中國藥科大學-生物工程-譚樹華老師全部PPT

生物工程譚樹華博士、教授tohike@hotmail中國藥科高校生物制藥學院參考書書目BOOKSMolecularBiologyAndBiotechnology(EditedbyJ.M.WalkerandE.B.Gingold)MolecularBiotechnologyPrinciplesandApplicationsofRecombinantDNA(EditedbyBernardR.GlickandJackJ.Pasternak)PharmaceuticalBiotechnology(EditedbyDaanJACrommelinandRobertDSindelar)現(xiàn)代生物工程焦炳華、孫樹漢主編現(xiàn)代生物技術(shù)導論瞿禮嘉、顧紅雅、胡蘋編著生物技術(shù)藥物馬大龍主編基因工程原理與方法孫樹漢主編JOURNALSNATUREBIOTECHNOLOGYTRENDSINBIOTECHNOLOGYMOLECULARBIOTECHNOLOGY藥物化學藥物中藥

生物藥物天然生化藥物生物工程（技術(shù)）藥物藥物分類第一章緒論第一節(jié)生物工程的概念生物工程（技術(shù)）：就是利用生物有機體（這些生物有機體包括從微生物至高等動、植物）或其組成部分（包括器官、組織、細胞或細胞器等）發(fā)展新產(chǎn)品或新工藝的一種技術(shù)體系。

現(xiàn)代生物工程被列為當今世界公認的七大高新技術(shù)之首（現(xiàn)代生物工程技術(shù)、航天工程技術(shù)、信息工程技術(shù)、激光工程技術(shù)、自動化工程技術(shù)、新能源工程技術(shù)和新材料工程技術(shù)。生物工程之所以受到世界各國的如此重視，是因為它在解決人類所面臨的諸如食物短缺、人類健康、環(huán)境污染和資源匱乏等重大問題上有著無可比擬的優(yōu)勢和巨大潛力。它已廣泛應用于醫(yī)藥衛(wèi)生、農(nóng)林牧漁、輕工、食品、化工和能源等領域，并以對人類社會生活產(chǎn)生了深遠的革命性影響。其次節(jié)生物工程主要探討內(nèi)容1、基因工程2、動物細胞工程3、酶工程4、微生物工程生物技術(shù)發(fā)展史上的里程碑

第三節(jié)生物技術(shù)制藥的誕生與發(fā)展生物技術(shù)藥物（biopharmaceutics,Biotechdrug):利用生物體、生物組織、細胞或其成分，綜合應用生物學與醫(yī)學、生物化學與分子生物學、微生物學與免疫學、物理化學與工程學和藥學的原理與方法加工制造而成的一大類用于預防、診斷、治療和康復保健的制品。

其發(fā)展要追溯到1980年十月十五號，紐約股票交易所開盤后20分鐘內(nèi)，生物制藥公司Genentech的股票價格從$35到$89,成為當時歷史上上漲最快的股票。當時Genentech的年齡才4歲，其緣由是在這之前兩年1978年Genentech成功地分別了人胰島素的兩條鏈的基因，并轉(zhuǎn)入了大腸桿菌宿主細胞，這樣就有可能利用大腸桿菌生產(chǎn)人的胰島素，從而解決某些糖尿病患者對豬胰島素過敏的問題。

1982年世界上第一個基因工程藥物藥物誕生了，由美國Lilly公司領先研制的重組人胰島素經(jīng)美國FDA批準投放市場，這標記著生物制藥技術(shù)進入了一個新紀元，也給廣袤的制藥企業(yè)帶來了無限的商機。同時也向世人展示，以基因工程技術(shù)為核心的現(xiàn)代生物技術(shù)藥物具有無限的發(fā)展應用前景和生命力。

據(jù)統(tǒng)計，全球生物工程制藥產(chǎn)業(yè)的年銷售額1998年為149億美元，到2007年已增長到840億美元，年增長速度連續(xù)10年保持在15%-33%，其中，銷售額超過10億美元的“重磅炸彈”就有29種。由此可見，雖然生物技術(shù)制藥的發(fā)展只有短短20幾年，但已成為發(fā)展最快的高新技術(shù)產(chǎn)業(yè)之一。我國的生物醫(yī)藥產(chǎn)業(yè)也發(fā)展勢頭良好，截止至2006年4月，我國食品藥品監(jiān)督管理局(SFDA)已批準了35種重組蛋白藥物、治療性抗體或基因治療產(chǎn)品上市，至2006年底，約有50余種生物技術(shù)藥物處于臨床或臨床試驗中。

生物技術(shù)藥物在臨床上的應用生物技術(shù)藥物(biotechdrugs，biopharmaceuticals）己廣泛用于治療癌癥、艾滋病、冠心病、多發(fā)性硬化癥、貧血、發(fā)育不良、糖尿病、心力衰竭、血友病、囊性纖維變性和一些罕見的遺傳疾病。生物技術(shù)藥物的類別主要有三大類：1、重組治療蛋白質(zhì)（酶、細胞因子、激素）2、重組疫苗3、診斷或治療用的單克隆抗體或基因工程抗體。2008年美國處于臨床試驗的生物技術(shù)藥物的分布圖（按產(chǎn)品類型分）中國醫(yī)藥生物技術(shù)2009，4（2）：892007年銷售額最高的6大類生物技術(shù)藥物

中國醫(yī)藥生物技術(shù)2009，4（2）：892008年美國處于臨床試驗的生物技術(shù)藥物的分布圖（按適應癥分）中國醫(yī)藥生物技術(shù)2009，4（2）：89第四節(jié)美國及歐洲主要的生物技術(shù)藥物公司GeneticsInstituteBayerCenteonGenentechGentocorBoehringerMannheimGalenusMannheimEliLillyOrthoBiotechHoechstAGAventisPharmaceuticalsGenzymeSchwartzPharmaPharmaciaandUpjohnBiotechnologyGeneralSeronoOrganonAmgenDompeBiotecScheringPloughHoffman-la-RocheChironBiogenPasteurMerieuxMSDImmunomedicsNovartisAbbottWyethUnigene

ImmunexBedexLaboratoriesMerkSmithKlineBeechamMedevaPharmaCytogenMedImmuneRocheIsisPharmaceuticalsSanofi-Sythelabo（安進）創(chuàng)建于1980年，位于美國加洲ThousandOaks，靠近加州高校和加洲理工學院。起初由于無產(chǎn)品上市，于1983，1986，1987通過公開發(fā)行股票募集資金維持公司生存。美國Nasdaq股票市場代號為AMGN。20世紀后10年是生物技術(shù)飛速發(fā)展的10年，1989年6月該公司第一個產(chǎn)品重組人紅細胞生成素(erythropoietin，簡稱EPO)獲得美國FDA批準，用于治療慢性腎功能衰竭引起的貧血和HIV感染治療的貧血．1991年2月公司其次個產(chǎn)品重組粒細胞集落刺激因子(filgrastim，G-CSF)獲得美國FDA批準，其適應證為腫瘤化療引起的嗜中性白細胞削減癥。1992年安進公司首次躋身財寶500強。此外,還有白細胞介素1受體拮抗劑Kineret

和抗類風濕性關(guān)節(jié)炎融合蛋白Enbrel等。

公司致力于研發(fā)新的蛋白藥物，應用于腫瘤、炎癥、骨疾病、神經(jīng)疾病、代謝性疾病和腎臟疾病的治療。三個先驅(qū)生物制藥公司Amgen,Biogen和Gennentech

Biogen是全球老牌生物技術(shù)公司之一，始建于1978年，并于2003年與制藥公司Idec合并組建成BiogenIdec公司?？偛课挥诿绹槭?，在歐洲，加拿大，澳大利亞和日本有分支機構(gòu)。主要研發(fā)癌癥，精神病，皮膚病和風濕病相關(guān)藥物。主要品種是老藥Avonex（野生型β干擾素，適應癥為多發(fā)性硬化癥）和Rituxan（與Genentech共同研發(fā)的瞄準癌細胞蛋白質(zhì)的單克隆抗體藥物，它可以選擇出癌細胞，交給免疫系統(tǒng)摧毀，適應癥為腫瘤。）。2005年，新藥Tysabri（人源化單抗，適應癥為多發(fā)性硬化癥）因平安問題撤市使股價受重大打擊，從70美元下跌至35美元/股左右。2006年，Tysabri因療效的確，在嚴格限制下重返市場，現(xiàn)有17000名患者運用該藥，沒有再發(fā)覺致命和嚴峻副作用。Genentech(基因技術(shù)公司）美國歷史最久的生物技術(shù)公司，規(guī)模和實力僅次于安進。它成立于1976年。創(chuàng)始人是風險投資家羅伯特.斯萬森(RobertAswanson)和生物化學家赫伯特·玻意爾博土(Dr．HerbertBoyer)。70年頭早期，玻意爾(Boyer)和遺傳學家史丹尼·科恩(StanleyCohen)開創(chuàng)了—個名為DNA重組技術(shù)的科學新領域。斯萬森(Swanson)為這一突破激烈不已，他打電話給玻意爾懇求會見。玻意爾同意給這位年輕的創(chuàng)業(yè)者特殊鐘的時間。斯萬森對這一技術(shù)的熱心和對其商用前景的堅決信念是富有感染力的，會見由10分鐘延長到了3個小時：其結(jié)果是，基因工程技術(shù)公司宣布誕生。

1980年，基因技術(shù)公司上市，一個小時內(nèi)每股從35美元劇漲至88美元，公司的身價因此激增至3500萬美無。這一事務是美國股市漲幅最大的案例之一。上市有10個基因工程藥物，其中包括:人生長激素“Nutropin”,抗體藥物“Herceptin”和“Rituxan”,溶栓藥物“Activase”和“TNKase”.該公司目前處于臨床試驗階段的還有20個左右的產(chǎn)品基因工程公司作為美國最早和最大的生物技術(shù)類風險投資支持的企業(yè)，代表著美國生物醫(yī)學產(chǎn)業(yè)將來的發(fā)展的方向，同時也為世界風險投資事業(yè)的發(fā)展供應了新的思路人類最終有了第一個轉(zhuǎn)基因動物生產(chǎn)的藥物上市用于臨床。該藥品從經(jīng)過基因修飾奶山羊分泌出的羊奶中提取純化，是用于治療一種被稱為遺傳性抗凝血酶缺乏癥的疾病。這種藥物的上市標記著轉(zhuǎn)基因動物藥物真正邁入產(chǎn)業(yè)化時代。

2009年2月6號美國FDA批準了首個利用轉(zhuǎn)基因山羊生產(chǎn)的重組藥物Atryn（由美國麻省生物技術(shù)公司

GTCBiotherapeutics生物技術(shù)公司）上市。第五節(jié)發(fā)展前景醫(yī)藥生物工程始終是生物工程技術(shù)中發(fā)展最快、最活躍的領域，也是各國生物工程探討開發(fā)的重中之重，是生物工程產(chǎn)業(yè)最為成熟，競爭最為激烈的領域。近年來，基因組學、蛋白質(zhì)組學、生物信息學、轉(zhuǎn)基因技術(shù)、干細胞和克隆技術(shù)、生物芯片技術(shù)等一系列新興技術(shù)的發(fā)展，為促進醫(yī)藥產(chǎn)業(yè)的發(fā)展供應了新的途徑和思路，醫(yī)藥生物工程技術(shù)正在成為整個醫(yī)藥產(chǎn)業(yè)發(fā)展最重要的技術(shù)推動力。所以生物工程醫(yī)藥產(chǎn)業(yè)照舊是朝陽產(chǎn)業(yè)。其次章基因工程與蛋白質(zhì)工程基因工程是指在分子水平上依據(jù)人們的設計方案將DNA片段（目的基因）插入載體DNA分子（如質(zhì)粒、病毒等），從而實現(xiàn)DNA分子體外重組，產(chǎn)生新的自然界從未有過的重組DNA分子，然后再將之引入特定的宿主細胞進行擴增和表達，使宿主細胞獲得新的遺傳性狀的技術(shù)?；蚬こ逃袝r也稱為重組DNA技術(shù)或分子克隆技術(shù)。GeneticCodon一、基因工程的概念及其基本過程

典型的主要步驟有：1、

目的基因(靶基因)的制備；2、

載體的選擇與制備；3、

目的基因與載體的連接；4、

將重組DNA分子轉(zhuǎn)入宿主細胞，并在其中進行復制、擴增；5、

重組子的篩選與鑒定；6、

表達產(chǎn)物的鑒定；7、

工程菌（細胞）的大規(guī)模培育；8、

表達產(chǎn)物的分別與純化。Cloningintoaplasmid基因工程必備的四個工具工具酶載體目的基因(靶基因)宿主細胞二、工具酶1.限制性內(nèi)切酶（restrictionendonucleases）：是一類能識別雙鏈DNA分子中特異核苷酸序列的DNA水解酶。這類酶的發(fā)覺和應用促進了DNA序列測定和基因工程技術(shù)的發(fā)展。它們已成為分子生物學探討和基因工程技術(shù)中不行或缺的工具酶。1968年，科學家E.Smith首次從大腸桿菌K12和K13中提取出了限制性內(nèi)切酶。由于它們能夠在DNA上找尋特定的切點，然后進行交織或平齊切割，因此又稱作“分子剪刀”，迄今已發(fā)覺400多種?，F(xiàn)在基因工程技術(shù)中所運用的限制性內(nèi)切酶幾乎都已商品化，在各生物技術(shù)公司（如國內(nèi)的華美、美國的Promega等公司）都能購買到。限制型內(nèi)切酶的命名為了對這些酶進行合理地命名，H.O.Smith和D.Nathans于1973年提出了限制性內(nèi)切酶的命名規(guī)則：（1）取該酶的產(chǎn)生菌的屬名的第一個大寫字母和種名的第一、二個小寫字母組成酶基本名稱；（2）若具有不同株，取其株系的第一個字母加于酶名稱之后，需大寫；（3）若同一株中發(fā)覺多種內(nèi)切酶則用大寫羅馬字碼I、II、III、IV表示分別次序先后。以下是幾種常見內(nèi)切酶的命名狀況限制型內(nèi)切酶的性質(zhì)基因工程技術(shù)中運用的酶屬于II型限制性內(nèi)切酶，它一般具有以下特性：識別序列：大多數(shù)酶的識別序列為4-6個雙重對稱（回文結(jié)構(gòu)）的核苷酸，少數(shù)酶識別更長的序列。切割方式：（1）在對稱軸兩側(cè)相對的位點上，交織切割，形成帶有1到4個核苷酸長度的5，端突出或3，端突出的粘性末端。所謂粘性末端是指含有幾個核苷酸單鏈的末端，可通過粘性末端堿基互補，使不同的DNA片段發(fā)生退火，有利于連接酶的連接。（2）在識別序列雙重對稱軸上同時切割雙鏈，產(chǎn)生平齊末端或鈍端。以下是幾種典型的限制性酶的識別序列與切割方式。5’端突出3’端突出平齊末端反應條件：（1）一般限制性內(nèi)切酶的最適反應溫度為37℃,但也有例外，如SmaⅠ則為25℃。（2）不同限制性內(nèi)切酶反應所需的離子強度也不一樣，一般分高、中、低三種。在進行操作時可供應商所供應的反應體系與反應溫度進行。同裂酶與同尾酶同裂酶（isoschizomer）：又稱異源同工酶，指不同來源但識別和切割序列完全相同的限制性內(nèi)切酶。如HpaII和MspI(C↓CGG)；不完全同裂酶：指識別序列相同，但切割位點不同的酶，如SmaI（CCC↓GGG）和XmaI（C↓CCGGG）；同尾酶：來源及識別序列均不相同，但切割后行成的限制性片段具有相同粘性末端的，當它們消化后產(chǎn)生的片段相互連接后，這兩種酶的識別序列一并消逝。如：SalI（G↓TCGAC）和XhoI(C↓TCGAG)SalI片段XhoI片段5，G，+TCGAG3，3，CAGCTC5，↓5，GTCGAG3，3，CAGCTC5，星號活力（其次活力）迄今所發(fā)表的第II型限制性內(nèi)切酶的識別序列都是在確定消化條件下測出的，當條件變更時，酶的專一性可能會降低，以至同一種酶可識別和切割更多的位點。如EcoRI通常只識別GAATTC，但是在低鹽（﹤50nM），高pH（﹥8）和甘油存在的條件下，EcoRI識別序列與原來不同，產(chǎn)生EcoRI﹡星號酶活，除中間四個堿基——A不能變成T、T不能變成A外，識別序列的6個堿基位置上僅在一處與原來序列不同的任何一個堿基的替代，EcoRI﹡照舊能識別此序列（如GAATTA，AAATTC，GAGTTC等）。因而EcoRI﹡的識別序列在DNA上出現(xiàn)的頻率要比EcoRI識別序列的出現(xiàn)頻率高15倍。此外，BamHI也有類似狀況。因此，為了獲得一種限制性內(nèi)切酶的最適反應速度和志向的消化專一性，必需堅持應用舉薦的反應條件。酶的儲存純化后的限制性內(nèi)切酶酶制劑，通常儲存在含有50%甘油的緩沖液中，保存于-20℃，不會冰凍，一般可儲存一年以上。儲存酶的溫度不能過低，若低于-20℃，可使50%甘油冰凍，而反復凍融會導致酶嚴峻失活。保存酶液的緩沖體系，不同的酶略有差異,但不外呼是50-100mMKCl即100mMTris-HClpH7.5,0.1mMEDTA,1mMDTT，同時加入BSA濃度至100-200μg/ml,以疼惜酶蛋白不失活。所用BSA質(zhì)量要求很高，確定不能含有核酸酶類的活性。酶活力單位的定義在50μl緩沖液中，于最適反應條件和溫度下保溫1小時，能將1μgDNA完全降解所需的酶量即為1個酶活單位。須要說明的是，所謂一個酶單位降解1μgDNA是指在測活時所用的特定反應體系和DNA種類下完成的，若鹽濃度、pH等因素，尤其是DNA的種類變更后，并不確定一個酶單位還能完全消化1μgDNA。如，降解1μg的pBR322所用的酶量要大于水解1μgλDNA所用的酶量。2T4DNA連接酶基因工程最常用的連接酶是T4DNA連接酶（T4DNAligase）,它可將兩段乃至數(shù)段DNA片段拼連起來，起到分子“縫合”的作用。該酶是從T4噬菌體感染的E.coli中分別得到的分子量為68KDa的單鏈多肽酶，它可催化一個DNA片段的3′羥基和另一個DNA片斷的5′磷酸基團之間形成磷酸二酯鍵，連接時須要ATP為幫助因子。該酶既可連接粘性末端，也可連接齊平末端，是應用最廣泛的連接酶。T4DNA連接酶最適反應溫度為37℃，但為了增加兩段DNA片段粘性末端互補堿基之間形成氫鍵的穩(wěn)定性，實際反應溫度一般為4～15℃。其它常用修飾酶DNA聚合酶分子克隆中常常會運用各種DNA聚合酶，從而在有模板存在時催化合成與模板序列互補的DNA產(chǎn)物。常用的DNA聚合酶有大腸桿菌聚合酶，大腸桿菌DNA聚合酶大片段（Klenow片斷）、T4DNA聚合酶，T7DNA聚合酶，耐高溫的DNA聚合酶（如TaqDNA聚合酶）,反轉(zhuǎn)錄酶等等。不同種類的DNA聚合酶來源不同，酶學特性及用途也各異，其應用涉及到DNA分子的體外合成，定點突變，DNA探針的標記，DNA序列測定，基因文庫的構(gòu)建，聚合酶鏈反應（PCR）等等諸多方面。T4多核苷酸激酶該酶可催化ATP的γ－磷酸基團轉(zhuǎn)移到DNA或RNA的5’一OH上?？煞譃檎蚍磻敖粨Q反應。該酶的一個用途是用同位素標記DNA片段的5’末端，反應底物包括化學合成的寡核苷酸片段的5’一OH和DNA酶切所得的5’粘端或平端，后者必需先用堿性磷酸酯酶去除5’一P，再加上γ－P，這種方法不適用于3’粘端。另一用途是在化學合成的寡核苷酸片段的5’一OH上加上磷酸基團，以便進行化學合成基因的拼連。堿性磷酸酶包括細菌堿性磷酸酶(BAP)和牛小腸堿性磷酸酶(CIP)，其作用是去除DNA、RNA、NTP和dNTP的5'磷酸根。在基因克隆時可用于去除載體DNA片斷的5’－P，以防載體自身環(huán)化；此外，在用32P－ATP對基因探針進行5’進行標記前，可用該酶去除其5’磷酸基團。基因工程載體目的基因（靶基因）必需與載體DNA重組后才能導入宿主細胞并進行擴增和表達，從而獲得大量的目的基因克隆以及表達產(chǎn)物。這種可將外源DNA載入宿主細胞的工具便稱為載體（vector）。一般作為基因工程載體須要滿足以下條件：1、能在宿主細胞中獨立復制繁殖；2、有確定的選擇標記，易于識別和篩選；3、可插入一段較大的外源DNA，而不影響其自身的復制；4、有合適的限制性內(nèi)切酶酶切位點，以便進行DNA重組與克隆。目前基因工程載體主要有三類：質(zhì)粒：各種質(zhì)粒，用于基因克隆與表達；噬菌體：λ噬菌體、粘粒、M13噬菌體等；病毒：SV40等。質(zhì)粒質(zhì)粒DNA是微生物細胞中分子量比染色體DNA小得多的共價、閉合、環(huán)狀雙鏈DNA分子（個別除外，如酵母自殺質(zhì)粒是RNA），是一種存在于染色體外的能自主復制的遺傳因子，質(zhì)粒通常帶有與細胞的主要代謝活動無關(guān)的一些基因，例如抗生素抗性基因，產(chǎn)生細菌素的基因，碳水化合物分解代謝的基因和誘發(fā)腫瘤的基因等等。由于質(zhì)粒的存在，宿主細胞往往被賜予新的表型，當把一個含抗藥性基因的質(zhì)粒轉(zhuǎn)入細胞之后，原來無抗藥實力的細菌則表現(xiàn)出抗藥新表型。質(zhì)粒的生物學性質(zhì)(1)質(zhì)粒的復制具備復制起點（原點）是DNA分子在宿主細胞中進行復制的一個必要條件。依據(jù)復制限制類型的不同質(zhì)粒分為嚴緊型質(zhì)粒與松弛型質(zhì)粒，前者受宿主細胞復制作用的嚴格限制，因此，每個細胞中只含有一至幾個拷貝；而后者則受宿主細胞的限制不嚴，它們在每個細胞中的數(shù)目可達10-500個拷貝，當用氯霉素抑制細胞蛋白質(zhì)合成時，質(zhì)?？截悢?shù)可擴增至數(shù)千個。現(xiàn)在運用的質(zhì)粒載體絕大多數(shù)都是松弛型質(zhì)粒。（2）質(zhì)粒不相容性（incompatibility)指在沒有選擇壓力的條件下，兩種親源關(guān)系親密的質(zhì)粒不能共存于同一宿主細胞中的現(xiàn)象。緣由是它們的復制子相同，所用的復制系統(tǒng)也相同，故在復制和支配到字細胞的過程中相互競爭。細菌生長幾個世代后，量少的質(zhì)粒就完全消逝。至今已發(fā)覺30個以上的不相容組，只有屬于不同不相容組中的質(zhì)粒才能共同存在于同一個宿主細胞中。（3）選擇標記當質(zhì)粒DNA轉(zhuǎn)化宿主細胞時，只有極少部分宿主細胞接受了DNA，所以須要利用質(zhì)粒編碼的選擇標記將轉(zhuǎn)化成功的宿主細胞（陽性克?。拇罅康乃拗骷毎泻Y選出來。質(zhì)粒最常用的選擇標記是抗生素抗性基因，這些抗性主要包括氨芐青霉素（Amp或Ap）、四環(huán)素(Tet)、氯霉素(Cm)、卡那霉素(Kan或Km)和新霉素（Neo）等。例如，對氨芐青霉素有抗性的質(zhì)粒，一般寫作Apr；而對該藥敏感的質(zhì)粒則寫作Aps。常見質(zhì)粒載體由于野生質(zhì)粒往往存在很多不足，因此現(xiàn)在運用的質(zhì)粒載體一般都是人工構(gòu)建的，從而使其滿足以下條件：1、其分子結(jié)構(gòu)中帶有多個單一限制酶切位點，2、構(gòu)建后的重組質(zhì)粒必需易于轉(zhuǎn)化；3、帶有一個以上強選擇性標記；4、分子量較小，屬松弛型復制限制，便于操作；5、宿主范圍小，無感染性。pUC系列載體是目前應用較廣的一組可用于克隆、測序和表達外源基因的特殊有用的載體系列。這類載體具有以下特征：（1）、高拷貝數(shù)，每個宿主細胞中拷貝數(shù)可達500-700個；（2）、在相應的宿主中可出現(xiàn)α互補，便于進行藍、白斑篩選；（3）、pUC系列載體是成對出現(xiàn)的，它們之間除多克隆位點排列方向相反外，其它并無區(qū)分。2007/10/10λ噬菌體結(jié)構(gòu)與性質(zhì)λ噬菌體分頭部和尾部，其DNA存在于頭部，當其尾部附著在大腸桿菌宿主表面時，其DNA通過尾部注入宿主菌。λ噬菌體基因組是一線性雙鏈DNA分子，長48502bp，含61個基因，其兩端各有長為12個堿基的互補單鏈。進入宿主后，粘性末端相連（此處稱COS位點）形成環(huán)狀DNA分子，依據(jù)噬菌體三個編碼基因（cI、cII、cro）產(chǎn)物間的平衡狀況進入溶菌或溶源生活周期。在溶菌方式中，環(huán)狀DNA分子被復制很多倍，λ噬菌體基因產(chǎn)物大量合成，并組裝成子代λ噬菌體顆粒，最終宿主細胞裂解，釋放出很多成熟的噬菌體顆粒。在溶源方式中，λ噬菌體DNA通過專一位點重組整合入宿主DNA分子中，隨宿主菌DNA一起復制并轉(zhuǎn)入子代細胞中。λ噬菌體DNA克隆載體λ噬菌體DNA可分為三個部分：左臂、右臂及中心區(qū)。溶菌生長所需的基因位于基因組的左、右臂，而溶源化生長所需的基因都集中在中心區(qū)，若用外源DNA置換這個區(qū)域的基因，并不影響噬菌體顆粒的形成。這便是λ噬菌體DNA可作為載體攜帶外源基因的基礎。野生型λ噬菌體DNA上有很多常用限制性酶切位點（如EcoRI、HindIII等），不能干脆作為載體，須要經(jīng)過人工改建才能成為有價值的克隆載體，改建工作包括：1、消退或變更λDNA必需區(qū)的不必要的限制性酶切位點；2、在可替代區(qū)構(gòu)建所需的酶切位點；3、其它結(jié)構(gòu)上的改建，以提高載體效用，如插入一個外源啟動子，使載體具有表達外源基因的功能等等。λ載體的種類λ載體可分為插入型和置換型兩大類，前者具有單一酶切位點可供外源DNA插入，后者有成對的酶切位點，兩酶切位點間的DNA片段可被外源DNA片段置換。常見的載體有λgt系列（置換型載體），常用于cDNA文庫構(gòu)建；Charon系列（分插入和置換兩種類型）,可容納0-24Kb大小的外源基因。λ載體的特點λ載體具有以下優(yōu)點：1、可攜帶較長的外源DNA片段，最長達18-22Kb;2、重組DNA分子包裝成噬菌體顆粒后具有更高的轉(zhuǎn)染實力；3、重組的噬菌體簡潔篩選和儲存。此外，為獲得較高的感染宿主實力，λDNA構(gòu)建的重組DNA分子必需包裝成完整的噬菌體顆粒，這對于保證基因文庫的完整性特殊重要。體外包裝是指人為地將重組DNA分子與高濃度噬菌體頭部前體、包裝蛋白和尾部蛋白混合，自動包裝成完整的噬菌體顆粒。包裝蛋白可以自己制備也可以從商家購買。粘粒（Cosmid）粘粒又稱柯氏質(zhì)粒，是構(gòu)建真核生物基因文庫的的重要載體。λ載體所克隆的外源片段通常不超過15-20Kb,然而有些真核基因含有多個內(nèi)含子，長度超過20Kb，為滿足克隆大片段的須要，于是構(gòu)建出粘粒載體。粘粒大小為4-6Kb,而插入片段則可大至29-45Kb。粘粒是由質(zhì)粒和λ噬菌體DNA的粘性末端構(gòu)建而成的載體。重組的粘?？蛇M行體外包裝，包裝好的顆?？捎行У馗腥敬竽c桿菌，這樣就避開了大質(zhì)粒轉(zhuǎn)化的困難，同時它在宿主菌內(nèi)也可象質(zhì)粒一樣復制增殖。粘粒是包含cos序列的質(zhì)粒，不能裂解宿主菌形成噬菌斑。在篩選重組子時，菌落篩選比嗜菌斑篩選所需試驗步驟多，一次篩選的菌落數(shù)也遠不及嗜菌斑多。因此，在構(gòu)建基因文庫時，首選λ噬菌體載體，只有在克隆大片段基因時才選用粘粒構(gòu)建基因文庫。粘粒在運用方法上與λ噬菌體載體有所區(qū)分。以粘粒pJB8DNA為例，首先建立兩個酶切反應，分別用HindIII和SalI進行消化。由于這兩個限制酶切位點分別位于cos位點的兩側(cè)，所以切割后便形成了“右邊”cos片段和“左邊”cos片段。用堿性磷酸酶進行處理以去除cos片段的5’-末端磷酸基團，以防止載體自連或載體與載體之間的連接。然后對上述去磷酸基團的cos片段反應物再用BamHI進行消化，這樣便可以得到具有BamHI粘性末端的cos片段（一個為大片段，另一個為小片段）。將這兩個大小大片段與MboI或Sau3A部分消化并作了脫磷處理的真核生物DNA（32～47Kb）進行混合連接。結(jié)果便會形成一種由“左邊”cos片段、一條長度為32～47Kb的插入片段和“右邊”cos片段組成的可包裝的重組DNA分子。轉(zhuǎn)化大腸桿菌宿主菌后便可以像質(zhì)粒一樣進行復制，并賜予宿主細胞氨芐抗性。用粘粒載體進行克?。ǚ椒ㄖ唬?/p>

M13噬菌體載體M13是一種絲狀的大腸桿菌噬菌體，只感染具有F因子的雄性E.coli，其基因組是一單鏈環(huán)狀DNA分子，全長6407個核苷酸。噬菌體單鏈DNA（+）鏈進入細胞后，便復制出與之互補的（-）鏈DNA，形成復制型雙鏈DNA（RFDNA），RFDNA通過滾環(huán)復制可積累100-200個RF拷貝，與此同時，（+）鏈積累，并被組裝成成熟的噬菌體顆粒，釋放至培育基中，但并不引起細菌裂解。被M13噬菌體感染的細菌生長緩慢，在平板培育基上形成渾濁的“嗜菌斑”。不僅M13噬菌體可以侵染細菌，而且其單鏈或RFDNA無需包裝也可干脆轉(zhuǎn)化雄性E.coli，這為M13用作基因工程載體供應了極大的便利。M13噬菌體載體M13mp18/19圖譜

M13噬菌體載體M13mp18/19多克隆位點序列mp載體系列皆由M13噬菌體改造而來，在M13基因II和基因IV之間的非編碼區(qū)插入LacZ的調(diào)控序列及其N端146個氨基酸編碼序列，以便利用α互補對重組子進行藍白斑篩選。在LacZ基因內(nèi)引入一多克隆位點（MCS）以便進行外源基因的克隆。如，M13mp18和M13mp19是一對常用載體，它們的唯一區(qū)分在于LacZ基因內(nèi)的多酶切位點依次正好相反。由于重組絲狀噬菌體的基因組趨于不穩(wěn)定，因此絲狀噬菌體載體并不用于外源DNA片段的常規(guī)克隆和增殖，主要用來制備已經(jīng)克隆于另一類載體（質(zhì)?；蚴染＃┲械腄NA片段的單鏈拷貝。RF型DNA可以象質(zhì)粒那樣進行分子操作，而單鏈DNA（ssDNA）分子則可以在下列工作中用作摸板：（1）雙脫氧鏈終止法進行DNA序列測定；（2）進行單鏈DNA探針的標記；（3）寡核苷酸定點誘變。動物病毒載體

病毒載體在昆蟲細胞及哺乳動物細胞的基因工程中應用較多，常見的哺乳動物細胞病毒載體有SV40（猿猴病毒）、BPV（牛乳頭瘤病毒）、反轉(zhuǎn)錄病毒、痘病毒等；昆蟲病毒載體有桿狀病毒等。SV40病毒基因組為共價閉合環(huán)狀DNA（cccDNA），長5243bp，基因組分早期和晚期兩個功能區(qū)，兩功能區(qū)間含DNA復制起始位點。早期區(qū)在整個裂解周期都被轉(zhuǎn)錄，并通過不同剪切方式產(chǎn)生大T和小t抗原的兩種mRNA；晚期區(qū)僅在DNA復制后才進行轉(zhuǎn)錄，編碼病毒外殼蛋白VP1、VP2、VP3。完整的SV40病毒粒子不須要改造便可作為克隆載體。一般以早期區(qū)取代與晚期區(qū)取代兩種取代方式構(gòu)建重組子。若晚期區(qū)被取代，則需用早期區(qū)域缺失的SV40突變種作為幫助病毒與之混合感染宿主，幫助病毒產(chǎn)生的晚期基因產(chǎn)物與重組病毒產(chǎn)生的早期基因產(chǎn)物一起形成完整的病毒顆粒，反之亦然。干脆用SV40作為載體有以下缺點：（1）、容量小，外源片段不大于2.5Kb；（2）、感染宿主范圍有限，只能在猴細胞中復制；（3）、用幫助病毒進行混合感染時，有可能發(fā)生重組產(chǎn)生野生型的SV40帶來緊急。因此，目前絕大多數(shù)試驗室所運用的SV40載體都是經(jīng)過改造的病毒載體質(zhì)粒。如pSV就是由SV40衍生出來的載體系列，同時將tk、dhfr、neo、cat等標記基因與pSV40質(zhì)粒重組，構(gòu)建出適用于不同目的的表達載體(pSV2-gpt、pSV2-neo、pSV2-dhfr)，這類載體適合在哺乳動物細胞中瞬時表達克隆的外源基因。目的基因的制備

要實現(xiàn)某一目的基因（靶基因）的表達，首先就必需克隆得到該基因?；蚩寺〉姆椒ê芏?，即使是同一類的方法也有可能在技術(shù)路途或微小環(huán)節(jié)技巧上有所差異。目前應用較多的基本方法主要有：1基因文庫的建立與篩選；2通過聚合酶鏈反應（PCR）方法得到；3人工化學合成方法制備。基因文庫的建立與靶基因的分別基因文庫（genelibrary或genebank）主要分兩類：基因組文庫和cDNA文庫，兩者獲得核酸的來源不同。基因組文庫是通過機械剪切或限制性酶消化將某種生物的基因組切成確定大小的片段，然后與合適的載體（λ噬菌體載體或粘粒）連接，并導入宿主細胞中進行擴增，從而獲得一群重組DNA克隆的混合物，其中包含了該生物的各種基因或基因組。原核生物和低等真核生物，由于基因結(jié)構(gòu)簡潔，基因組文庫可以作為干脆供應目的基因的來源。在高等生物中由于結(jié)構(gòu)基因是由外顯子（exon，蛋白質(zhì)編碼序列）與內(nèi)含子（intron,非蛋白質(zhì)編碼的間隔序列）排列組成的，其轉(zhuǎn)錄物須要經(jīng)過剪接（splicing）去除內(nèi)含子，使外顯子連接加工產(chǎn)生成熟的mRNA，為獲得完整的能干脆進行表達的真核生物編碼目的基因，就必需構(gòu)建cDNA（complementaryDNA）文庫。所謂cDNA是指以mRNA為模板，在反轉(zhuǎn)錄酶作用下合成的互補DNA，它是成熟mRNA的拷貝，不含有任何內(nèi)含子序列，可以在任何一種生物體中進行表達。將細胞總mRNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA并獲得克隆，由此得到的cDNA克隆群體便稱為cDNA文庫，它代表了某種生物的全部mRNA序列，即蛋白質(zhì)編碼信息。構(gòu)建cDNA文庫主要包括以下幾個步驟：（1）、mRNA的分別。真核細胞mRNA分子是單順反子，具5‘端帽子結(jié)構(gòu)（m7G）和3‘多聚腺苷酸(polyA)尾巴，這為mRNA的提取供應了極大的便利。目前，以利用寡聚脫氧胸苷酸（oligodT）-纖維素柱層析法提取最為常用，其原理是oligodT與polyA之間可形成氫鍵，從而將mRNA分子有效吸附。值得留意的是，提取的mRNA愈完整，構(gòu)建的cDNA文庫質(zhì)量也就愈高；其次是，提取的mRNA不能有DNA污染。（2）、cDNA第一條鏈的合成。利用Oligo-dT或6－10個核苷酸長的寡核苷酸隨機引物與poly(A)mRNA雜交，形成引物，在反轉(zhuǎn)錄酶AMV或MLV作用下，以mRNA為模板，利用4種脫氧核苷三磷酸（4dNTPS），從引物3‘端OH基起先合成sscDNA。（3）、cDNA其次條鏈的合成。堿處理去除DNA/RNA中的mRNA,sscDNA3’末端自身環(huán)化，形成發(fā)夾結(jié)構(gòu)，以此為引物在E.coliDNA聚合酶I或Klenow片段和反轉(zhuǎn)錄酶的共同作用下，利用4dNTPs完成cDNA其次條鏈的合成。在核酸酶S1作用下，將發(fā)夾結(jié)構(gòu)和另一端的單鏈切除。

（4）、cDNA與載體的連接。最常用的載體有λgt10和λgt11兩種。它們都具有供外源cDNA片段插入的EcoRI位點。由于合成的cDNA為平頭末端，需在其兩端加上EcoRI連接子，再經(jīng)EcoRI甲基化酶甲基化，以免在酶切產(chǎn)生粘性末端時cDNA內(nèi)部的EcoRI位點被切開。（5）、噬菌體的包裝及轉(zhuǎn)染或質(zhì)粒的轉(zhuǎn)化。若用質(zhì)粒作載體，cDNA與載體連接后可干脆轉(zhuǎn)化宿主細胞；若接受噬菌體作載體，必需體外包裝成噬菌體顆粒感染宿主菌。從cDNA文庫中篩選目的克隆主要有以下方法：（1）、核酸雜交。這是從cDNA文庫中篩選目的克隆的最常用、最牢靠的方法。依據(jù)靶蛋白純品的氨基酸序列，合成一組全部可能的簡并寡核苷酸序列，其中至少有一條會與目的cDNA克隆完全配對。用它作為探針可篩選出目的cDNA克隆。（2）、免疫法。在構(gòu)建cDNA文庫時，選用可使外源DNA表達的載體（如λgt10和λgt11等），文庫構(gòu)建后，可用靶蛋白的特異性抗體篩選目的cDNA克隆。除構(gòu)建cDNA文庫外，對于一些高豐度表達、簡潔純化的蛋白質(zhì)，可以干脆通過該蛋白質(zhì)的單克隆抗體純化該基因的核糖體，再洗脫下編碼該蛋白的特異mRNA，干脆反轉(zhuǎn)錄成cDNA，進行基因克隆，從而干脆獲得該特定基因的克隆。聚合酶鏈反應技術(shù)（Polymerasechainreaction，簡稱PCR）

PCR技術(shù)由Mullis于1985年創(chuàng)立，1987年獲得專利，1989年被美國著名Science雜志列為十項重大科技獨創(chuàng)之首，1993年獲諾貝爾化學獎。如今，PCR技術(shù)已成為分子克隆工作中必備的基本技術(shù)之一，并廣泛滲透到醫(yī)學分子基因診斷、法醫(yī)、考古學等諸多領域?？梢哉fPCR技術(shù)獨創(chuàng)給整個生命科學都帶來了一場革命，同時也為目的基因的快速克隆供應了一種有效的手段。PCR基本原理PCR技術(shù)可在短時間內(nèi)于試管中獲得數(shù)百萬個特異DNA序列的拷貝。它事實上是在欲擴增的目的DNA的兩側(cè)設計一對正向和反向引物，在模板DNA以及四種脫氧核糖核酸（4dNTPs）底物存在的條件下由TaqDNA聚合酶所引導催化的DNA擴增酶促反應。PCR由三個基本反應組成：（1）高溫變性（denaturation）:通過加熱使DNA雙螺旋的氫鍵斷裂，雙鏈解離形成單鏈DNA；（2）低溫退火（annealling）:使溫度下降，引物與模板DNA中所要擴增的目的序列的兩側(cè)互補序列進行配對結(jié)合；（3）適溫延長（extension）：在TaqDNA聚合酶、4dNTPs及Mg2+存在下，引物3’端向前延長,合成與模板堿基序列完全互補的DNA鏈。以上變性、退火和延長便構(gòu)成一個循環(huán)，每一次循環(huán)產(chǎn)物可作為下一次循環(huán)的模板，數(shù)小時之后（約25-30次循環(huán)），介于兩引物間的目的DNA片段便可擴增105-107拷貝。由此可知，我們可以利用目的基因兩側(cè)的核昔酸序列，設計一對和模板互補的引物，特殊便捷地以基因組ＤＮＡ、ｍＲＮＡ或己克隆在某一載體中的基因為模板擴增出所需的目的基因片段。如以真核生物總ＲＮＡ為模板則可獲得無內(nèi)含子及不帶調(diào)控序列的結(jié)構(gòu)基因。此外，通過在引物的５端添加額外的與模板不互補的所需ＤＮＡ序列，如限制性酶切位點、起始密碼子、核糖體結(jié)合位點、啟動子、終止密碼及終止子等，便可以將其引入目的基因中，從而便利進行目的基因的克隆、表達與調(diào)控探討。PCR反應的影響因素影響PCR反應的因素很多，概括起來主要有以下幾種：（1）引物。它在整個PCR擴增體系中占有特殊重要的地位，為了提高擴增效率和特異性，一般遵循下列原則：A、引物長度以15-30核苷酸為宜，過短會使特異性降低，過長則成本增加，且也會降低特異性；B、堿基應盡可能隨機分布，避開出現(xiàn)嘌呤、嘧啶積累現(xiàn)象，引物G+C含量應在45-55%左右；C、引物內(nèi)部無發(fā)夾結(jié)構(gòu)（發(fā)夾是指發(fā)夾柄至少有4個堿基，而發(fā)夾環(huán)至少有3個堿基）這種結(jié)構(gòu)尤其應避開在引物3’端出現(xiàn)。D、兩引物間應避開出現(xiàn)二聚體，因為一旦出現(xiàn)二聚體，引物就不能很好地與模板結(jié)合（二聚體是指引物序列之間至少有5個以上的堿基互補配對），尤其在引物3’端不應有2個以上堿基互補；E、引物3’端最好選A，其次選G、C，而不要選T；F、引物5’端可加上限制性酶切位點及疼惜堿基，以便擴增產(chǎn)物進行酶切和克隆。（2）模板。單鏈DNA（ssDNA）、雙鏈DNA（dsDNA）以及由RNA反轉(zhuǎn)錄成的cDNA均可作為PCR模板。模板DNA可是線性分子也可是環(huán)狀分子，然而前者略優(yōu)于后者。PCR對模板純度要求不嚴，樣品可以是粗提物，但不行混有任何DNA聚合酶抑制劑、核酸酶、蛋白酶及能結(jié)合DNA的蛋白質(zhì)。尿素、SDS、甲酰胺等也會嚴峻影響PCR反應效率。此外應避開交叉污染。（3）Mg2+濃度。TaqDNA聚合酶是一種Mg2+依靠酶，因此，反應體系中必需有Mg2+存在，然而保持適當?shù)腗g2+濃度特殊重要，因為Mg2+濃度過高或過低均會影響引物與模板的結(jié)合、模板與PCR產(chǎn)物的解鏈溫度、引物二聚體的形成以及酶的活性與精確性。（4）TaqDNA聚合酶。Taq酶的添加量必需適當,如過高會增加非特異性產(chǎn)物擴增，而酶量過低則又會降低產(chǎn)物量。此外，為了保證產(chǎn)物的正確率，可以接受高保真酶如Pfu酶、High-fidelityTaq酶等。（5）溫度循環(huán)參數(shù)。PCR涉及變性、退火、延長三個不同溫度和時間，每步反應時間不宜過長，以免降低TaqDNA聚合酶活性。變性溫度和時間一般為94℃和1分鐘,溫度過高、時間過長會降低TaqDNA聚合酶活性，破壞dNTP分子；退火的溫度和時間取決于引物的堿基組成、長度、引物與模板的匹配程度以及引物的濃度,典型的退火溫度和時間為50℃和1-1.5分鐘。延長的溫度一般為72℃，接近TaqDNA聚合酶的最適反應溫度75℃。延長時間與待擴增片段長度有關(guān)，一般1Kb以內(nèi)的片段，延長時間為一分鐘，如擴增片段更長，則可適當延長時間。最終一次循環(huán)的延長時間一般都再適當延長（7-10分鐘），以便全部PCR擴增產(chǎn)物合成完全。以上參數(shù)確定后，PCR循環(huán)次數(shù)主要取決于模板DNA濃度。一般循環(huán)25-35次為宜，循環(huán)次數(shù)過多會使PCR產(chǎn)物嚴峻出錯，非特異性產(chǎn)物大大增加。人工合成基因自從1983年美國ABI公司研制的DNA自動合成儀投放市場以來，通過化學合成寡核苷酸鏈獲得某些真核生物小分子蛋白或多肽的編碼基因已成為一種重要的基因克隆手段。然而，由于DNA自動合成儀只能合成單鏈的寡核苷酸鏈，如何才能獲得雙鏈的目的基因DNA呢？最簡潔的方法就是首先利用化學合成法分別合成兩條互補的寡核苷酸鏈，然后讓這兩條鏈在適當條件下退火，形成雙鏈。但是這種方法僅限于合成組裝較短的基因(60一80bp)，這是由于隨著寡核苷酸鏈合成長度的增加，出錯率也會增加，同時產(chǎn)物的得率也會下降。為了獲得較長的雙鏈DNA，人們嘗試接受了多種人工基因組裝方法

一種方法是先將設計好目的基因進行分段,每一片段間設計成4-6個bp互補的粘性末端,寡核苷酸鏈合成后先以T4多聚核苷酸激酶對其5’端進行磷酸化,彼此對應互補的寡核苷酸鏈退火后再以T4DNA連接酶連接另一種方法是合成一套包括一系列具有重疊區(qū)域的短的(約40一100bp)寡核苷酸鏈，在適當條件下退火，這樣就得到了包括全長基因、但每條單鏈上都有缺失的雙鏈DNA，然后再用E.coliDNA聚合酶Ⅰ補足缺失的片斷，并用T4DNA連接酶將它們之間的切口連接起來就得到了完整的目的基因。重組子的構(gòu)建目的基因必需與載體連接形成一種重組DNA分子，并轉(zhuǎn)入相應的宿主細胞后才能實現(xiàn)目的基因的克隆與表達。依據(jù)目的基因片段的來源與類型不同，可以實行不同的連接策略，目前應用較多的連接方式大致分為三種：粘端連接，平端連接和T-A克隆。粘端連接粘端連接是指目的基因與載體之間具有彼此互補的粘性末端，在較低的溫度下可以形成氫鍵，再通過T4DNA連接酶便可以連接成完整的重組DNA分子。為了讓基因連接入載體之后保持正確的方向，因此連接時一般實行定向克隆的策略，即對基因和載體分別接受不同的限制性酶進行切割，這樣載體就無法自連，且外源基因只能依據(jù)正確的方向插入載體才能形成重組DNA分子。有時限于條件假如只能用一種限制酶對基因和載體進行切割，為了防止載體自連酶切后可以先對載體進行脫磷處理，即用小牛腸堿性磷酸酶（CIP）或細菌堿性磷酸酶（BAP）對其進行處理，脫除其5’磷酸基團，這樣并不影響其與目的基因的連接。為了便利重組子的篩選，有時將外源基因插入載體的某個選擇性標記基因使其失活，這種策略稱為插入滅活法。平端連接有時為了滿足試驗設計的須要，必需進行DNA的平齊末端之間進行連接。這種連接方式的優(yōu)點是給不同ＤＮＡ分子之間的連接帶來了極大的便利，因為除內(nèi)切酶酶切ＤＮＡ干脆產(chǎn)生的平齊末端分子外，粘性末端通過確定的修飾也能產(chǎn)生平齊末端。然而，與粘性末端相比，平齊末端的連接效率較低。因此，在進行平齊末端連接時一般需加入更多的T4ＤＮＡ連接酶（一股為粘端連接的10-100倍）,同時適當提高ＤＮＡ底物濃度。TA克隆TA克隆是一種干脆將PCR基因產(chǎn)物進行快速克隆的方法，這一方法省略了諸如用Klenow酶或T4多聚激酶對PCR產(chǎn)物進行修飾的酶法修飾過程，大大提高了克隆效率。其原理是，在PCR反應過程中熱穩(wěn)定聚合酶（即Taq聚合酶）可以向PCR產(chǎn)物的3’末端加上一個不依靠于模板的腺苷酸（A）。利用這些末端突出的3’A，即可將PCR產(chǎn)物干脆插入到插入位點只有一個3’T突出的線性T載體分子。這種方法只限于PCR產(chǎn)物的克隆，且必需接受3’T突出的T-載體（如Promega公司的pGEM?-T載體等）。pMD18-T由pUC18載體改建而成，它消退了pUC18載體上的多克隆酶切位點，再在pUC18載體的多克隆酶切位點處導入了EcoRV酶切位點，運用EcoRV進行酶切反應后，再在兩側(cè)的3＇端添加“T”而成。因大部分耐熱性DNA聚合酶進行PCR反應時都有在PCR產(chǎn)物的3＇末端添加一個“A”的特性，所以運用本制品可以大大提高PCR產(chǎn)物的連接、克隆效率。本載體盡管消退了LacZ基因上的多克隆酶切位點，但不影響β-半乳糖苷酶的正常表達，因此，PCR產(chǎn)物克隆后仍可以利用α-互補性進行藍白菌落的篩選，選擇陽性克隆。由于本載體上消退了多克隆酶切位點，克隆后的PCR產(chǎn)物將無法運用載體上的限制酶切下，須要在PCR擴增引物上導入合適的酶切位點。此時假如運用PCR擴增引物導入的酶切位點進行DNA酶切時，酶切反應將不會受到T載體上其它多克隆酶切位點上的限制酶影響，可以大大提高酶切效率，增加亞克隆成功率。由于本載體以pUC18載體為基礎構(gòu)建而成，所以它具有同pUC18載體相同的功能?；?qū)爰夹g(shù)重組ＤＮＡ分子必需導入合適的宿主細胞中才能進行復制、增殖和表達。依據(jù)不同的轉(zhuǎn)移對象與宿主類型，目前已發(fā)展出很多種轉(zhuǎn)移方法，下面主要介紹一些常見的和有代表性的方法。基因?qū)胛⑸锛毎D(zhuǎn)化(transformation）是指微生物細胞干脆吸取外源ＤＮＡ的過程，而通過轉(zhuǎn)化接受了外源DNA的細胞稱為轉(zhuǎn)化子。在分子克隆中，宿主細胞需經(jīng)人工處理成能吸取重組DNA分子的敏感細胞才能用于轉(zhuǎn)化，這時的細胞稱為人工感受態(tài)細胞。Cohn（1972）證明，將細菌處于0℃的CaCl2低滲溶液中，細胞膨脹成球型（感受態(tài)），經(jīng)４２℃短時間熱沖擊后，細胞可吸取外源DNA，在豐富培育基上生長數(shù)小時后，球狀細胞復原，并分裂增殖。在選擇性平板上即可選出轉(zhuǎn)化子。Ca2＋處理的感受態(tài)細胞，－般每微克DNA可獲得107-108個轉(zhuǎn)化子。此外，還發(fā)展出氯化鈣／氯化蜘法、氯化鈣／氯化錳法、氯化鎂法等。除化學法轉(zhuǎn)化細菌外，還可接受高壓脈沖電擊轉(zhuǎn)化法，電擊法不須要預先誘導細菌的感受態(tài)，依靠短暫的電擊，促使DNA進入細菌。轉(zhuǎn)導與轉(zhuǎn)染作用入噬菌體載體所構(gòu)建的重組DNA分子可以干脆感染進入E.coli寄主細胞內(nèi)，這叫轉(zhuǎn)染（transfection）,但轉(zhuǎn)移效率很低，難以達到試驗要求。為了提高轉(zhuǎn)移效率，重組的入噬菌體DNA或重組的粘粒DNA必需包裝成完整的噬菌體顆粒，通過和順噬菌體顆粒的釋放和感染將重組DNA轉(zhuǎn)移至宿主內(nèi)，這稱為轉(zhuǎn)導（transduction），而通過轉(zhuǎn)導接受外源DNA的細胞則稱為轉(zhuǎn)導子。所謂和順噬菌體是指既能進入溶菌生長周期，又能進入溶源生長周期的噬菌體，而烈性噬菌體是指只具有溶菌生長周期的噬菌體?；?qū)雱又参锛毎S著高等動植物細胞基因工程的發(fā)展，人們獨創(chuàng)了多種基因轉(zhuǎn)移技術(shù)，依據(jù)原理不同，主要可分為物理方法、化學方法和生物學方法三大類方法優(yōu)點缺點物理方法

顯微注射基因槍很有效很有效技術(shù)困難需專門儀器電穿孔適用于懸浮細胞需專門儀器化學方法

磷酸鈣共沉淀法脂質(zhì)體法二乙胺乙基葡聚糖簡單簡單，很有效簡單不適合懸浮細胞不適合懸浮細胞僅用于瞬時表達生物學方法

反轉(zhuǎn)錄病毒法原生質(zhì)體融合法很有效適用于懸浮細胞宿主范圍限制結(jié)果不穩(wěn)定顯微注射顯微注射技術(shù)是利用顯微操作儀(micromanipulator)通過顯微操作將外源基因干脆注入細胞核內(nèi)的一項技術(shù)，它常用于制備轉(zhuǎn)基因動物。注射時首先用口徑約100μm的細玻璃管吸住受精卵細胞，然后再用口徑為1~2μm的細玻璃針刺入細胞核將DNA注入。基因槍基因槍(genegun)技術(shù)是將外表附著有DNA的、高速運動的微小金屬顆粒射向靶細胞，金屬顆粒穿過細胞壁和細胞膜，同時將DNA分子引入受體細胞，這種顆粒直徑為0.2～0.4μm，由鎢或金制成?；驑尲夹g(shù)可應用于動物細胞、真菌，尤其是植物細胞的轉(zhuǎn)化。它可以轉(zhuǎn)化植物細胞的懸浮細胞、愈傷組織、未成熟胚、甚至是未成熟的花序。電穿孔電穿孔(electroporation)是指在高壓電脈沖的作用下使細胞膜上出現(xiàn)微小的孔洞，外界環(huán)境中的DNA穿孔而入進入細胞最終進入細胞核內(nèi)部的方法。該方法既適合于貼壁生長的細胞也適用于懸浮生長的細胞，既可用于瞬時表達也可用于穩(wěn)定轉(zhuǎn)染。對于不同的細胞須要接受不同的電擊電壓和電擊時間。磷酸鈣共沉淀法磷酸鈣共沉淀法（calciumphosphateco-precipitation）是通過使DNA形成DNA-磷酸鈣沉淀復合物，然后粘附到培育的哺乳動物細胞表面，從而快速被細胞所捕獲的方法?；具^程是將溶解的DNA加在Na2HPO4溶液內(nèi)，再漸漸加入CaCl2溶液，當Na2HPO4與CaCl2形成磷酸鈣沉淀時，DNA被包袱在沉淀之中，形成DNA-磷酸鈣共沉淀物，當該沉淀物與細胞表面接觸時，細胞則通過吞噬作用將DNA攝入其中。該法的優(yōu)點是方法簡潔，且可以進行共轉(zhuǎn)化，即將不含選擇標記的DNA和含選擇標記的DNA放在一起形成混合的共沉淀物，一起導人細胞；其不足在于不太適用于懸浮細胞的轉(zhuǎn)染。脂質(zhì)體法通過脂質(zhì)體（lioposome）包袱DNA并將其載入細胞的方法，具有方法簡潔、試驗結(jié)果牢靠、可重復性強的優(yōu)點。目前市場上已有多種脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑出售。這些試劑都是基于合成的陽離子脂質(zhì)形成一薄層脂質(zhì)體，它與DNA形成復合物，這些復合物快速被細胞吸取。應用這種方法，已成功地將外源DNA在多種不同的細胞中進行了有效表達。二乙胺乙基葡聚糖轉(zhuǎn)染技術(shù)二乙胺乙基葡聚糖(DEAE-Dextran)是一種高分子量的多聚陰離子試劑，它能促進哺乳動物細胞捕獲外源DNA，但其機理還不清晰，可能是由于葡聚糖與DNA形成復合物而抑制了核酸酶對DNA的作用，也可能是葡聚糖與細胞結(jié)合而引發(fā)了細胞的內(nèi)吞作用。它與磷酸鈣共沉淀法比較有3點不同:①它一般用于克隆基因的瞬時表達，不易形成穩(wěn)定轉(zhuǎn)化細胞系；②由于它對細胞有毒性作用，造成有些細胞系轉(zhuǎn)染效率很高，而其它細胞轉(zhuǎn)染效率則不志向；③DEAE-Dextran可用于轉(zhuǎn)染小量DNA。反轉(zhuǎn)錄病毒感染通過反轉(zhuǎn)錄病毒（retrovirus）感染可以將基因轉(zhuǎn)移并整合到受體細胞核基因組中，它是各種基因轉(zhuǎn)移方法中最有效的方法之一，具有轉(zhuǎn)移率高、感染率高和高度整合的特點，尤其適用于處于多細胞發(fā)育階段的胚胎。但反轉(zhuǎn)錄病毒載體容量有限，只能轉(zhuǎn)移小片段DNA（≤10kb），因此，轉(zhuǎn)入的基因很簡潔缺少其相鄰的調(diào)控序列。原生質(zhì)體融合法植物細胞和微生物細胞具有堅韌的細胞壁，首先須要用酶將其去除后制得原生質(zhì)體，然后再將外源基因與原生質(zhì)體混合，在PEG作用下經(jīng)短暫的共培育，即可將外源基因?qū)爰毎麅?nèi)。1982年，Kren首次應用該法將一段T-DNA轉(zhuǎn)入煙草原生質(zhì)體中，并獲得轉(zhuǎn)化植株。至此，在PEG作用下已實現(xiàn)多種植物細胞原生質(zhì)體的轉(zhuǎn)化。陽性克隆的篩選與鑒定當重組DNA分子通過轉(zhuǎn)化或轉(zhuǎn)染等手段導入宿主細胞后，必需從大量的宿主細胞群體中篩選出我們所須要的陽性重組子，并對其進行進一步鑒定與分析。為了提高篩選效率，減輕工作量，降低成本，建立一個好的篩選模型特殊重要。因此，在進行基因克隆試驗設計時首先必需考慮重組子的篩選方案，依據(jù)目的基因的特性，選擇合適的載體與宿主細胞。重組子的篩選與鑒定方法很多，現(xiàn)分述如下。依據(jù)遺傳表型差異進行篩選由于外源基因的插入使得載體分子上的一些篩選標記基因的失活，從而導致宿主細胞的某些遺傳表型的變更，通過在平板中添加一些相應的篩選物質(zhì)，便可干脆篩選出重組子菌落。A抗藥性篩選在含有兩個抗藥性基因的載體中，插入失活其中一個基因，再用兩個不同抗性平板比照篩選出重組子。如pBR322載體含有Tc、Ap雙抗藥性，在PstⅠ位點插入外源基因后，會導致Ap抗性基因失活。因此，重組子表型為Tcr，Aｐs，而含pBR322的細菌表型為Tcr，Aｐr。Bβ－半乳糖酶顯色反應選擇某些質(zhì)粒如pUC、pGEM系列載體，質(zhì)粒含一來自E.coliLac操縱子的DNA片段（其中含一多克隆位點，以便插入外源基因），在誘導物IPTG（異丙基-β-D-硫代半乳糖苷）存在下，位于誘導型啟動子Plac下的編碼區(qū)可表達lacZ，基因產(chǎn)物—β半乳糖苷酶的N端片段（α-肽，含145個氨基酸），而相應的宿主細胞可編碼β－半乳糖苷酶的C端片段，雖然它們各自都沒有酶活性，但融為一體后便具有酶活性（α-互補），從而可將無色的X-gal（5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-半乳糖苷）水解變成蘭色。因此，當多克隆位點插入外源基因時，宿主菌菌落顯白色（陽性克?。环粗?，顯蘭色（陰性克?。噬菌斑形成實力以λ噬菌體載體進行克隆時，重組DNA分子大小必需在野生型λDNA長度的78%－105%范圍內(nèi)，才能在體外包裝成具有感染力的噬菌體顆粒，感染宿主菌后形成清晰的噬菌斑。沒有外源DNA插入的載體不能包裝成噬菌體顆粒，不能感染細菌形成噬菌體，從而達到初步篩選的作用。依據(jù)重組子的結(jié)構(gòu)特征進行篩選A快速裂解菌落比較重組DNA分子大小本法是初步篩選插入片斷較大的重組子的常用方法。具體過程是干脆從平板上挑取菌落裂解獲得質(zhì)粒后，不經(jīng)內(nèi)切酶消化，干脆進行凝膠電泳，與原載體比較電泳遷移率，依據(jù)其它電泳遷移率的差別進行鑒定，初步判別是否有插入片斷存在。B限制性內(nèi)切酶分析即快速提取質(zhì)粒DNA，用限制性內(nèi)切酶進行雙酶切，將酶切產(chǎn)物進行凝膠電泳分析，與分子量標準作比照，依據(jù)片段的大小和酶譜特征推斷是否為陽性克隆。C原位雜交依據(jù)核酸分子雜交原理，即具有確定同源性的兩條核酸單鏈在確定條件下可按堿基配對的原則退火形成雙鏈（這一過程特殊特異），利用基因探針檢出培育板上陽性重組子菌落位置的技術(shù)。其基本過程是，接受印跡技術(shù)將平板上的菌落轉(zhuǎn)移至一種支撐膜（如硝酸纖維素濾膜）上，堿處理裂解濾膜上的細菌并使其DNA變性，并原位結(jié)合于濾膜上（變性的DNA與濾膜間具有很強的親和力）。真空烘烤固定濾膜上DNA。將帶有DNA印跡的濾膜與放射性標記的DNA或RNA探針雜交，雜交后洗去未雜交的探針，干燥后進行放射自顯影，含有與探針互補的DNA的菌落，在Ｘ光片上出現(xiàn)黑色斑點，依據(jù)斑點位置與原平板比照，即可從平板上挑出陽性重組菌落。此法稍加修改后，就可適用于重組體噬菌斑的篩選。原位雜交法的優(yōu)點在于可進行大量篩選（－次可篩５×105－５×106個茵落或噬菌斑），因此該法是從基因文庫中篩選陽性克隆的首選方法。DPCR篩選法依據(jù)目的基因兩端已知核苷酸序列設計合成一對引物，依據(jù)試驗目的與要求的不同快速抽提宿主細胞質(zhì)粒DNA或染色體DNA作為模板進行PCR擴增反應，將擴增反應產(chǎn)物進行凝膠電泳分析，若出現(xiàn)特異片斷的擴增條帶，即說明該克隆為陽性克隆。該法快速、靈敏、簡潔易行，廣泛應用于陽性重組子的篩選。DNA序列測定基因的功能以及調(diào)控取決于其堿基排列依次，因此，對目的基因進行測序是探討該基因的結(jié)構(gòu)、功能的前提，同時也是發(fā)覺異樣基因的依據(jù)。通過DNA序列分析可以精確構(gòu)建出DNA限制酶譜；了解蛋白質(zhì)編碼區(qū)上下游調(diào)控序列，探討目的基因的表達；可以確證基因誘變后特異的堿基變更，從而進一步了解蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)和功能的關(guān)系等等。DNA序列測定（DNAsequencing）就是通過確定的試驗方法確定DNA上核苷酸的排列依次。測序技術(shù)主要有Sanger等（1977）創(chuàng)立的雙脫氧鏈末端終止法以及Maxam和Gilbert（1977）創(chuàng)立的化學降解法，而前者是目前應用最為廣泛的方法，其獨創(chuàng)人Sanger也因此突出貢獻而榮獲諾貝爾獎雙脫氧鏈末端終止法的原理DNA序列測定是建立在高辨別率變性聚丙烯酰胺凝膠電泳的基礎上的，該電泳系統(tǒng)可以辨別僅相差一個堿基的寡核苷酸鏈。該方法以單鏈DNA為模板，在DNA聚合酶的作用下，一條與單鏈DNA為模板特定區(qū)域結(jié)合的引物（測序引物）就會向3’端延長，即按堿基互補的原則將2'-脫氧核糖核苷酸（dNTPs）添加到引物的3’－OH末端，精確合成出單鏈模板的互補鏈，但同時由于ddNTPs（其5’磷酸基團正常，3’－OH由于脫氧而不存在，因此它可以加到正常的核苷酸的3’末端，但不行以通過與下一個核苷酸形成3’,5’－磷酸二酯鍵）的存在，假如在某一位點摻入了ddNTP，DNA鏈的延長便會在該處被終止。由于雙脫氧核苷酸的種類不同，摻入的位置也不同，因而就造成了在不同的位點終止的長度不同的互補鏈。這樣在高辨別率的聚丙烯酰胺凝膠電泳上就可以將它們區(qū)分開來，從而判讀出互補鏈的序列。雙脫氧鏈末端終止法的方法步驟（1）分別單鏈DNA模板?？赏ㄟ^M13噬菌體載體克隆中制備，也可由雙鏈DNA變性獲得。（2）在4只試管中加入適當?shù)囊锱c單鏈模板結(jié)合，加入4種dNTP（包括一種放射性標記dNTP,如以32P或35S標記的dATP作為示蹤物）和DNA聚合酶，再在4只試管中分別加入一種確定濃度與ddNTP（雙脫氧核苷酸）。（3）與單鏈模板結(jié)合的引物，在DNA聚合作用下從5'端向3'端延長，32P或35S隨引物延長摻入到新合成鏈中，當dNTP摻入時，由于其脫氧核糖3'位上缺少羥基，故不能接著與下一個dNTP形成磷酸二酯鍵，鏈的延長就終止。由于ddNTP是隨機摻入的，因而可以產(chǎn)生一系列不同大小的終止于該特定堿基的核苷酸鏈。（4）高辨別率變性聚丙烯酰胺凝膠凝膠電泳分別四組反應產(chǎn)物，然后進行放射自顯影便得到四組分別終止于四種ddNTP的寡核苷酸鏈的電泳譜帶，由此可讀出與模板鏈互補的寡核苷酸鏈序列。DNA自動化測序由于在測序技術(shù)建立初期都是接受同位素標記，手工測序，這樣每次只能讀200～300個堿基序列，且費時費勁。為此，人們起先探討自動化測序技術(shù)。DNA序列分析自動化探討方面的重要進展是：一，JK·Elder等人（1988）提出了DNA序列放射自顯影圖片自動判讀法，避開了堿基依次抄、讀、寫過程中可能出現(xiàn)的人為的錯誤，并可對復合的電泳譜帶作出客觀的推斷；二，建立了無放射性標記的DNA序列自動分析系統(tǒng)，該方法運用4種不同顏色的熒光染料分別標記4種不同的堿基，并在一個凝膠電泳的泳道中進行電泳，然后通過激光作用誘發(fā)熒光，達到檢測堿基的目的。激光檢測器把收集到的信息傳到電腦，計算機會自動顯示或打印出堿基依次，這樣一個泳道一次電泳可讀出450左右個堿基，一塊凝膠36個泳道可測36×450約16200個堿基，大大加快了測序的速度。后來又獨創(chuàng)了一種用毛細管電泳代替凝膠電泳的方法，可大大加快電泳的速度和辨別率，并可實現(xiàn)自動灌膠和自動進樣?；虮磉_基因工程的最終目的是在合適的宿主系統(tǒng)中使目的基因獲得高效表達，從而生產(chǎn)出有重要價值的目的蛋白質(zhì)多肽。所謂基因表達包括轉(zhuǎn)錄、翻譯及翻譯后加工等過程?；蚬こ桃罁?jù)宿主細胞種類不同，分為原核基因工程與真核基因工程兩大類。原核基因工程則以原核細胞作為表達宿主，如大腸桿菌、枯草桿菌等；而真核基因工程則以真核細胞為表達宿主,如酵母,昆蟲細胞、哺乳動物細胞、植物細胞等。ExpressionofaeukaryoticproteininE.coli大腸桿菌表達大腸桿菌表達系統(tǒng)雖然不能象真核系統(tǒng)那樣進行翻譯后加工，但它具有遺傳背景比較清晰、運用平安、技術(shù)操作簡便、探討周期短、大規(guī)模發(fā)酵經(jīng)濟等優(yōu)點，因此仍是目前運用最廣泛、最成功的基因表達系統(tǒng)。轉(zhuǎn)錄與翻譯水平上的基因調(diào)控序列（元件）啟動子與終止子啟動子是DNA鏈上一段能與RNA聚合酶結(jié)合并啟動mRNA合成的場40-50bp的序列。它是基因表達不行缺少的重要調(diào)控序列，沒有啟動子就不能實現(xiàn)基因的轉(zhuǎn)錄。原核生物啟動子包括兩個高度保守區(qū)域，一是Pribnowbox，位于起始位點上游5-10bp處，由6-8bp組成，富含A、T，故又稱為TATAbox或-10區(qū)，來源不同的啟動子，Pribnowbox的堿基序列稍有變更；另一個是-35區(qū)，位于轉(zhuǎn)錄起始位點上游-35bp處，一般由10bp組成。-35區(qū)供應了RNA聚合酶識別信號，-10序列則有利于DNA局部雙鏈解開。啟動子有強弱之分，強啟動子與RNA聚合酶結(jié)合緊密，可使基因獲得高水平轉(zhuǎn)錄，而弱啟動子則相反。原核生物RNA聚合酶不能識別真核細胞啟動子，因此只有將真核基因置于原核生物強啟動子下游才能實現(xiàn)高效轉(zhuǎn)錄。大腸桿菌常用的強啟動子有Lac（乳糖啟動子）、Trp（色氨酸啟動子）、Tac（乳糖和色氨酸的雜合啟動子）、

PL（噬菌體左向啟動子）、T7（T7噬菌體啟動子）等。終止子是指一個基因或操縱子3’末端能有效終止轉(zhuǎn)錄的一段特定的DNA序列。在構(gòu)建基因表達載體時，為了防止過度轉(zhuǎn)錄而引起載體不穩(wěn)定，以及雜蛋白的合成，一般在外源基因下游插入一強轉(zhuǎn)錄終止子（rrnb核糖體RNA轉(zhuǎn)錄終止子）。大腸桿菌的轉(zhuǎn)錄終止有依靠與不依靠蛋白兩種形式，在構(gòu)建表達載體時最好選用后者。SD（Shine-Dalgarno）序列大腸桿菌核糖體結(jié)合位點對外源基因的高效表達特殊重要。在翻譯過程中，mRNA必需先與核糖體結(jié)合才能進行蛋白質(zhì)合成。mRNA分子上有兩個核糖體結(jié)合位點，一個是起始密碼AUG，另一個是起始密碼AUG上游3-11bp處的序列，后者由ShineJ及DalgarnoL發(fā)覺，故稱為SD序列。SD序列富含嘌呤核苷酸，剛好與16srRNA3’末端的富含嘧啶的序列互補，可促進mRNA與核糖體結(jié)合，提高翻譯效率。SD序列與起始密碼子之間的距離，也是mRNA翻譯效率的重要因素。有人指出，SD序列與AUG之間的最佳距離為93bp。Marqiusv等發(fā)覺當Lac啟動子的SD序列距AUG7個核苷酸時，IL-2表達量最高，為2581單位，而間隔8個核苷酸時，表達量不足5個單位。另一個影響外源基因mRNA翻譯效率的重要因素是mRNA二級結(jié)構(gòu)，尤其是mRNA5’端TIR（翻譯起始區(qū)域：指SD序列AUG之間及其上、下游旁邊的部位）的二級結(jié)構(gòu)。通過削減二級結(jié)構(gòu)的形成（尤其是TIR前后100-200bp范圍內(nèi)的二級結(jié)構(gòu)），可以提高mRNA翻譯水平。原核表達系統(tǒng)強啟動子目前在原核表達系統(tǒng)中，運用最普遍的可調(diào)控強啟動子主要有以下四個：Lac啟動子Lac啟動子來源于E.coli乳糖操縱子。乳糖操縱子由阻遏蛋白基因（LacI）、啟動子（P）、操縱基因（O）和編碼三個與乳糖利用有關(guān)的酶（-半乳糖苷酶、滲透酶、轉(zhuǎn)乙?；福┑慕Y(jié)構(gòu)基因組成。在啟動子區(qū)域內(nèi)還有一個能與CAP-cAMP(活化蛋白-cAMP)復合物結(jié)合的部位，稱做CAP結(jié)合位點，位于I基因和P基因之間。乳糖操縱子參與分解代謝系統(tǒng)中的負調(diào)控和阻遏物負調(diào)控。一方面，在缺乏乳糖（或其它誘導物如IPTG）時，I基因產(chǎn)物（Lac阻遏蛋白）與操縱基因結(jié)合，轉(zhuǎn)錄受抑制。但在乳糖存在下，可解除轉(zhuǎn)錄的阻遏作用；另一方面，在葡萄糖缺乏時，cAMP的濃度上升，與CAP形成復合物，該復合物與啟動子上游區(qū)域結(jié)合，刺激轉(zhuǎn)錄。野生型Lac啟動子要啟動轉(zhuǎn)錄，需具備兩個條件，即要有活化蛋白和cAMP等正調(diào)控因子，以及乳糖或IPTG等解除負調(diào)控的物質(zhì)的同時存在。但在實際應用時常用Lac-UV5(一個突變的乳糖啟動子),它比野生型的Lac啟動子更強，且對分解產(chǎn)物抑制不敏感，可以不須要活化蛋白CAP和cAMP，在僅有乳糖或

IPTG存在時，就可進行轉(zhuǎn)錄。Trp啟動子Trp啟動子來源于E.coli色氨酸操縱子，具有兩種調(diào)控方式:一種調(diào)控方式是調(diào)整基因產(chǎn)生阻遏蛋白與色氨酸結(jié)合成為活性阻遏蛋白，它與操縱基因結(jié)合即可阻擋轉(zhuǎn)錄。缺乏色氨酸時阻遏被解除，作用機制類似于對Lac的負調(diào)控。另一種調(diào)控方式是通過啟動子與結(jié)構(gòu)基因間的衰減子實現(xiàn)的，當宿主內(nèi)色氨酸缺少時，轉(zhuǎn)錄可以通過衰減子所在區(qū)域干脆進行到結(jié)構(gòu)基因，反之當細胞內(nèi)色氨酸豐富時，轉(zhuǎn)錄則進行到衰減子區(qū)域則停止。－吲哚丙烯酸是色氨酸的競爭性抑制劑，可與阻遏蛋白結(jié)合，阻擋色氨酸與之結(jié)合而使轉(zhuǎn)錄順當進行。用于原核表達的Trp啟動子通常去除衰減子基因，這樣可提高其轉(zhuǎn)錄水平，成為強啟動子。Tac啟動子Tac啟動子是來源于Lac和Trp的一組雜合啟動子，是特殊強的啟動子。TacI由trp的-35區(qū)域和LacUV5的-20區(qū)域構(gòu)成；tacII由trp-35區(qū)（一段合成的包括Pribnow盒在內(nèi)的46bpDNA片段）和lac操縱基因構(gòu)成；tac12由trp的-35區(qū)與lac的-10區(qū)域構(gòu)成。全部tac啟動子都可被IPTG誘導，同時受lac阻遏蛋白的調(diào)控。PL和P