(diào)性的原則,始終將經(jīng)濟效益、生態(tài)效
益和社會效益有機結(jié)合,協(xié)調(diào)統(tǒng)一。
本標(biāo)準(zhǔn)共有8章,嚴(yán)格按照GB/T1.1-2020的規(guī)定編寫,本標(biāo)準(zhǔn)包括封面、引言、
名稱、適用范圍、術(shù)語和定義、要求等要素。主要內(nèi)容包括標(biāo)準(zhǔn)的適用范圍、術(shù)語和
定義、脫毒原理、病毒檢測與脫除、無病毒母本園的建立、無病毒苗木的繁育、無病
毒苗木出圃及包裝標(biāo)識等。
三、實證研究
本標(biāo)準(zhǔn)實施驗證工作開展了大量的試驗,尤其是對于滁猴桃病毒檢測與脫除方法
進行了系統(tǒng)的研究,確定了關(guān)鍵技術(shù)指標(biāo)。
3.1化學(xué)療法脫毒處理利巴韋林濃度篩選
對感染AcVA、AcVB和AcCRaV三種病毒的大籽跳猴桃試管苗使用0、25、50、
75.lOOmg/L的利巴韋林增殖培養(yǎng)基上培養(yǎng)42d,對使用不同濃度利巴韋林進行處理
的試管苗生長狀況進行觀測并拍照記錄,結(jié)果如圖3-1所示,在處理的第14d,使用
25、50、75mg/L利巴書林處理植棟的生長情況一致與對照植株相似。在處理的28d,
筑著利巴韋林濃度的升高,植株生長變化明顯,利巴韋林濃度為5()mg/L時,植株長
勢最好,利巴韋林濃度為100mg/L時,植株部分葉片開始發(fā)黃,植株增殖受到輕微抑
制。處理結(jié)束時(42d),試管苗生長變化明顯,尤其在75、100mg/L利巴韋林濃度處
理下,植物病毒感染的癥狀均表現(xiàn)在葉片上,旦后者比前者癥狀更明顯,植株的增殖
受到了明顯的抑制作用。與對照相比,50mg/L利巴韋林濃度下植株的長勢最好。因
此,得出隨著利巴韋林濃度的加大,植株的生長先增強后減弱,在50mg/L的利巴韋
林濃度下長勢最好,所以后續(xù)脫毒試驗以25、50、75mg/L利巴韋林的濃度進行處理。
圖3-1利巴韋林化療后14、28和42天的離體大籽舜猴桃植株的生長情況
Fig.3-1GrowthofinvitroActinidiamacrospermaplantsafterchemotherapytreatmentswithribavirinfor
14.28.and42days
對照:離體大籽掰猴桃植株在標(biāo)準(zhǔn)生長室內(nèi)培養(yǎng);R25、R50、R75和R100:離體大籽搟猴桃植株在生
長室中培養(yǎng)在添加利巴韋林的增殖培養(yǎng)基上,濃度分別為25、50、75.lOOmg/Lo
CK:InvitroActinidiamacrospenmplantswereculturedinastandardgrowthroom;R2,R50andR75in
vitroActinidiamacrospermaplantswerecukurcdinagrowthroomonMSmediumsupplementedwith
ribavirinat25,50and75mg/L,respectively
3.2基于化學(xué)療法的脫毒處理對帶毒試管苗營養(yǎng)生長和增殖的影響
3.2.1化學(xué)療法脫毒處理對試管苗營養(yǎng)生長和增殖的影響
將帶毒大籽試管苗外施0、25、50、75mg/L利巴韋林在增殖培養(yǎng)基上培養(yǎng)6周
后,測量不同濃度利巴韋林處理時大籽駢猴桃試管苗營養(yǎng)生長和增殖。營養(yǎng)生長統(tǒng)計
結(jié)果如表3-1所示,在使用4個濃度利巴韋林對植株進行脫毒處理時,植株在節(jié)間數(shù)、
葉長、葉寬指標(biāo)上沒有出現(xiàn)顯著性差異,但是50mg/L的利巴韋林處理對植株的株高、
鮮重以及葉片數(shù)產(chǎn)生了顯著影響。高濃度利巴韋林(50mg/L)處理產(chǎn)生了20.4個葉
片,顯著高于對照組的14.4個葉片,旦在株高上達到了23.26mm,顯著高于對照組的
15.74mm,高于25、75mg/L處理下的植株表現(xiàn)但不顯著;節(jié)間長達到了最長的
4.38mm,顯著高于對照組和使用75mg/L的利巴韋林處理植株;節(jié)間數(shù)高于其他處理
但不顯著;鮮重、干重及干重均顯著高于對照處理;僅有葉寬葉長出現(xiàn)了低于其他處
理的現(xiàn)象。
不同脫毒處理對“大籽”獅猴桃試管苗增殖結(jié)果的影響統(tǒng)計結(jié)果如圖3-2所示,
使用50mg/L的利巴韋林處理對植株的增殖數(shù)產(chǎn)生了顯著影響,高濃度利巴韋林
(50mg/L)處理可以增殖5.4個植株,顯著高于對照組和使用R25、75mg/L的處理的
3、3.8、3.6個植株。所以,在正常處理6周的條件下,隨著利巴韋林濃度的上升,
50mg/L利巴韋林處理下大籽林猴桃植株綜合生長指標(biāo)最好,與處理6周時植株的生長
情況一致。
3.2.2化學(xué)療法結(jié)合熱處理對試管苗營養(yǎng)生長和增殖的影響
將帶毒大籽試管苗外施0、25、5()、75mg/L利巴韋林在增殖培養(yǎng)基上培養(yǎng)2周,
然后再經(jīng)過4周的熱處理后均可以成活。對該處理下試管苗營養(yǎng)生長和增殖狀況進行
測量并記錄。試管苗的營養(yǎng)生長統(tǒng)計結(jié)果如表3-1所示,經(jīng)過熱處理后,使用25、
50mg/L利巴韋林處理后的試管苗植株高度達到了24.27、25.34mm,顯著高于對照組
植株的13.42mm,使用75mg/L利巴韋林處理下試管苗株高為17.02mm,高于對照組
植株株高但不顯著。節(jié)間數(shù)、葉寬、鮮重、干重在不同濃度利巴韋林處理下和對照組
無顯著差異,但從增殖系數(shù)來看(圖3-2),50mg/L濃度利巴韋林處理后的植株增殖
系數(shù)最大為4.6,顯著高于對照組和使用75mg/L處理的3.4和3.2。說明伴隨著熱處理
脫毒,當(dāng)利巴韋林濃度增加到了75mg/L時,大籽掰猴桃植株增殖受到了抑制。
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表31不同濃度利巴韋林處理和不同濃度利巴韋林處理結(jié)合熱處理對大杼試管苗營養(yǎng)生長的影
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