




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偽狂犬病毒PCR診斷本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第1頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分什么是PCR?
聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PolymeraseChainReaction,簡(jiǎn)稱PCR)又稱無細(xì)胞分子克隆或特異性DNA序列體外引物定向酶促擴(kuò)增技術(shù)。一、PCR反應(yīng)的原理、方法及操作步驟本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第2頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分PCR及有關(guān)技術(shù)的發(fā)展歷史(1)1983Cetus公司的K.Mullis在這年底(12月16日第一次成功實(shí)驗(yàn))發(fā)明了PCR。1985關(guān)于PCR的文章首次由Cetus公司Saiki等人在Science上發(fā)表(R.Saiki,S.Scharf,F.Faloona,K.Mullis,G.Horn,H.ErlichandN.Arnheim)本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第3頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分PCR及有關(guān)技術(shù)的發(fā)展歷史(2)1987當(dāng)年7月Cetus公司在美國(guó)獲得PCR基本技術(shù)專利批準(zhǔn)。成立于1985年底的Perkin-ElmerCetus儀器公司(PECI)于這一年的11月推出了第一個(gè)PCR試劑產(chǎn)品及第一臺(tái)熱循環(huán)儀。1989Science報(bào)道了耐熱性DNA多聚酶Taq酶的發(fā)現(xiàn),預(yù)示著分子時(shí)代的到來。12月《Science》雜志將PCR和它所使用的聚合酶命名為第一個(gè)“年度分子”。本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第4頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分PCR及有關(guān)技術(shù)的發(fā)展歷史(3)1992年3月Cetus公司獲得Taq酶、熱循環(huán)擴(kuò)增儀等專利;
KaryMullis因PCR的發(fā)明獲得諾貝爾化學(xué)獎(jiǎng)。本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第5頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分PCR及有關(guān)技術(shù)的發(fā)展歷史(4)九十年代中期PCR臨床應(yīng)用在國(guó)內(nèi)全面展開1998年實(shí)時(shí)熒光PCR技術(shù)開始在中國(guó)較廣泛的應(yīng)用于臨床檢測(cè)1999年西方發(fā)達(dá)國(guó)家嘗試將PCR應(yīng)用于血液篩查本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第6頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分PCR原理PCR是一種選擇性擴(kuò)增DNA或RNA的方法,其基本原理是依據(jù)體內(nèi)細(xì)胞分裂中的DNA半保留復(fù)制機(jī)理,以及在體外DNA分子于不同溫度下雙鏈和單鏈可以互相轉(zhuǎn)變的性質(zhì),人為地控制體外合成系統(tǒng)的溫度,以促使雙鏈DNA變成單鏈;單鏈DNA與人工合成的引物退火,以及在dNTP存在下,耐高溫的DNA聚合酶使引物沿單鏈模板延伸成為雙鏈DNA。高溫變性,低溫退火,適溫延伸等3步反應(yīng)循環(huán)進(jìn)行,使目的DNA得以迅速擴(kuò)增。本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第7頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分PCR原理PCR技術(shù)在模板DNA、dNTP、Mg2+、合適Buffer等條件下,用耐熱的Taq聚合酶代替DNA聚合酶,用合成的DNA引物代替RNA引物,經(jīng)過DNA變性、引物與模板結(jié)合(復(fù)性)和延伸3個(gè)步驟的反復(fù)循環(huán)(2530次)過程,使目的DNA呈指數(shù)擴(kuò)增。本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第8頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分(1)DNA模板的熱變性
將待擴(kuò)增DNA加熱到940C左右,使雙鏈DNA解開成為單鏈,并游離于反應(yīng)體系中作為模板。(2)模板與引物的結(jié)合(退火或復(fù)性)
將體系溫度降至合適溫度(520C左右),使加入的引物與模板DNA兩端(3ˊ端)堿基序列互補(bǔ)結(jié)合。本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第9頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分(3)引物延伸
將體系溫度升到720C左右,Taq聚合酶催化dNTP
按堿基互補(bǔ)原則連接在DNA引物3ˊ端,使鏈延伸,形成兩條與模板互補(bǔ)的新鏈。
以上為1次PCR循環(huán)(變性、復(fù)性和延伸)
(新合成的鏈可作為下一輪循環(huán)的模板)
按照上述(變性、復(fù)性和延伸)3個(gè)步驟反復(fù)循環(huán),PCR產(chǎn)物呈指數(shù)擴(kuò)增。
模板DNA擴(kuò)增倍數(shù)T=2n(n:循環(huán)次數(shù))。本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第10頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分PCR原理SampledenaturatationPrimerannealingPrimerextension本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第11頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分PCRproduct本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第12頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分標(biāo)準(zhǔn)的PCR反應(yīng)體系10×擴(kuò)增緩沖液10ul
4種dNTP混合物各200umol/L
引物10~100pmol
模板DNA0.1~2ug
TaqDNA聚合酶2.5u
Mg2+1.5mmol/L
加雙或三蒸水至100ul本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第13頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第14頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第15頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分2.PCR各要素及其作用(1)模板
PCR模板可以是DNA或RNA。以線性DNA模板為佳,量適中,一般為102105個(gè)拷貝;
RNA作為模板時(shí),需要:
RNAcDNAPCR,稱此為RT-PCR.
(2)耐熱DNA聚合酶(TaqDNA聚合酶)
是從耐熱細(xì)菌體內(nèi)提取的一種DNA聚合酶,可在95℃穩(wěn)定30分鐘。從而保證PCR在[94℃變性→52℃退火→72℃延伸]循環(huán)30次過程中不變性失活。
逆轉(zhuǎn)錄本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第16頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分酶及其濃度目前有兩種TaqDNA聚合酶供應(yīng)天然酶:從棲熱水生桿菌中提純基因工程酶:大腸菌合成一個(gè)典型的PCR反應(yīng)約需酶量2.5U(指總反應(yīng)體積為100ul時(shí))濃度過高可引起非特異性擴(kuò)增,濃度過低則合成產(chǎn)物量減少本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第17頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分引物引物是PCR特異性反應(yīng)的關(guān)鍵PCR產(chǎn)物的特異性取決于引物與模板DNA互補(bǔ)的程度理論上,只要知道任何一段模板DNA序列,就能按其設(shè)計(jì)互補(bǔ)的寡核苷酸鏈做引物,用PCR就可將模板DNA在體外大量擴(kuò)增本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第18頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分引物設(shè)計(jì)的原則(一)①引物長(zhǎng)度:15-30bp,常用為20bp左右引物的有效長(zhǎng)度不能大于38bpmer,否則最適延伸溫度會(huì)超過TaqDNA聚合酶的最適溫度(72℃),不能保證PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的特異性②引物擴(kuò)增跨度:以500bp為宜特定條件下可擴(kuò)增長(zhǎng)至10kb的片段③引物堿基:G+C含量以40-60%為宜G+C太少擴(kuò)增效果不佳,G+C過多易出現(xiàn)非特異條帶ATGC最好隨機(jī)分布,避免5個(gè)以上的嘌呤或嘧啶核苷酸的成串排列本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第19頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分引物設(shè)計(jì)的原則(二)④避免引物內(nèi)部出現(xiàn)二級(jí)結(jié)構(gòu)避免兩條引物間互補(bǔ),特別是3’端的互補(bǔ),否則會(huì)形成引物二聚體,產(chǎn)生非特異性的擴(kuò)增條帶⑤引物3’端的堿基要求嚴(yán)格配對(duì)特別是最末及倒數(shù)第二個(gè)堿基,以避免因末端堿基不配對(duì)而導(dǎo)致PCR失敗⑥引物中有或能加上合適的酶切位點(diǎn)被擴(kuò)增的靶序列最好有適宜的酶切位點(diǎn),這對(duì)酶切分析或分子克隆很有好處本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第20頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分引物設(shè)計(jì)的原則(三)⑦引物的特異性:引物應(yīng)與核酸序列數(shù)據(jù)庫(kù)的其它序列無明顯同源性⑧引物量:每條引物的濃度0.1~1umol或10~100pmol,以最低引物量產(chǎn)生所需要的結(jié)果為好.引物濃度偏高會(huì)引起錯(cuò)配和非特異性擴(kuò)增,且可增加引物之間形成二聚體的機(jī)會(huì).本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第21頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分引物在線設(shè)計(jì)網(wǎng)址:primer/primer3_cgi本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第22頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第23頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第24頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分dNTP的質(zhì)量與濃度dNTP的質(zhì)量與濃度和PCR擴(kuò)增效率有密切關(guān)系dNTP呈顆粒狀,保存不當(dāng)易變性失活dNTP溶液呈酸性,使用時(shí)應(yīng)配成高濃度后,以1MNaOH或1MTris-HCl的緩沖液將其pH調(diào)節(jié)到7.0~7.5,小量分裝,-20℃冰凍保存。多次凍融會(huì)使dNTP降解在PCR反應(yīng)中,dNTP應(yīng)為50~200umol/L,尤其是注意4種dNTP的濃度要相等(等摩爾配制),如其中任何一種濃度不同于其它幾種時(shí)(偏高或偏低),就會(huì)引起錯(cuò)配。濃度過低又會(huì)降低PCR產(chǎn)物的產(chǎn)量dNTP能與Mg2+結(jié)合,使游離的Mg2+濃度降低本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第25頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分Mg2+濃度Mg2+對(duì)PCR擴(kuò)增的特異性和產(chǎn)量有顯著的影響在一般的PCR反應(yīng)中,各種NTP濃度為200umol/L時(shí),Mg2+濃度為1.5~2.0mmol/L為宜Mg2+濃度過高,反應(yīng)特異性降低,出現(xiàn)非特異擴(kuò)增,濃度過低會(huì)降低TaqDNA聚合酶的活性,使反應(yīng)產(chǎn)物減少本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第26頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分PCR反應(yīng)條件的選擇PCR反應(yīng)條件:溫度時(shí)間循環(huán)次數(shù)本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第27頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分溫度與時(shí)間的設(shè)置:設(shè)置變性-退火-延伸三個(gè)溫度點(diǎn)標(biāo)準(zhǔn)反應(yīng)中采用三溫度點(diǎn)法,雙鏈DNA在90~95℃變性,再迅速冷卻至40~60℃,引物退火并結(jié)合到靶序列上,然后快速升溫至70~75℃,在TaqDNA聚合酶的作用下,使引物鏈沿模板延伸對(duì)于較短靶基因(長(zhǎng)度為100~300bp時(shí))可采用二溫度點(diǎn)法,將退火與延伸溫度合二為一,一般采用94℃變性,65℃左右退火與延伸本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第28頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分①變性溫度與時(shí)間:變性溫度低,解鏈不完全是導(dǎo)致PCR失敗的最主要原因一般93℃~94℃lmin足以使模板DNA變性若低于93℃則需延長(zhǎng)時(shí)間但溫度不能過高,因?yàn)楦邷丨h(huán)境對(duì)酶的活性有影響。此步若不能使靶基因模板或PCR產(chǎn)物完全變性,就會(huì)導(dǎo)致PCR失敗本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第29頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分
②退火(復(fù)性)溫度與時(shí)間:退火溫度是影響PCR特異性的較重要因素變性后溫度快速冷卻至40℃~60℃,可使引物和模板發(fā)生結(jié)合。由于模板DNA比引物復(fù)雜得多,引物和模板之間的碰撞結(jié)合機(jī)會(huì)遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于模板互補(bǔ)鏈之間的碰撞退火溫度與時(shí)間,取決于引物的長(zhǎng)度、堿基組成及其濃度,還有靶基序列的長(zhǎng)度對(duì)于20個(gè)核苷酸,G+C含量約50%的引物,55℃為選擇最適退火溫度的起點(diǎn)較為理想本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第30頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分引物的復(fù)性溫度
通過以下公式幫助選擇合適的溫度:Tm值(解鏈溫度)=4(G+C)+2(A+T)復(fù)性溫度=Tm值-(5~10℃)在Tm值允許范圍內(nèi),選擇較高的復(fù)性溫度可大大減少引物和模板間的非特異性結(jié)合,提高PCR反應(yīng)的特異性。復(fù)性時(shí)間一般為30~60sec,足以使引物與模板之間完全結(jié)合。本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第31頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分③延伸溫度與時(shí)間:延伸溫度:一般選擇在70~75℃之間常用溫度為72℃過高的延伸溫度不利于引物和模板的結(jié)合。延伸反應(yīng)時(shí)間:根據(jù)待擴(kuò)增片段長(zhǎng)度而定1Kb以內(nèi)的DNA片段,延伸時(shí)間1min(足夠)3~4kb的靶序列需3~4min擴(kuò)增10Kb需延伸至15min延伸進(jìn)間過長(zhǎng)會(huì)導(dǎo)致非特異性擴(kuò)增對(duì)低濃度模板的擴(kuò)增,延伸時(shí)間要稍長(zhǎng)些本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第32頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分循環(huán)次數(shù)循環(huán)次數(shù)決定PCR擴(kuò)增程度循環(huán)次數(shù)主要取決于模板DNA的濃度循環(huán)次數(shù):選在30~40次之間循環(huán)次數(shù)越多,非特異性產(chǎn)物的量亦隨之增多本文檔共40頁(yè);當(dāng)前第33頁(yè);編輯于星期一\23點(diǎn)44分(6)參數(shù)
變性溫度與時(shí)間
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