瘧原蟲的鏡檢技術(shù)制片染色

1、瘧原蟲鏡檢技術(shù)瘧原蟲鏡檢技術(shù)制片與染色制片與染色主要內(nèi)容主要內(nèi)容v厚薄血膜的制作與染色。v瘧原蟲計(jì)數(shù)方法。血膜的制作（所需設(shè)備）血膜的制作（所需設(shè)備）v載玻片：新玻片新玻片浸入有液態(tài)洗滌劑的清水中10-20分鐘，干凈棉巾逐個(gè)擦拭，再用清水沖洗干凈，晾干，最后用干凈柔軟的棉巾將玻片擦亮。已用過的玻片已用過的玻片浸泡于洗滌劑溶液中1-2天，或浸泡于煮沸的5%肥皂水中1-2小時(shí)，再放入新配置的洗滌劑溶液中1-2小時(shí)，逐個(gè)擦去血膜痕跡，清水漂洗干凈，擦亮。v采血針：一次性v玻片盒：防止污染和昆蟲吸食血膜v75%酒精棉球：采血前后消毒v記號(hào)筆：玻片上書寫號(hào)碼血膜的制作（取血時(shí)間）血膜的制作（取血時(shí)間）v

2、 現(xiàn)癥病人和流調(diào)普查時(shí)可不考慮取血時(shí)機(jī)。但在診斷或需要某期瘧原蟲作標(biāo)本時(shí)，則應(yīng)掌握適宜的取血時(shí)機(jī)。v 瘧疾典型的臨床表現(xiàn)分前驅(qū)期、發(fā)冷（寒戰(zhàn)）期、發(fā)熱期、出瘧疾典型的臨床表現(xiàn)分前驅(qū)期、發(fā)冷（寒戰(zhàn)）期、發(fā)熱期、出汗期和間歇期五期。汗期和間歇期五期。 F 間日瘧在前驅(qū)期相當(dāng)于肝內(nèi)期瘧原蟲發(fā)育，因原蟲密度太低，鏡檢多為陰性。發(fā)冷（寒戰(zhàn)）期相當(dāng)于紅內(nèi)期成熟裂殖體漲破紅細(xì)胞期，鏡檢多為裂殖體和環(huán)狀體。F 發(fā)熱期，發(fā)熱期，外周血中以環(huán)狀體（小滋養(yǎng)體）為主，環(huán)狀體（小滋養(yǎng)體）為主，也可見到裂殖裂殖體；體；出汗期因原蟲密度太低，鏡檢多為陰性。發(fā)作后數(shù)小時(shí)發(fā)作后數(shù)小時(shí)，間歇期外周血中以大滋養(yǎng)體大滋養(yǎng)體為主，形態(tài)

3、較易辯認(rèn)，為診斷的有利時(shí)機(jī)；發(fā)作36-48h，可檢出裂殖體；發(fā)作1-2次后，配子體配子體出現(xiàn)較多。F 惡性瘧較理想的取血時(shí)間是在發(fā)作后至20h內(nèi)取血，發(fā)作后發(fā)作后2 2小時(shí)小時(shí)左右，左右，此時(shí)環(huán)狀體發(fā)育至最高峰，初發(fā)患者退熱后常查不到原蟲。末梢血血檢到惡性瘧原蟲配子體，是在末梢血出現(xiàn)環(huán)狀體之后的7-10天。血膜的制作（取血操作）血膜的制作（取血操作）v在采集標(biāo)本、制作血片前，首先要核對(duì)在采集標(biāo)本、制作血片前，首先要核對(duì)患者的患者的姓名、年齡和住址姓名、年齡和住址。v取血部位和方法取血部位和方法F耳垂或無名指（嬰幼兒耳垂或無名指（嬰幼兒拇趾或足跟）拇趾或足跟），通常在耳垂取血，先用75%酒精棉球

4、消毒取血部位，待酒精干后，用左手拇指和食指緊捏耳垂上方或無名指指尖，右手持消毒針迅速刺入皮膚，不宜過深或過淺（12mm為宜）。然后用左手大拇指、食指和右手中指協(xié)同輕輕擠壓出血滴。 v用于檢查瘧原蟲的血涂片有兩種：一種是將血液涂成薄膜狀，稱薄血膜薄血膜；一種是血液涂成圓盤狀，稱厚血膜厚血膜。最好一張玻最好一張玻片上同時(shí)制作厚、薄兩種血膜。片上同時(shí)制作厚、薄兩種血膜。v涂制厚、薄血膜的位置涂制厚、薄血膜的位置 F作為標(biāo)本的血片每張玻片涂厚、薄血膜各作為標(biāo)本的血片每張玻片涂厚、薄血膜各1 1個(gè)。方個(gè)。方法是將載片分為法是將載片分為6 6等分，第等分，第1 1、2 2格備貼標(biāo)簽及編號(hào)格備貼標(biāo)簽及編號(hào)用

5、；厚血膜涂在第用；厚血膜涂在第3 3格中央，薄血膜涂在第格中央，薄血膜涂在第4 4格前緣格前緣至第至第6 6格中部。格中部。F門診和發(fā)熱病人血片每片門診和發(fā)熱病人血片每片1 1人，涂人，涂2 2個(gè)厚血膜個(gè)厚血膜1 1個(gè)薄個(gè)薄血膜，以防血膜脫落而影響檢查。血膜，以防血膜脫落而影響檢查。標(biāo)本片標(biāo)本片發(fā)熱病人血片發(fā)熱病人血片標(biāo)簽標(biāo)簽厚血膜的制作厚血膜的制作F取潔凈的載玻片1張，左手持載玻片平置,右手持推片，用推片的一角，從取血部位刮取約約45微升微升血量血量（相當(dāng)于火柴頭大小），），使血滴與平置的載玻片接觸，再由里向外一個(gè)方向旋轉(zhuǎn)，轉(zhuǎn)24圈，涂成直徑直徑0.81cm大小圓形厚血膜大小圓形厚血膜。F位

6、置，位于玻片位于玻片右右1/3處處（中央偏右或（中央偏右或6等份中的與貼等份中的與貼標(biāo)簽的標(biāo)簽的1、2份相鄰的第份相鄰的第3份中部）。份中部）。外觀，圓形厚薄圓形厚薄均勻，邊緣整齊均勻，邊緣整齊。過厚易于脫落，過薄達(dá)不到檢出率的要求，以1個(gè)油鏡視野5-10個(gè)白細(xì)胞為宜。薄血膜的制作薄血膜的制作F用推片一端邊緣的中點(diǎn)從取血部位刮取約刮取約11.5微升微升的血量的血量（相當(dāng)于1/4火柴頭大?。?，使血滴與平置的載玻片中線接觸，并形成并形成25350夾角，待血液向兩側(cè)擴(kuò)展約 2cm2.5cm寬寬時(shí)時(shí)，均勻而迅速地從右向左推成舌狀薄血膜（約2.5cm長）。注意：注意：推制時(shí)速度要均勻，血滴大小、推片與載

7、玻片之間夾角大小及展開血膜的速度快慢等常影響血膜的厚薄。也可載玻片平置在桌面上操作。也可載玻片平置在桌面上操作。F位置，位于玻片左半部分或第位于玻片左半部分或第4格前緣到第格前緣到第6格中部格中部 ；外觀，舌狀厚薄均勻，無劃痕舌狀厚薄均勻，無劃痕；應(yīng)在玻片上形成平鋪的紅細(xì)胞，紅細(xì)胞之間互相接觸而不相互重疊。正確的推片姿勢正確的推片姿勢標(biāo)準(zhǔn)的瘧疾厚薄血膜位置標(biāo)準(zhǔn)的瘧疾厚薄血膜位置血膜的編號(hào)血膜的編號(hào)F血膜制成后，立即在玻片面上貼標(biāo)簽或?qū)懮鲜軝z者的號(hào)碼，以防差錯(cuò)；待薄血膜干后再用鉛筆于薄血膜中寫上血片種類的代號(hào)和受檢者的個(gè)人編號(hào)，依次順序插入標(biāo)本盒內(nèi)。制作血膜注意事項(xiàng)制作血膜注意事項(xiàng)v清洗玻片，且

8、勿碰撞、磨損清洗玻片，且勿碰撞、磨損 載玻片必須完全清潔無油漬或污垢。制片時(shí)，手指勿接觸玻片表面，以免油污使薄血膜產(chǎn)生空白區(qū)以及厚血膜脫落。作為推片的玻片邊緣一定要平滑，才能使推出的血膜均勻一致。v剛涂制的血膜要平放在標(biāo)本盒內(nèi)剛涂制的血膜要平放在標(biāo)本盒內(nèi) 厚血膜未干前勿使標(biāo)本盒傾斜，以免血膜傾向一側(cè)，造成血膜厚薄不均，厚處不易溶血和著色而影響檢查結(jié)果；晾干血膜時(shí)應(yīng)注意防塵，防止蒼蠅、蟑螂等昆蟲吮吸血膜；干后應(yīng)及時(shí)裝入標(biāo)本盒并蓋嚴(yán)。v血膜應(yīng)自然干燥血膜應(yīng)自然干燥 切忌在毒太陽下曬或火烤，加快其干燥可采用手背上或衣服摩擦、風(fēng)吹，干透后才能用甲醇固定薄血膜。夏天標(biāo)本盡可能夏天標(biāo)本盡可能24-48h2

9、4-48h內(nèi)固定染色；內(nèi)固定染色；冬天也不能超過冬天也不能超過72h72h。放置時(shí)間越久，厚血膜越不易溶血，染色效果也差。若不能及時(shí)染色，薄血膜宜先用甲醇固定（13分鐘）然后用過濾清水對(duì)厚血膜溶血，晾干后裝入盒內(nèi)蓋嚴(yán)，待以后染色。染液的種類染液的種類v瘧原蟲的染色，目前臨床上應(yīng)用最廣泛的是瑞氏瑞氏（Wright stainWright stain）和姬氏染液（）和姬氏染液（Giemsa stainGiemsa stain）。這些染液中的主要染劑都包含美藍(lán)、伊紅和由美藍(lán)氧化所成的天青，所以稱多色性染劑多色性染劑。v我們主要用姬氏染液姬氏染液，它具有方便，染色效果穩(wěn)定，便于長期保存的優(yōu)點(diǎn)。瑞氏染色

10、，染色時(shí)間短，但染色效果不如姬氏穩(wěn)定，主要在門診量大的門診實(shí)驗(yàn)室使用。染液的染色原理染液的染色原理v是染料與被染物的陰陽離子互相吸附而結(jié)合的一種化學(xué)反應(yīng)。F紅、白細(xì)胞和瘧原蟲所含蛋白質(zhì)的氨基酸電離出的陰陽離子與酸堿染料伊紅、美藍(lán)有色集團(tuán)所帶的陰陽離子相互結(jié)合便被染上不同的顏色。F瘧原蟲和白細(xì)胞的瘧原蟲和白細(xì)胞的胞漿胞漿被染成被染成藍(lán)色，藍(lán)色，紅細(xì)胞、瘧紅細(xì)胞、瘧原蟲和白細(xì)胞原蟲和白細(xì)胞核核被染成被染成紫紅色。紫紅色。 F 紅、白細(xì)胞和瘧原蟲的蛋白質(zhì)均由氨基酸組成，每個(gè)氨基酸電離出一個(gè)帶正電荷的-NH3+和一個(gè)帶負(fù)電荷的-COO-。多色染劑的堿性染料美藍(lán)的有色基團(tuán)帶陽離子，可與細(xì)胞中帶負(fù)電荷的-

11、COO-部分結(jié)合，使之成為藍(lán)色。瘧原蟲、淋巴和大單核細(xì)胞的胞漿、嗜堿性白細(xì)胞的顆粒等酸性蛋白質(zhì)，故被染成藍(lán)色。酸性染料伊紅的有色基團(tuán)帶陰離子，可與細(xì)胞中帶正電荷的-NH2+部分結(jié)合，使之呈紅色；但美藍(lán)與伊紅都不能使瘧原蟲和白細(xì)胞的核著色，可美藍(lán)氧化后產(chǎn)生的天青有媒染作用，于是，在媒染物與染料的共同作用下，瘧原蟲和白細(xì)胞核被染成紫紅色。v注意注意：蛋白質(zhì)和氨基酸都是兩性電解質(zhì)，要求：蛋白質(zhì)和氨基酸都是兩性電解質(zhì)，要求染染液的液的pHpH值值7.0-7.27.0-7.2較好。較好。v染液偏酸染液偏酸時(shí)，所帶的正電荷增加，易于伊紅結(jié)合，使紅細(xì)胞和瘧原蟲的核染成鮮紅色，而淋巴細(xì)胞淋巴細(xì)胞和原蟲的胞漿著

12、色較差和原蟲的胞漿著色較差；反之，當(dāng)染液偏堿染液偏堿時(shí)，紅細(xì)胞和嗜伊紅白細(xì)胞的顆粒等被染成紫藍(lán)色，不易觀察。姬氏染液母液配置方法姬氏染液母液配置方法v 材料：材料： 1、姬氏粉、姬氏粉5克克 2、甘油、甘油250ml 3、甲醇、甲醇250mlv 將姬氏粉置于研缽中，加入少量甘油充分研磨，邊加邊磨，至甘油加完為止，倒入500ml有塞玻璃瓶中。在研缽中加入少量甲醇，洗掉剩余部分，倒入瓶中，再次加甲醇洗后倒入瓶中，至洗凈研缽為止。塞緊瓶塞，充分搖勻，置于5560水浴中或溫箱內(nèi)24h或室溫內(nèi)35天，每天用力搖動(dòng)5分鐘，即成原液。配制1-2周后可以使用。姬氏染液是目前較優(yōu)良的血膜染劑，能長期保存而不變質(zhì)

13、。 F注意事項(xiàng)：注意事項(xiàng)： 1.1.高純度高純度試劑。試劑。 2.2.所用器皿所用器皿絕對(duì)無水絕對(duì)無水（伊紅在水溶液內(nèi)遇到美藍(lán)或天青即可（伊紅在水溶液內(nèi)遇到美藍(lán)或天青即可互相結(jié)合而產(chǎn)生沉淀，從而失去染色力）?；ハ嘟Y(jié)合而產(chǎn)生沉淀，從而失去染色力）。 3.3.邊加邊磨，充分研磨邊加邊磨，充分研磨；整個(gè)染色液配制時(shí)間不能少于；整個(gè)染色液配制時(shí)間不能少于5 5個(gè)個(gè)小時(shí)。小時(shí)。姬氏染液的染色方法姬氏染液的染色方法v 血片干燥后,先用甲醇或無水酒精固定薄血膜（瑞氏不需固定）甲醇或無水酒精固定薄血膜（瑞氏不需固定）, ,再用再用清水對(duì)厚血膜溶脫血紅蛋白清水對(duì)厚血膜溶脫血紅蛋白(新制作的也可直接染色)，然后再

14、進(jìn)行染色。 注意注意：吸取母液時(shí)，不要晃動(dòng)瓶子,以免沉淀物泛起影響染色效果。 成批血片染色成批血片染色：將已用甲醇固定薄血膜的血片插入染色缸，倒入3%姬氏染液稀釋液（3毫升姬氏原液加緩沖液或蒸餾水97毫升，混勻）浸沒血片，同時(shí)對(duì)厚薄血膜染色30-40min（根據(jù)當(dāng)?shù)貙?shí)際情況，酌情增減染色時(shí)間），然后用清水輕輕將染液漂洗干凈，將血片標(biāo)本（血膜面朝下）插于晾干板上晾干，包裝，鏡檢。 單張血片染色單張血片染色：將處理好的血膜，加姬氏母液2-32-3滴滴，加緩沖液緩沖液或蒸餾水或蒸餾水1ml1ml，混合均勻，染色15-2015-20分鐘分鐘左右，然后用清水輕輕將片上的染液沖洗干凈，晾干鏡檢。（勿直接傾

15、倒掉玻片上的染（勿直接傾倒掉玻片上的染液，防止渣滓附著在玻片上沖不掉影響鏡檢液，防止渣滓附著在玻片上沖不掉影響鏡檢） 較理想的染色結(jié)果是紅細(xì)胞為淡紅或淡紫紅色紅細(xì)胞為淡紅或淡紫紅色，瘧原蟲的胞質(zhì)呈瘧原蟲的胞質(zhì)呈藍(lán)色藍(lán)色，核為紫紅色核為紫紅色，瘧色素為棕褐色瘧色素為棕褐色?？烊究烊?配制8-10%染液(每張血片約需染液2ml):量筒內(nèi)量2ml緩沖液或新鮮涼開水，直接滴加姬氏原液4-5滴，混勻，滴入待染標(biāo)本的厚薄血膜上，染色10-15min，清水細(xì)緩沖洗，晾干鏡檢。慢染慢染 配制3%染液:在染色量筒內(nèi)量2ml蒸餾水或新鮮涼開水，再滴加姬氏原液2滴，混勻，滴入待染標(biāo)本上，染色3040min。清水細(xì)緩

16、沖洗，晾干鏡檢。姬氏染液濃度姬氏染液濃度門診染色門診染色血片制作染色評(píng)估考核標(biāo)準(zhǔn)血片制作染色評(píng)估考核標(biāo)準(zhǔn)項(xiàng)目項(xiàng)目檢查內(nèi)容檢查內(nèi)容質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)分值分值分分值值分分血片制作血片制作（80分）分）厚血膜（厚血膜（40分）分）血量（血量（10分）分）45l10略多或略少略多或略少7過多或過少過多或過少5位置（位置（10分）分）玻片右玻片右1/3 10稍偏右稍偏右7偏右過多偏右過多5直徑（直徑（10分）分）0.81.0cm100.70.8 或或1.01.2cm81.2cm5外觀（外觀（10分）分）圓形厚膜均勻，邊緣整齊圓形厚膜均勻，邊緣整齊10圓形稍不均不整齊圓形稍不均不整齊8厚薄不勻影響著色厚薄不

17、勻影響著色5薄血膜（薄血膜（40分）分）血量（血量（10分）分）11.5l10略多或略少略多或略少7過多或過少過多或過少5位置（位置（10分）分）長度（長度（10分分)外觀（外觀（10分分)玻片玻片1/21/3處處10稍偏右或偏左稍偏右或偏左7偏右或偏左過多偏右或偏左過多52.52.0cm10稍大或稍小稍大或稍小 8過多或過少過多或過少5舌狀厚薄均勻舌狀厚薄均勻10舌狀稍不均舌狀稍不均 8厚薄不勻呈波浪型厚薄不勻呈波浪型5血片染色質(zhì)量（血片染色質(zhì)量（10分）分）外觀（外觀（4分）分）藍(lán)紫色藍(lán)紫色4深藍(lán)色深藍(lán)色3深紅色或灰白色深紅色或灰白色2鏡下（鏡下（6分）分）白細(xì)胞、瘧原蟲胞漿藍(lán)色，白細(xì)胞、

18、瘧原蟲胞漿藍(lán)色，核紅色核紅色6染色過深，原蟲胞漿與核染色過深，原蟲胞漿與核均呈深藍(lán)色均呈深藍(lán)色4染色過淺，胞漿藍(lán)色不易顯染色過淺，胞漿藍(lán)色不易顯見，核淡紅見，核淡紅3血片清潔度（血片清潔度（10分）分）外觀（外觀（5分）分）光潔無油灰光潔無油灰5稍有油污稍有油污4油灰粘連油灰粘連2鏡下（鏡下（5分）分）無沉渣無沉渣5稍有沉渣稍有沉渣4沉渣多或有雜菌沉渣多或有雜菌3影響染色效果的因素影響染色效果的因素v血片染色好壞除與玻片清潔度、血片制作質(zhì)量和染色技術(shù)等有關(guān)外，還受到以下因素的影響： （1 1）染劑、溶劑的質(zhì)量染劑、溶劑的質(zhì)量 染料、甲醇和甘油必須用分析純，且在配制時(shí)所用的器具必須干凈且無水份。

19、（2 2）染液的新舊染液的新舊 染液存放時(shí)間越久，染色力越強(qiáng)。新配制的染液因色素尚未充分溶解，染色力較弱且常呈現(xiàn)偏堿性。通常在染液配制12周后才使用，盛裝染液的瓶子應(yīng)加塞蓋密，以防吸潮而影響染液質(zhì)量。（3 3）染液稀釋后使用時(shí)間染液稀釋后使用時(shí)間 必須現(xiàn)用現(xiàn)稀釋染液，當(dāng)時(shí)使用，一般在一般在0.5h內(nèi)染色力最強(qiáng)內(nèi)染色力最強(qiáng)。 姬氏和瑞氏染液的主要成份是美藍(lán)、伊紅和由美藍(lán)氧化產(chǎn)生的天青，三者能在甲醇中溶解，但在水溶液中伊紅遇到美藍(lán)和天青即產(chǎn)生沉淀。影響染色效果的因素影響染色效果的因素（4 4）染液的稀釋濃度染液的稀釋濃度 染液的濃度高，著色就快而深，瘧原蟲寄生紅細(xì)胞的薛氏點(diǎn)粗大顯著，但顏色常偏堿；

20、染液濃度過低則染色時(shí)間久，顏色偏酸，薛氏點(diǎn)不明顯或消失。（5 5）染色時(shí)間染色時(shí)間 染色時(shí)間應(yīng)根據(jù)染液的質(zhì)量、新舊、稀釋濃度和氣溫而適當(dāng)增減。染色時(shí)間長染色效果好，反之較差。室溫高則著色快，染色時(shí)間可略縮短，氣溫低可適當(dāng)延長。（6 6）染色用水染色用水 染液的稀釋用水和染色后沖洗用水應(yīng)選擇pH7.0-7.2緩沖液（緩沖液（NaNa2 2HPOHPO4 4,KH,KH2 2POPO4 4），也可以使用新鮮的蒸新鮮的蒸餾水餾水或過濾的冷開水過濾的冷開水。在現(xiàn)場無上述條件時(shí)也可用井水、河井水、河水、泉水或雨水水、泉水或雨水。（7 7）沖洗方法沖洗方法 應(yīng)沿玻片或染色缸邊緣加水使染液表面一層溢出，并輕

21、輕沖洗，以免染液色素顆粒附著于血膜。血片染色注意事項(xiàng)血片染色注意事項(xiàng) 配置母液時(shí)過濾過濾可除去雜質(zhì)顆粒，有助于提高鏡檢質(zhì)量。 固定薄血膜時(shí)勿將勿將甲醇觸碰甲醇觸碰到到厚血膜。 沖洗染液時(shí)，水流輕緩輕緩，勿沖走厚血膜。原蟲密度計(jì)算原蟲密度計(jì)算v估計(jì)瘧原蟲感染程度有三種方法：估計(jì)瘧原蟲感染程度有三種方法：半定量計(jì)數(shù)法半定量計(jì)數(shù)法 檢查厚血膜檢查厚血膜白細(xì)胞原蟲密度計(jì)數(shù)法檢查厚血膜白細(xì)胞原蟲密度計(jì)數(shù)法檢查厚血膜紅細(xì)胞感染率計(jì)算法檢查薄血膜紅細(xì)胞感染率計(jì)算法檢查薄血膜v白細(xì)胞瘧原蟲密度計(jì)數(shù)法（白細(xì)胞瘧原蟲密度計(jì)數(shù)法（WHOWHO推薦推薦）用于瘧疾研究用于瘧疾研究用于臨床診斷用于臨床診斷用于抗瘧后瘧疾考

22、核用于抗瘧后瘧疾考核v用厚血膜每個(gè)視野中所觀察到瘧原蟲的平均數(shù)粗略地估計(jì)出瘧原蟲密度。這種方法簡便，缺點(diǎn)是計(jì)數(shù)的瘧原蟲數(shù)受血膜厚薄影響，只能定性只能定性，不宜作定量分不宜作定量分析析。v國內(nèi)常用。此方法將密度分為6級(jí)：F全厚血膜查見瘧原蟲數(shù)在10個(gè)以內(nèi)，記錄實(shí)際數(shù)字F全厚血膜查見瘧原蟲數(shù)在10個(gè)以上，但平均每個(gè)視野不到1個(gè)蟲，記錄“少”F平均每個(gè)視野15個(gè)蟲，記錄“”F平均每個(gè)視野610個(gè)蟲，記錄“+”F 平均每個(gè)視野11100個(gè)蟲，記錄“+ ”F 平均每個(gè)視野100個(gè)蟲以上，記錄“+ ”半定量計(jì)數(shù)法半定量計(jì)數(shù)法v在厚血膜，按要求選擇視野，計(jì)數(shù)200個(gè)個(gè)白細(xì)胞，同時(shí)計(jì)數(shù)觀察到的瘧原蟲數(shù)，如果原蟲密度較低，可增加白細(xì)胞計(jì)數(shù)（500 1 000 個(gè)）。v白細(xì)胞瘧原蟲計(jì)算公式： 瘧原蟲數(shù) 計(jì)數(shù)的白細(xì)胞數(shù) 患者每微升血的白細(xì)胞數(shù) = 瘧原蟲數(shù)/l血。v如果不知患者的白細(xì)胞數(shù)，則每微升血以 8000個(gè)