動物實驗報告

實驗一大、小鼠的基本實驗操作一、實驗?zāi)康?通過實際操作，掌握大、小鼠的普通操作辦法，涉及大、小鼠的抓取和固定、性別鑒定、給藥、采血.二、實驗動物：昆明小鼠4只（2雌2雄)、大鼠4只（2雌2雄）、灌胃器2個、注射器4個、酒精、棉球、生理鹽水、小鼠固定器1個、大鼠固定器1個。三、實驗環(huán)節(jié)1、抓取和固定1抓取：左手抓小鼠的尾根部2固定：左手抓住小鼠的尾根部，讓小鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部,右手的拇指和食指抓住小鼠兩耳及其間的頸部皮膚，小指和無名指將尾巴固定在手掌面。3同樣操作將大鼠抓取和固定2、性別鑒定：1抓取和固定小鼠2觀察肛門與生殖器間的距離和兩者之間的毛發(fā)。雄性：距離長,毛發(fā)密（和其他部位同樣）;雌性：距離短，毛發(fā)稀疏.3同樣鑒別辦法，重復(fù)鑒別大鼠。給藥灌胃法3.1.1按對的辦法用左手抓取和固定小鼠，使腹部朝上,頸部拉直。3.1.2固定后，右手持持接灌胃針的注射器吸取藥液（或事先將藥液吸好），將針頭從口角插入口腔內(nèi)，然后用灌胃針頭壓其頭部，使口腔與食管成始終線，再將灌胃針頭沿上腭壁輕輕進(jìn)入，轉(zhuǎn)動針頭刺激動物吞咽，然后沿咽后壁慢慢插入食道。3.1.3當(dāng)感覺有落空感時表明灌胃針可能進(jìn)入胃內(nèi)，向外抽動注射器活塞，感覺有負(fù)壓,此時可將藥液灌入。3.1。3用大鼠重復(fù)同樣操作注射給藥1皮下注射1用左手拇指和食指輕輕提起動物頸后肩胛間皮膚，3.2.1。2右手持注射器，使針頭水平刺入皮下，針頭能自由撥動無牽阻，推送藥液時注射部位隆起。撥針時，以手指捏住針刺部位3。2。1.3用大鼠重復(fù)同樣操作2腹腔注射1以左手固定小鼠，使腹部向上，2右手持注射器從下腹兩側(cè)向頭方刺入皮下，針頭稍向前，再將注射器沿45角斜向穿過腹肌進(jìn)入腹腔，此時有落空感,回抽無回血或尿液，即可注入藥液。3用大鼠重復(fù)同樣操作3尾靜脈注射1先將動物固定在暴露尾部的固定器內(nèi)，2用75％酒精棉球重復(fù)擦拭尾部使血管擴張，3以左手拇指和食指捏住鼠尾兩側(cè)，用中指從下面托起鼠,右手持注射器，使針頭盡量采用與尾部平行的角度進(jìn)針，從尾末端處刺入.4注入藥液，無阻力，表達(dá)針頭已進(jìn)入靜脈,注射后把尾部向注射側(cè)彎曲,或拔針后隨即以干棉球按住注射部位以止血。4用大鼠重復(fù)同樣操作4取血1內(nèi)眥取血：1左手固定小鼠，食指和拇指輕輕壓迫頸部兩側(cè)，使眶后動靜脈充血。4.1。2右手持毛細(xì)采血管，以45度從內(nèi)眼刺入，并向下旋轉(zhuǎn)，感覺刺入血管后，再向外邊退邊吸,使血液順承血管自由流入小管中，4。1。3當(dāng)?shù)玫?.5ml血量后,放松加于頸部的壓力，并拔出采血器,以防穿刺孔出血4.1。4用大鼠重復(fù)同樣操作五、實驗討論1、小鼠抓取的感受：小鼠性情較溫順，普通不會咬人，比較容易抓取固定.大鼠抓取辦法基本同小鼠，抓大鼠時若操作者不純熟，或者大鼠特別兇猛，操作者最佳戴上防護(hù)手套(帆布或硬皮質(zhì)均可)。如若是灌胃、腹腔注射、肌肉和皮下注射時，可采用與小鼠相似的手法2、小鼠尾靜脈注射感受：1尾靜脈注射時,可用45～50度的溫水浸潤半分鐘或用酒精擦拭，可使血管擴張，同時也可軟化表皮角質(zhì).2如重復(fù)注入,應(yīng)盡量從尾末端開始，后來向尾根部方向移動注射先遠(yuǎn)后盡，不要一開始就從尾根部,失敗了無法選用注射部位；再次,進(jìn)血管后注意保持穩(wěn)定，針尖很容易刺穿血管的。3尾靜脈就在尾巴的正左右兩邊，先用酒精用力擦，能夠去掉部分角質(zhì)，然后按住近心端讓充血,就很容易看到了。灌胃1針頭插入食道過程中,若動物掙扎厲害，應(yīng)退出后灌胃針，待動物安靜后重新插入。切不可強行插入，以免損傷食道或誤入氣管造成動物死亡。2當(dāng)感覺有落空感時表明灌胃針可能進(jìn)入胃內(nèi),向外抽動注射器活塞，感覺有負(fù)壓闡明灌胃針未插入氣管，此時可將藥液灌入。篇二：動物實驗報告動物實驗(小鼠)的普通操作技術(shù)實習(xí)日期：—11—13一目的和規(guī)定：通過實際操作，使學(xué)生掌握實驗的普通操作辦法，涉及動物的抓去和固定、編號被毛的去除給藥途徑麻醉采血和處死等辦法。二實習(xí)內(nèi)容:實驗動物的抓取實驗動物性別的鑒定實驗動物編號的標(biāo)記辦法4實驗動物被毛的去除5實驗動物的給藥途徑和辦法6實驗動物的麻醉7實驗動物的采血8實驗動物的處死辦法9解剖三實驗的辦法小鼠的抓?。鹤トr先用手將鼠尾提起,放在實驗臺上,輕輕拉尾，用左手拇指和食指抓住小鼠兩耳和頭頸部皮膚，將鼠置于左手中心,用左手無名指和小指按住尾巴和后肢,即可做其它實驗操作作用。小鼠性別的鑒定：抓取小鼠后,觀察動物肛門與生殖器之間的距離。距離遠(yuǎn)的為雄性,距離近的為雌性。成熟的雄性小鼠可看到小鼠睪丸的輪廓。小鼠編號的標(biāo)記辦法:用被毛染色法做小鼠編號。用苦味酸（黃色）,普通左前肢為1，左側(cè)腹部為2，左后肢為3，頭頸部為4，背部為5，尾根部為6，右前肢為7，右腹部為8,右后肢為9.用兩種顏色能夠染到99。小鼠被毛去除：有剪毛法，拔毛法，剃毛法，用硫化鈉脫毛法。給藥途徑和辦法:給藥途徑有經(jīng)口灌胃法，經(jīng)呼吸道吸入,經(jīng)皮膚吸入和注射給藥法.用一支特制的灌胃針進(jìn)行灌胃,小鼠普通給1。5ml下列。用注射器抽好液體，然后抓取小鼠，針頭延側(cè)角通過食管進(jìn)入胃內(nèi)，然后將液體注入。小鼠的麻醉：麻藥有揮發(fā)性的和非揮發(fā)性兩種.給藥途徑有吸入性麻醉,注射給藥.小鼠普通用腹部麻醉的辦法。用水合氯醛300ml／kg，根據(jù)小鼠的體重給藥0。25ml。抓取小鼠后，使針頭和腹部成30度的角，刺入腹腔，回抽若無回血或者腸內(nèi)容物能夠注入。注入麻藥5分鐘后，小鼠失去知覺。小鼠的采血的辦法：有靜脈采血法，尾部采血法，眼眶靜脈采血法和心臟采血法.將小鼠裝入固定盒中，露出尾部，用二甲苯圖擦，使尾靜脈充盈。用鋒利的刀片切斷一根尾靜脈即可用毛細(xì)管采血，也可用細(xì)注射器從尾靜脈采血。小鼠的處死辦法：用頸椎脫臼的辦法或者注射過量的麻藥使小鼠死亡.解剖：從腹部開始,查看腹部臟器,以肝臟胃脾腎輸尿管姨小腸大腸膀胱前列腺性腺次序。然后再看胸部,看到肺臟心臟胸腺等器官，并在直視的狀況下進(jìn)行了心臟的采血。然后再看頸部的解剖。最后解剖頭部.四討論和結(jié)論:通過本次實驗，我們學(xué)到了實驗動物的普通操作技術(shù)，如抓取和固定、編號被毛的去除給藥途徑麻醉采血和處死等辦法。為后來進(jìn)入臨床進(jìn)行實驗研究做好了初步的準(zhǔn)備。實驗報告(三)一、實驗?zāi)康?1。掌握豚鼠、兔、狗的普通操作辦法，涉及豚鼠的抓取和固定、編號、性別鑒定、給藥、麻醉、采血、處死的辦法。2．兔子的抓取和固定、被毛的去除、性別的鑒定、給藥、采血和處死的辦法。3．犬的抓取和固定、采血的辦法。二、實驗對象：豚鼠，兔，犬.三、實驗環(huán)節(jié)：（一）:豚鼠:1．抓取和固定：先用手掌抓住背部，將手張開，用拇指和食指握住頸部,再拿起來。2．編號:同大鼠。3．性別鑒定：雄性生殖孔呈圓形，雌性生殖孔呈橢圓形。4．給藥、麻醉、采血（無尾靜脈采血）、處死同大鼠。（二）:兔：1．抓取和固定：當(dāng)兔子安靜下來時，用右手抓住頸部的被毛與皮膚，提起兔，然后用左手托住其臀部,兔身的重量大部分落在手上。2．被毛的去除:多采用剪毛法。剪毛部位事先用紗布蘸生理鹽水予以濕潤，用彎頭手術(shù)剪緊貼其皮膚依次將所需部位的被毛剪去。3．性別的鑒定:將生殖器附近的皮膚拔開，雄性可見一圓形孔，里面露出陰莖；雌性此處為一條朝向尾巴的長縫，呈橢圓形間隙，下端有陰道開口處。4．給藥：（1）經(jīng)口灌胃法：灌胃時用一木制的張口器(紡錘狀，正中開小孔）橫放于上下鄂之間，用繩固定。這時用左手抓住其嘴，右手將一細(xì)導(dǎo)尿管由張口器中央小孔插入,進(jìn)入食管和胃。經(jīng)導(dǎo)尿管緩慢注入5ml生理鹽水。(2)耳緣靜脈注射法：剪去耳緣部被毛，酒精擦拭并輕彈欲注射部位，增進(jìn)靜脈充盈。然后以左手拇指和食指壓住耳根部，右手持注射器，順血管方向刺入靜脈，進(jìn)針1cm，有血液回流后注入生理鹽水2ml。5．采血：（1）經(jīng)耳緣靜脈采血：進(jìn)針辦法同耳緣靜脈注射法。（2)耳動脈切割采血:剪去耳動脈表面被毛，酒精消毒皮膚。于耳動脈尖端處劃破動脈并采血。(3)心臟采血：剪去心前區(qū)被毛，選用左側(cè)心臟搏動最明顯的肋間靠近胸骨緣為穿刺點(由劍肋角由下往上左側(cè)第三肋間處）。消毒皮膚，左手固定，右手持連有七號針頭的注射器與穿刺點垂直進(jìn)針.順利回抽到血液后即可采血。6．處死:空氣栓塞法：同心臟采血法進(jìn)針到心臟后注入20ml空氣。（三）：犬:1．抓取與固定：畢格犬抓取容易。固定也相對容易.捆綁犬時先綁扎犬嘴。綁扎辦法:用繃帶從下頜繞到上頜打一結(jié)。然后繞向下頜再打一結(jié),最后將蹦帶牽引到頭后，在頸頂上打第三個結(jié)。在這個結(jié)上在打一種活結(jié).2．采血:(1）橈側(cè)靜脈采血法：抓取和固定好后剪去注射部位的被毛。用膠皮管綁住其前肢,使靜脈充盈.實驗者左手托住其前肢，右手持連有7號針頭的注射器刺入內(nèi)側(cè)面皮下的橈側(cè)靜脈。進(jìn)針1cm后回抽見血，即可采血。（2）小隱靜脈采血法:抓取和固定好后剪去注射部位的被毛。實驗者左手托住其后肢,右手持連有7號針頭的注射器刺入皮下的小隱靜脈。進(jìn)針1cm后回抽見血，即可采血。四、實驗總結(jié)：兔的心臟采血相對難掌握進(jìn)針點.篇三：動物實驗及報告編寫規(guī)定附模板動物實驗報告規(guī)定第一部分：動物實驗概述應(yīng)提供—個動物實驗的重要內(nèi)容提綱，該提綱應(yīng)涉及動物實驗題目、研究小構(gòu)組員、實驗動物和研究產(chǎn)品的名稱、實驗用器械或藥品的適應(yīng)癥、實驗時間、實驗?zāi)康?、實驗辦法、實驗研究動物、診療及進(jìn)入研究的重要原則、實驗的產(chǎn)品信息、劑量、給藥方式及批號、治療持續(xù)時間、參考的治療、劑量、給藥方式及批號、評價原則(有效性、安全性)、統(tǒng)計辦法、實驗結(jié)論（效能結(jié)論、安全性結(jié)論、結(jié)論）及報告日期。該提綱應(yīng)涉及表明成果的數(shù)字資料,而不僅僅是文字和p值。第二部分：實驗內(nèi)容(一）動物實驗普通資料（動物類別選擇實驗用動物的入選原則和數(shù)量、實驗用產(chǎn)品等）:（二)動物實驗實驗辦法；(三）所采用的統(tǒng)計辦法及評價辦法；(四)動物實驗評價原則；（五）動物實驗實驗成果；（六）動物實驗實驗中發(fā)現(xiàn)的副作用及其解決狀況；（七）動物實驗實驗效果分析；（八）動物實驗實驗驗結(jié)論；第三部分:實驗（一）實驗名稱：要能夠明確體現(xiàn)實驗內(nèi)容；（二）實驗?zāi)康?要直截了當(dāng)?shù)年U明為什么要進(jìn)行這個實驗，解決什么問題，含有什么意義;（三)實驗器材：全部儀器、材料應(yīng)介紹齊全；所用材料、試劑、誘導(dǎo)物對動物有無危害影響闡明.（四）實驗動物的選用(動物種類,性別，體重，年紀(jì),品系，級別，健康狀況，動物來源及其合格證號)；（五）分析可能影響到動物實驗成果精確性的因素以確保明驗成果的精確性、可靠性和重復(fù)性（環(huán)境因素；理化因素；營養(yǎng)因素;居住因素;同種動物間因素；異種動物間因素);（六）動物實驗設(shè)計與分組(與否符合對照性、一致性、重復(fù)性三原則;該實驗選用了什么設(shè)計辦法,例如單組比較設(shè)計、配對比較設(shè)計等等；動物隨機分組辦法應(yīng)具體描述，如分為兩組或者三組或者每個動物一組時具體的操作辦法，切忌不可簡樸的“隨機"二字就帶過).第三，實驗基本技術(shù)的描述,涉及：（一）實驗動物的抓取與固定（哺乳類與非哺乳類動物的辦法不同）;(二）動物的編號、標(biāo)記(臨時性、半永久性及永久性標(biāo)記）及去毛（剪毛法、拔毛法、剃毛法、脫毛法）；（三)若該實驗中動物需要麻醉，則采用了何種麻醉類型與辦法（全身麻醉辦法、局部麻醉辦法）以及麻醉藥品與麻醉劑用量（揮發(fā)性麻醉劑、非揮發(fā)性麻醉劑），若過量麻醉，復(fù)蘇和急救方法是如何實施的;（四）動物的給藥途徑與辦法:根據(jù)不同的實驗?zāi)康?、動物種類、藥品類型來決定動物的給藥途徑與辦法；（五）動物血液的采集辦法(不同部位）；（六）動物多個體液的采集辦法（不同部位）；（七）常見觀察指標(biāo)的測定與檢查辦法（生理指標(biāo)測定辦法;生化指標(biāo)測定辦法；血液學(xué)指標(biāo)測定與檢查辦法；免疫學(xué)指標(biāo)測定辦法）;（八）受試動物的動物實驗檢查辦法（普通檢查內(nèi)容及辦法；系統(tǒng)檢查及辦法；動物臟器組織的活檢辦法）。第四,實驗過程的描述，又分為藥品研究的動物實驗、免疫研究的動物實驗、有關(guān)感染研究的動物實驗、有關(guān)生殖與胚胎研究的動物實驗這幾方面。重要從具體實驗規(guī)定，實驗準(zhǔn)備,觀察指標(biāo)以及成果分析與評價來闡明。例如在藥品長久毒性觀察的動物實驗辦法中，需要對實驗規(guī)定、觀察指標(biāo)和指標(biāo)檢測時間與恢復(fù)期觀察三方面考慮，又如動物免疫血清的制備辦法中，應(yīng)對實驗準(zhǔn)備、免疫程序與效價測定和免疫血清的采集和提純敘述，再如病毒增殖的動物接種實驗里,應(yīng)當(dāng)對病毒增殖的雞胚接種辦法和動物感染病毒的接種辦法作一描述.第五，實驗結(jié)束后,對實驗動物的解決：(一）若實驗動物在實驗過程中未受到大的傷害，則應(yīng)對其采用福利方法善后解決，這里就需對解決辦法做描述；若產(chǎn)生的傷害使動物及其痛苦，出于人道考慮,應(yīng)對其采用安樂死，因此安樂死的辦法應(yīng)闡明；(二）若需剖檢,應(yīng)統(tǒng)計剖檢的物品準(zhǔn)備,尸體的外部檢查狀況,臟器采出與檢查辦法，病理材料的采集和送檢辦法以及尸體剖檢統(tǒng)計。第六，對動物實驗數(shù)據(jù)的解決和分析成果.第七，通過該實驗，作者尚有什么需要值得改善，思考的地方都應(yīng)闡明。附件：植入式心臟起搏器產(chǎn)品動物實驗動物實驗的基本規(guī)定:動物實驗的設(shè)計應(yīng)盡量靠近該器械在人體中的預(yù)期用途。普通認(rèn)為犬模型適于用來評價起搏器。建議植入足夠數(shù)量的動物／起搏器，方便于得出有效的結(jié)論。建議與起搏器配合使用的電極需選用已通過注冊同意的電極導(dǎo)線，如對新起搏器無法獲得同意過的電極導(dǎo)線，則實驗時應(yīng)考慮未經(jīng)同意的電極導(dǎo)線對實驗成果的影響.二、動物實驗的內(nèi)容研究目的⑴感知評價起搏器對心臟信號（r、p、t波和遠(yuǎn)場信號）及噪聲的感知響應(yīng)評價長久感知的穩(wěn)定性對感知的p、r波與電生理分析儀的值進(jìn)行比較驗證在起搏、遙測過程中感知的精確性⑵對制造商標(biāo)稱的起搏器功效指標(biāo)進(jìn)行評定，并對各功效指標(biāo)進(jìn)行動物實驗的必要性闡明。例如模式轉(zhuǎn)換、頻率適應(yīng)房室期間(raav）、起搏、睡眠特性、非競爭性心房起搏、頻率等⑶起搏功效動物實驗結(jié)束后，對起搏器的輸出與起搏閾值精確性進(jìn)行檢查如果制造商標(biāo)稱起搏器含有奪獲管理功效，應(yīng)通過診療趨勢評定奪獲管理的運行，與手動測量比較和核查異常中斷的因素⑷電極導(dǎo)線阻抗測量驗證電極導(dǎo)線阻抗測量特性在活體環(huán)境中能按照設(shè)計運行（例如極性確認(rèn)、極性配備等)⑸程控的可靠性驗證起搏器與程控儀編程通訊的可靠性，模擬實際使用的多個參數(shù)組合、參數(shù)調(diào)節(jié)⑹抗干擾實驗驗證通訊工具、家用電氣、安檢系統(tǒng)的干擾⑺植入物檢測在活體環(huán)境下手動驗證植入物性能特性⑻感染控制植入過程應(yīng)按照臨床使用規(guī)定在無菌環(huán)境下實施。對可疑的植入部位的感染應(yīng)通過對潛在病原體的培養(yǎng)和鑒定以進(jìn)行評價⑼植入位置驗證對植入起搏器的位置確實承認(rèn)采用x射線成像術(shù)證明動物選擇及實驗過程⑴實驗基本條件：含有外科無菌手術(shù)條件,建議采用實驗用犬。⑵模型制備:建議采用射頻消融術(shù)、化學(xué)消融或外科手術(shù)等技術(shù)建立犬?！惴渴覀鲗?dǎo)阻滯（ⅲ°avb)動物模型，建議每個型號的植入性起搏器實驗動物應(yīng)在9只或以上.以體表心電圖和腔內(nèi)心電圖顯示房室分離即視作達(dá)成手術(shù)終點。兩組動物在手術(shù)后應(yīng)用體表心電圖和/或holter隨訪觀察4周。模型穩(wěn)定性的評價：在手術(shù)4周后隨訪體表心電圖仍穩(wěn)定地體現(xiàn)為?！惴渴覀鲗?dǎo)阻滯（ⅲ°avb)，顯示p、ors波分離.⑶起搏器植入辦法及時間：按照人體臨床使用的永久性起搏器植入辦法進(jìn)行植入，最少植入8周.⑷當(dāng)對已上市的設(shè)備增加的新功效進(jìn)行動物實驗時,制造商可根據(jù)新增產(chǎn)品功效的具體實際狀況酌情選擇實驗動物數(shù)量，但是其得到的實驗成果應(yīng)能支持其設(shè)備新功效的臨床安全有效性。實驗需紀(jì)錄的電生理指標(biāo)：檢測起搏器植入即刻及隨訪1、2、3、4周時以0.5脈寬刺激時的閾值.起搏參數(shù)及監(jiān)護(hù)參數(shù)：涉及起搏器的電性能指標(biāo)和起搏模式。動物的生理指標(biāo)監(jiān)測及實驗后起搏器外觀和植入部位的狀況分析.三、動物實驗分析評價及結(jié)論制造商需對獲得的動物實驗數(shù)據(jù)進(jìn)行最后的風(fēng)險分析及評價,并得出研究結(jié)論。在實驗時應(yīng)對實驗動物使用生理參數(shù)監(jiān)護(hù)儀，監(jiān)測動物的生理指標(biāo)。實驗結(jié)束后，取出起搏器并對起搏器外觀和植入部位進(jìn)行分析。動物心臟應(yīng)被完整切離并檢查與否存在任何病變和／或損傷。提供描述手術(shù)前后動物活動狀況的摘要。建議進(jìn)行下列方面評價，統(tǒng)計、分析檢測數(shù)據(jù)以驗證設(shè)備的功效、特性、安全性：感知評價長久(1個月）感知的穩(wěn)定性;對感知的p、r波與電生理分析儀的值進(jìn)行比較；驗證在起搏器起搏、遙測過程中的精確性；對起搏器含有的特殊功效進(jìn)行評價.奪獲管理通過診療趨勢評定心房奪獲管理、左右心室奪獲管理的運行狀況,與手動測量比較、檢查異常的因素.電極導(dǎo)線阻抗測量驗證長久（1個月）電極導(dǎo)線阻抗趨勢的穩(wěn)定性驗證電極導(dǎo)線測量特性在活體環(huán)境中能否按照設(shè)計運行.程控的可靠性驗證起搏器與程控儀編程通訊的可靠性,模擬實際使用的多個參數(shù)組合參數(shù)調(diào)節(jié)抗干擾實驗驗證通訊工具、家用電器、安檢系統(tǒng)等外界干擾的影響程度植入性檢測：在活體環(huán)境下用程控儀驗證植入物性能特性。感染控制植入過程中應(yīng)按照臨床使用規(guī)定在無菌環(huán)境下實施.對可疑植入部位的感染通過對潛在病原體的培養(yǎng)和鑒定加以評價.植入部位驗證對起搏器植入部位采用x射線成像術(shù)證明確認(rèn).篇四：小學(xué)三年級科學(xué)上動物實驗報告實驗報告單實驗報告單實驗報告單實驗報告單篇五：動物實驗報告動物實驗（小鼠)的普通操作技術(shù)一目的和規(guī)定:通過實際操作,使學(xué)生掌握實驗的普通操作辦法，涉及動物的抓去和固定、編號被毛的去除給藥途徑麻醉采血和處死等辦法。二實驗內(nèi)容：實驗動物的抓取實驗動物性別、發(fā)情和配種的鑒定實驗動物編號的標(biāo)記辦法4實驗動物被毛的去除術(shù)5實驗動物的給藥途徑和辦法6實驗動物的麻醉7實驗動物的采血8實驗動物的處死辦法9雄性不育小鼠的制備三實驗的辦法小鼠的抓取：抓取時先用手將鼠尾提起,放在實驗臺上，輕輕拉尾，用左手拇指和食指抓住小鼠兩耳和頭頸部皮膚，將鼠置于左手中心，用左手無名指和小指按住尾巴和后肢，即可做其它實驗操作作用.實驗動物性別、發(fā)情和配種的鑒定：1抓取小鼠后，觀察動物肛門與生殖器之間的距離。距離遠(yuǎn)的為雄性，距離性別鑒定:○近的為雌性。成熟的雄性小鼠可看到小鼠睪丸的輪廓，雌性肛門與生殖器之間有一無毛動物仰臥保定，觀察乳頭。雄性乳頭不能明顯，雌性乳頭明顯。小溝?！鸢l(fā)情鑒定（陰道分泌物檢查)材料：生理鹽水,蒸餾水,顯微鏡，載玻片，細(xì)棉簽，性成熟小鼠原理：哺乳類雌性動物性成熟后出現(xiàn)情動周期，嚙齒類動物在動情周期不同階段，陰道膜發(fā)生典型的變化.操作:.用左手拇指和食指固定小鼠的頸部,將小鼠倒放在手掌上，用左手小指固定小鼠尾巴，然后用適宜大小的移液器吸取20至30ul生理鹽水于小鼠陰道內(nèi)重復(fù)抽吸5次。將抽吸得到的液體滴在用多聚賴氨酸預(yù)先解決過（避免脫片）的載玻片上，用移液器吸頭將其均勻涂抹開。3.涂片自然干燥后，用甲醇固定3分鐘。4。待其干燥后，先用瑞氏染液染色5至8分鐘，沖洗后立刻吉姆薩染液染色5至8分鐘，用水漂洗后自然干燥，待檢。5.顯微鏡下觀察陰道涂片的變化,見下圖。附:小鼠發(fā)情周期陰道細(xì)胞的變化小白鼠性周期4～5天，發(fā)情持續(xù)時間大概9～12小時或20小時，排卵是在發(fā)情開始后2~3小時。配種鑒定：○1陰道栓法○2涂片檢查法。小鼠編號的標(biāo)記辦法：用被毛染色法做小鼠編號。用苦味酸（黃色),普通左前肢為1，左側(cè)腹部為2，左后肢為3，頭頸部為4，背部為5,尾根部為6，右前肢為7，右腹部為8,右后肢為9。用兩種顏色能夠染到99。小鼠被毛去除：給藥途徑和辦法：有剪毛法，拔毛法，剃毛法，用硫化鈉脫毛法。5給藥途徑有經(jīng)口灌胃法，經(jīng)呼吸道吸入，經(jīng)皮膚吸入和注射給藥法.用一支特制的灌胃