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血清成分的生化分析第1頁(yè)/共50頁(yè)實(shí)驗(yàn)六血清清蛋白與γ-球蛋白的分離及鑒定生命與環(huán)境科學(xué)學(xué)院生化組第2頁(yè)/共50頁(yè)總體步驟:鹽析→透析→濃縮→電泳(期間穿插凝膠柱層析)一、鹽析
50%飽和度,血清球蛋白沉淀
α、β、γ-(33%飽和度沉淀)
100%飽和度,血清清蛋白沉淀(NH4)2SO4:破壞水膜、中和電荷純度鑒定:層析(柱)、電泳等第3頁(yè)/共50頁(yè)二、透析目的:去鹽(柱層析也可)透析袋:裝樣量:1/2~2/3三、濃縮目的:去水(蔗糖)四、電泳目的:鑒定清蛋白和
γ-球蛋白純度五、層析練習(xí):分離藍(lán)葡聚糖和重鉻酸鉀(藍(lán)色+黃色)第4頁(yè)/共50頁(yè)實(shí)驗(yàn)材料雞血清:三黃雞血清
或?yàn)豕请u血清第5頁(yè)/共50頁(yè)實(shí)驗(yàn)六——(一)血清清蛋白與γ-球蛋白的鹽析、透析與濃縮第6頁(yè)/共50頁(yè)一、目的1、掌握鹽析法分離蛋白質(zhì)的原理和方法2、掌握透析法脫鹽及蛋白質(zhì)濃縮的方法第7頁(yè)/共50頁(yè)二、試劑及儀器用品血清PBS
(NH4)2SO4溶液
蔗糖雙縮脲試劑酪蛋白
BaCl2溶液離心機(jī)燒杯移液管透析袋第8頁(yè)/共50頁(yè)三、原理中性鹽類能破壞溶液中蛋白分子表面的雙電層和水膜,從而使蛋白質(zhì)從溶液中凝聚沉淀析出。沉淀不同蛋白質(zhì)所需鹽類濃度不同。如,50%飽和的硫酸銨能使血清中的球蛋白沉淀,而33%飽和的硫酸銨則使γ-球蛋白沉淀。因此,可根據(jù)所要分離的蛋白質(zhì),選擇不同飽和度的硫酸銨溶液進(jìn)行鹽析。第9頁(yè)/共50頁(yè)
透析是利用蛋白質(zhì)等生物大分子不能通過(guò)半透膜的性質(zhì)的一類純化方法,可利用該方法分離大分子與小分子的混合物。由于NH4+和SO42-可以通過(guò)半透膜,而血清清蛋白不能,因此,可以利用透析的方法使清蛋白溶液脫鹽。第10頁(yè)/共50頁(yè)透析裝置第11頁(yè)/共50頁(yè)
利用半透膜還可以進(jìn)行大分子溶液的濃縮。將盛有待濃縮的大分子溶液的透析袋放入高濃度的吸水性強(qiáng)的蔗糖固體顆粒中,袋內(nèi)溶液中的水被袋外的多聚物所吸收而有效地濃縮。第12頁(yè)/共50頁(yè)四、實(shí)驗(yàn)步驟1、鹽析、透析與濃縮離心管2mL血清2mLPBS2mL(NH4)2SO4搖勻靜置30′3000rps離心20′上清液(主要含清蛋白)沉淀(主要含γ-球蛋白)第13頁(yè)/共50頁(yè)3.132g(NH4)2SO4上清液靜置30′,離心20′1mL水(或PBS)沉淀流水透析1h蔗糖濃縮清蛋白1mLPBS沉淀1mL水(或PBS)流水透析1h蔗糖濃縮γ-球蛋白滴加0.5mL(NH4)2SO4靜置30′,離心20′沉淀(γ-球蛋白)第14頁(yè)/共50頁(yè)實(shí)驗(yàn)六——(二)血清清蛋白與γ-球蛋白的鑒定——醋酸纖維薄膜電泳第15頁(yè)/共50頁(yè)一、目的學(xué)習(xí)醋酸纖維薄膜電泳的操作了解電泳技術(shù)的一般原理。第16頁(yè)/共50頁(yè)二、原理
醋酸纖維薄膜電泳是用醋酸纖維薄膜作為支持物的電泳方法。醋酸纖維薄膜由二乙酸纖維素制成,它具有均一的泡沫樣的結(jié)構(gòu),厚度僅120μm微米,有強(qiáng)滲透性,對(duì)分子移動(dòng)無(wú)阻力,作為區(qū)帶電泳的支持物進(jìn)行蛋白電泳有簡(jiǎn)便,快速,樣品用量少,應(yīng)用范圍廣,分離清晰,沒(méi)有吸附現(xiàn)象等優(yōu)點(diǎn)。目前已廣泛用于血清蛋白,脂蛋白,血紅蛋白,糖蛋白和同工酶的分離及用在免疫電泳中。第17頁(yè)/共50頁(yè)
蛋白質(zhì)是兩性電解質(zhì),在pH不等于其等電點(diǎn)的溶液中,可帶有電荷,在電場(chǎng)中會(huì)向著與其所帶電荷相反的電極移動(dòng)。血清中含有白蛋白、α-球蛋白、β-球蛋白、γ-球蛋白等蛋白質(zhì),各種蛋白質(zhì)由于氨基酸組分、立體構(gòu)象、相對(duì)分子質(zhì)量、形狀及等電點(diǎn)不同,在電場(chǎng)中遷移速度就不同,故通過(guò)電泳法可將其分離。第18頁(yè)/共50頁(yè)三、實(shí)驗(yàn)器材1、醋酸纖維薄膜(2×8cm)2、常壓電泳儀、電泳槽3、點(diǎn)樣器(市售或自制)4、培養(yǎng)皿(染色及漂洗用)5、粗濾紙、直尺、單面刀片、電吹風(fēng)6、玻璃板7、竹鑷子8、白磁反應(yīng)板等第19頁(yè)/共50頁(yè)四、實(shí)驗(yàn)試劑1、巴比妥-巴比妥鈉緩沖液(pH8.6,離子強(qiáng)度0.07):1000mL:巴比妥2.76g,巴比妥鈉15.45g,加水至1000mL。
2、染色液:300mL
含氨基黑10B0.25g,甲醇50mL,冰醋酸10mL,水40mL〈可重復(fù)使用〉。
3、漂洗液:2000mL
含甲醇或乙醇45mL,冰醋酸5mL,水50mL。4、透明液:300mL:含無(wú)水乙醇7份,冰醋酸3份。5、血清:新鮮,無(wú)溶血現(xiàn)象第20頁(yè)/共50頁(yè)五、操作總體步驟:膜處理——30′裝置——電泳槽電極緩沖液:兩槽等高搭橋點(diǎn)樣→電泳→染色→漂洗→透明需做三條膜:全血清、γ-球蛋白、清蛋白第21頁(yè)/共50頁(yè)1、膜處理——膜的浸泡用無(wú)齒鑷子取醋酸纖維薄膜一張(識(shí)別出光澤面與無(wú)光澤面,并在角上做好記號(hào))放在緩沖液中浸泡20min。第22頁(yè)/共50頁(yè)2、電泳槽的準(zhǔn)備根據(jù)薄膜寬度剪裁合適的濾紙條。在兩個(gè)電極槽中各倒入等體積電極緩沖液,在電泳槽兩個(gè)膜支架上各放兩層濾紙條,濾紙的一端與支架前沿對(duì)齊,另一端浸入電極緩沖液內(nèi)。當(dāng)濾紙條全部潤(rùn)濕后,用玻棒輕輕擠壓在膜支架上的濾紙以驅(qū)逐氣泡,使該端濾紙緊貼于膜支架上。濾紙條是兩個(gè)電極槽聯(lián)系醋酸纖維素薄膜的橋梁,故稱為濾紙橋。第23頁(yè)/共50頁(yè)3、點(diǎn)樣把膜條從緩沖液中取出,夾在兩層粗濾紙中吸干多余的液體,然后平鋪在玻璃板上(無(wú)光澤面朝上)。將點(diǎn)樣器先于放置在白磁反應(yīng)板上的血清中沾一下,再在膜條一端2~3cm處輕輕地水平地落下并隨即提起,這樣即在膜條上點(diǎn)上了細(xì)條狀的血清樣品。+-第24頁(yè)/共50頁(yè)點(diǎn)樣說(shuō)明:點(diǎn)樣位點(diǎn)不可直接在薄膜上劃線,以免破壞薄膜。可制備點(diǎn)樣模板:取等大小濾紙條,在距紙邊1.5~2cm處用鉛筆劃一平行線,此線為點(diǎn)樣標(biāo)志區(qū)。點(diǎn)樣后要在薄膜上形成具一定寬度、粗細(xì)均勻的直線。此步驟是實(shí)驗(yàn)關(guān)鍵,是獲得具有清晰區(qū)帶電泳圖譜的重要環(huán)節(jié)。點(diǎn)樣前應(yīng)在濾紙上反復(fù)練習(xí),掌握點(diǎn)樣技術(shù)后再正式點(diǎn)樣。第25頁(yè)/共50頁(yè)4、電泳將膜條上點(diǎn)樣的一端靠近負(fù)極(點(diǎn)樣面朝下,要求膜緊貼濾紙并繃直,中間不能下垂。若電泳槽中同時(shí)安放幾張薄膜,則薄膜間應(yīng)相隔幾mm)。蓋嚴(yán)電泳室,平衡10min。通電。調(diào)節(jié)電壓到160V,電流強(qiáng)度0.4~0.6mA/cm(毫安/厘米)膜寬,電泳時(shí)間約為45~60min。第26頁(yè)/共50頁(yè)第27頁(yè)/共50頁(yè)5、染色電泳完畢后,將膜條取下并放在染色液中浸泡5~10min。6、漂洗將膜條從染色液中取出后移置漂洗液中漂洗數(shù)次到無(wú)蛋白區(qū)底色脫凈為止,可得色帶清晰的電泳圖譜。第28頁(yè)/共50頁(yè)7、定量⑴、將膜條用濾紙壓平吸干,按區(qū)帶分段剪開(kāi),分別浸在4.0mL0.4mol/L氫氧化鈉溶液中半小時(shí),并剪取相同大小的無(wú)色帶膜條作空白對(duì)照,在A650nm進(jìn)行比色。⑵、將干燥的電泳圖譜膜條放在潔凈的玻璃板上,將透明液滴入,待膜條完全透明后用吹風(fēng)機(jī)吹干或放入烘箱中烘干,可用光密度計(jì)直接測(cè)定,此圖譜可長(zhǎng)期保存。第29頁(yè)/共50頁(yè)實(shí)驗(yàn)六——(三)凝膠層析(練習(xí)實(shí)驗(yàn))第30頁(yè)/共50頁(yè)一、目的掌握凝膠過(guò)濾層析的技術(shù)方法第31頁(yè)/共50頁(yè)二、凝膠柱層析原理1、凝膠層析也稱凝膠過(guò)濾,是一類利用有一定孔徑范圍的多孔凝膠的層析技術(shù)。2、當(dāng)樣品流經(jīng)這類凝膠的固定相時(shí),不同分子大小的各組分因進(jìn)入網(wǎng)孔受阻滯的程度不同而以不同的速度通過(guò)層析柱,從而達(dá)到分離的目的。第32頁(yè)/共50頁(yè)3、當(dāng)樣品通過(guò)層析柱時(shí),分子量較大的物質(zhì)因?yàn)椴荒芑蜉^難通過(guò)網(wǎng)孔而進(jìn)入凝膠顆粒,而是沿著凝膠顆粒間的間隙流動(dòng),所以流程較短,向前移動(dòng)的速度較快,即受阻滯的程度較小,最先流出層析柱;反之,分子量較小的物質(zhì),因?yàn)轭w粒直徑小,可通過(guò)網(wǎng)孔而進(jìn)入凝膠顆粒,所以流程較長(zhǎng),向前移動(dòng)的速度較慢,即受阻滯的程度較大,流出較晚。第33頁(yè)/共50頁(yè)第34頁(yè)/共50頁(yè)
本實(shí)驗(yàn)采用SephandexG-25凝膠柱分離重鉻酸鉀和藍(lán)葡聚糖混合物。
Sephandex:葡聚糖凝膠。G20、G30······G200等,編號(hào)越小,篩孔越小。根據(jù)需要選取適當(dāng)型號(hào)可分離高分子物質(zhì)或脫鹽等。第35頁(yè)/共50頁(yè)三、試劑及儀器用品(1)SephandexG-25(1)鐵架臺(tái)(2)生理鹽水(2)凝膠柱(3)重鉻酸鉀(3)玻璃棒(4)藍(lán)葡聚糖(4)燒杯(5)試管(6)膠頭吸管第36頁(yè)/共50頁(yè)四、實(shí)驗(yàn)步驟1、凝膠預(yù)處理稱取8gG-25→
放入250mL燒杯中→
100mL蒸餾水→小火煮沸1h→
靜止、冷卻→傾棄蒸餾水→加入10mLPBS→
輕輕攪拌至凝膠懸起→傾入10cm×1.0cm層析柱。第37頁(yè)/共50頁(yè)2、裝柱將全部凝膠都傾入柱內(nèi),當(dāng)液面接近凝膠面時(shí),用螺旋夾將橡膠管夾緊,然后小心放松螺旋夾,使液體緩慢流出(4~5d/m),到液體剛好流入凝膠面時(shí),將螺旋夾再夾緊,裝柱工作完成。第38頁(yè)/共50頁(yè)3、加樣用膠頭吸管將柱中上方清液吸出,加入重鉻酸鉀和藍(lán)葡聚糖混合溶液,用膠塞封住上口。4、洗脫用生理鹽水洗脫液進(jìn)行洗脫。打開(kāi)螺旋夾,使液體的流速達(dá)到10~15d/m。第39頁(yè)/共50頁(yè)5、收集混合液在凝膠柱中分離,藍(lán)色的藍(lán)葡聚糖在下方,黃色的重鉻酸鉀在上方。用試管收集流出藍(lán)、黃色液體,比色并畫(huà)出洗脫曲線。第40頁(yè)/共50頁(yè)實(shí)驗(yàn)結(jié)果1.洗脫曲線例子實(shí)際洗脫曲線2.實(shí)驗(yàn)結(jié)論
五、實(shí)驗(yàn)結(jié)果第41頁(yè)/共50頁(yè)第42頁(yè)/共50頁(yè)第43頁(yè)/共50頁(yè)第44頁(yè)/共50頁(yè)可通過(guò)凝膠過(guò)濾對(duì)樣品脫鹽第45頁(yè)/共50頁(yè)一、實(shí)驗(yàn)原理*鹽析分離所得之γ-球蛋白,在進(jìn)一步純化之前,先要將其中的硫酸銨除去。凝膠過(guò)濾法較之透析法是一種快速有效的方法。*當(dāng)?shù)鞍踪|(zhì)、硫酸銨混合物流經(jīng)SephadexG-25柱時(shí),硫酸銨滲入SephadexG-25內(nèi)部,而蛋白質(zhì)被排阻在外,因此,蛋白質(zhì)隨溶劑先流出,硫酸銨后流出。故能將二者分開(kāi)。第46頁(yè)/共50頁(yè)二、操作方法1.裝柱
*取層析柱1根(1.5×20cm),垂直于固定架上,夾住流出口;
*加10ml磷酸鹽緩沖液(0.0175mol/L,pH6.7)于柱中;
*將溶脹好的SephadexG-25傾倒去水,加入磷酸鹽緩沖液(0.0175mol/L
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