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文檔簡介
DB33/T2269—2020
豬圓環(huán)病毒2型與3型雙重?zé)晒舛縋CR檢測方法
1范圍
本標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定了豬圓環(huán)病毒2型與3型雙重?zé)晒舛縋CR的檢測方法。
本標(biāo)準(zhǔn)適用于豬圓環(huán)病毒2型與3型的核酸檢測。
2規(guī)范性引用文件
下列文件對于本文件的應(yīng)用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,僅所注日期的版本適用于本文
件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改單)適用于本文件。
GB/T6682-2008分析實(shí)驗(yàn)室用水規(guī)格和試驗(yàn)方法
3縮略語
下列縮略語適用于本文件。
Ct值:達(dá)到閾值的循環(huán)數(shù)(Cyclethreshold)
DNA:脫氧核糖核酸(DeoxyribonucleicAcid)
PBS:磷酸鹽緩沖液(PhosphateBufferSolution)
PCR:聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PolymeraseChainReaction)
PCV-2:豬圓環(huán)病毒2型(PorcineCircovirus2)
PCV-3:豬圓環(huán)病毒3型(PorcineCircovirus3)
Taq酶:TaqDNA聚合酶(TaqDNApolymerase)
4試劑和材料
除非另有說明,所用試劑均為分析純;滅菌水,0.01mol/LPBS和8mmol/LNaOH配制中所使用的
水應(yīng)符合GB/T6682-2008分析實(shí)驗(yàn)室用水規(guī)格和試驗(yàn)方法中一級水的要求。
4.1DNAzolReagent:DNA抽提試劑,2℃~8℃保存。
4.2無水乙醇:4℃預(yù)冷。
4.375%乙醇:用無水乙醇和滅菌水配制,-20℃預(yù)冷。
4.48mmol/LNaOH溶液:配制方法見附錄A。
4.50.01mol/LPBS,pH7.2:配制方法見附錄A。
4.62×PremixHSTaq(內(nèi)含PCRbuffer,HSTaq,dNTPs,Mg2+,RNaseH等)。
4.7陽性對照:豬圓環(huán)病毒2型滅活疫苗和豬圓環(huán)病毒3型陽性克隆質(zhì)粒。PCV-3目的基因(ORF2)
序列見附錄A。
4.8空白對照:滅菌水。
4.9用于熒光定量PCR的引物濃度為10μmol/L,Taqman探針濃度5μmol/L,其序列分別為:
——PCV-2-F:5’-TCACCTATGACCCCTATG-3’;
1
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——PCV-2-R:5’-GGAAGTAATCAATAGTGGAATC-3’;
——PCV-2-P:5’-FAM-ACTCCTCTCGCCATACCATAACC-BHQ1-3’;
——PCV-3-F:5’-TGGCTCAACACATATGAC-3’;
——PCV-3-R:5’-ACGGACTTGTAACGAATC-3’;
——PCV-3-P:5’-HEX-TGCCGTAGAAGTCTGTCATTCCA-BHQ1-3’。
4.10一次性耗材:乳膠手套、1.5mL離心管、15mL離心管、熒光PCR反應(yīng)管和吸頭。
5器材和設(shè)備
5.1電熱干燥箱。
5.2高壓滅菌鍋。
5.3高速臺式冷凍離心機(jī):可控溫至4℃,最大離心速度可達(dá)12000r/min以上。
5.4冷藏冰箱,超低溫冰箱(-80℃)。
5.5熒光PCR檢測儀。
5.6組織勻漿器。
5.7移液器。
5.8研缽。
6實(shí)驗(yàn)室分區(qū)
檢測實(shí)驗(yàn)室應(yīng)有相應(yīng)的生物安全設(shè)施和功能分區(qū),包括樣品處理區(qū)、核酸提取區(qū)、試劑配制區(qū)和擴(kuò)
增區(qū)。各功能區(qū)有專用的試劑和實(shí)驗(yàn)材料,不可交叉使用。
7樣品的采集與處理
7.1采樣注意事項(xiàng)
采樣及樣品前處理過程中應(yīng)注意無菌操作,防止樣本交叉污染。
7.2采樣工具
藥匙、剪刀、鑷子,經(jīng)160℃干熱滅菌2h。
7.3采樣方法與處理
7.3.1內(nèi)臟樣品
采取病死或剖殺豬的主要臟器(淋巴結(jié)、脾臟、肺臟和腎臟)裝入15mL滅菌離心管中,按1:4
倍體積加入滅菌的0.01mol/LPBS。運(yùn)送至實(shí)驗(yàn)室后,再用研缽或組織勻漿器對組織進(jìn)行充分研磨混
勻,反復(fù)凍融3次。在4℃條件下以3000r/min離心20min,取上清液轉(zhuǎn)入1.5mL離心管中編號
備用,待檢。
7.3.2血清樣品
血清樣品無需處理,直接用于核酸提取。
7.4存放與運(yùn)送
2
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采集的樣品密封后,采用保溫壺或保溫桶加冰密封,在6h~8h之內(nèi)運(yùn)送到實(shí)驗(yàn)室。采集或處理的
樣品在2℃~8℃條件下保存應(yīng)不超過24h;需長期保存時,應(yīng)放置-80℃冰箱,但應(yīng)避免反復(fù)凍融(凍
融不超過3次)。
8核酸提取
8.1一般要求
應(yīng)在核酸提取區(qū)進(jìn)行。
8.2DNAzol法抽提核酸
8.2.1取n個滅菌的1.5mL離心管,其中n為待檢樣品數(shù)、2管陽性對照及2管空白對照之和,對每
個離心管進(jìn)行編號。
8.2.2每管加入500μLDNAzol,分別加入待檢樣品、陽性對照和空白對照各250μL,顛倒10次混
勻,靜置5min;于4℃,10000r/min離心10min。
8.2.3取900μL上清,置于新的1.5mL滅菌離心管中,每使用1mLDNAzol,加500μL無水乙醇,
顛倒混勻5次~8次,室溫放置1min~3min;于4℃,5000r/min離心5min。
8.2.4棄上清,沿管壁緩緩加入1mL75%乙醇,顛倒混勻3次~6次,靜置0.5min~1min;4℃,
1000r/min離心2min。反復(fù)洗滌兩次后,將離心管倒扣于吸水紙上,自然晾干(以無乙醇味為準(zhǔn))。
8.2.5用50μL8mmol/LNaOH溶液溶解沉淀,于-20℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>
8.3核酸提取等效方法
可采用核酸提取試劑盒或自動化核酸抽提儀及配套核酸抽提試劑進(jìn)行核酸抽提。
9實(shí)時熒光PCR檢測
9.1實(shí)時熒光PCR擴(kuò)增體系的配制
9.1.1在試劑配制區(qū)進(jìn)行。
9.1.2設(shè)PCR反應(yīng)數(shù)為n,其中n為待檢樣品數(shù)、2管陽性對照及2管空白對照之和,每個樣本測試反
應(yīng)體系配制見表1。配制完畢的反應(yīng)液分裝時應(yīng)盡量避免產(chǎn)生氣泡,轉(zhuǎn)移至核酸提取區(qū)加樣。
表1每個樣品反應(yīng)體系配制表
體系組分用量
2×PremixHSTaq10μL
PCV-2-F0.4μL
PCV-2-R0.4μL
PCV-2-P0.8μL
PCV-3-F0.4μL
PCV-3-R0.4μL
PCV-3-P0.8μL
DEPC水4.8μL
總量18μL
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9.2加樣
9.2.1在核酸提取區(qū)進(jìn)行。
9.2.2在各設(shè)定的熒光PCR管中分別加入本標(biāo)準(zhǔn)8.2.5中制備的2μLDNA溶液,蓋緊管蓋后,3000
r/min離心30s;上機(jī)前應(yīng)檢查各反應(yīng)管是否蓋緊。
9.3實(shí)時熒光PCR擴(kuò)增
9.3.1在擴(kuò)增區(qū)進(jìn)行。
9.3.2將本標(biāo)準(zhǔn)9.2中離心后的PCR管放入熒光PCR檢測儀內(nèi),記錄樣品擺放順序。
9.3.3循環(huán)條件設(shè)置:
a)95℃條件下預(yù)變性30s;
b)95℃條件下變性5s;60℃條件下擴(kuò)增30s,40個循環(huán);60℃時設(shè)置采集熒光。
9.4熒光通道設(shè)定
PCV-2ReportDye設(shè)定為FAM,QuencherDye設(shè)定為BHQ;PCV-3ReportDye設(shè)定為HEX,QuencherDye
設(shè)定為BHQ。
10結(jié)果判定
10.1閾值設(shè)定
閾值設(shè)定原則根據(jù)儀器噪聲情況進(jìn)行調(diào)整,以閾值線剛好超過陽性對照品“S”型曲線指數(shù)擴(kuò)增初
期的熒光值為準(zhǔn)。
10.2質(zhì)控標(biāo)準(zhǔn)
陽性對照品FAM和HEX通道的Ct值均應(yīng)≤30.0,并出現(xiàn)典型的“S”型擴(kuò)增曲線;空白對照品FAM
和HEX通道均無Ct值,且無典型擴(kuò)增曲線。陽性對照和空白對照同時成立可判定試驗(yàn)有效,否則試驗(yàn)
無效。
10.3結(jié)果描述及判定
10.3.1若被檢樣品FAM通道Ct值≤36.0,且出現(xiàn)典型的“S”型擴(kuò)增曲線,判定為PCV-2核酸陽性;若
被檢樣品FAM通道無Ct值,且無典型的擴(kuò)增曲線,判定為PCV-2核酸陰性;若被檢樣品FAM通道Ct
值>36.0,且出現(xiàn)典型“S”型擴(kuò)增曲線,建議對該樣品進(jìn)行重復(fù)試驗(yàn),重復(fù)試驗(yàn)結(jié)果Ct值≤38.0且出現(xiàn)
典型擴(kuò)增曲線者判為PCV-2核酸陽性,否則判為PCV-2核酸陰性。
10.3.2若被檢樣品HEX通道Ct值≤36.0,且出現(xiàn)典型的“S”型擴(kuò)增曲線,判定為PCV-3核酸陽性;若
被檢樣品HEX通道無Ct值,且無典型的擴(kuò)增曲線,判定為PCV-3核酸陰性;若被檢樣品HEX通道Ct
值>36.0,且出現(xiàn)典型“S”型擴(kuò)增曲線,建議對該樣品進(jìn)行重復(fù)試驗(yàn),重復(fù)試驗(yàn)結(jié)果Ct值≤38.0且出現(xiàn)
典型擴(kuò)增曲線者判為PCV-3核酸陽性,否則判為PCV-3核酸陰性。
4
DB33/T2269—2020
AA
附錄A
(規(guī)范性附錄)
配制方法
A.18mmol/LNaOH溶液的配制
稱量0.32gNaOH,溶解到1000mL二級水中,混勻,分裝,常溫保存。
A.20.01mol/LPBS(pH7.2)的配制
稱取磷酸氫二鈉(Na2HPO4·12H2O)3.0g,磷酸二氫鉀(KH2PO4)0.2g,氯化鉀(KCl)0.2g,氯
化鈉(NaCl)8g,加二級水定容至1000mL,完全溶解后用3mol/L的NaOH調(diào)pH為7.2,經(jīng)121℃(±2℃),
高壓滅菌15min,室溫保存。
A.3PCV-3目的基因(ORF2)序列
ATGAGACACAGAGCTATATTCAGAAGAAGACCCCGCCCAAGGAGACGACGACGCCACAGAAGGCGCTA
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