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文檔簡介
ICS01.040.65
CCSB04TB
團(tuán)體標(biāo)準(zhǔn)
T/NAIA×××-××××
規(guī)?;雠2《拘愿篂a病毒(BVDV)基
因分型與防制
Technicalregulationsforgenotypingandpreventionofbovineviral
diarrheavirus(bvdv)inlarge-scalecattlefarms
(征求意見稿)
××××-××-××發(fā)布××××-××-××實施
寧夏化學(xué)分析測試協(xié)會發(fā)布
發(fā)布
規(guī)?;雠2《拘愿篂a病毒(BVDV)基因分型與防制
1范圍
本文件規(guī)定了規(guī)模化牛場牛病毒性腹瀉病毒(BVDV)RT-PCR基因分型與防制的術(shù)語和定義、
診斷、預(yù)防和凈化。
本文件適用于規(guī)?;鰧δ膛!⑷馀?、黃牛、牦牛、犏牛等牛科動物的牛病毒性腹瀉病毒
(BVDV)RT-PCR基因分型與防制。
2規(guī)范性引用文件
下列文件中的內(nèi)容通過文中的規(guī)范性引用而構(gòu)成本文件必不可少的條款。其中,注日期的引用
文件,僅該日期對應(yīng)的版本適用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改單)
適用于本文件。
GB/T6682分析實驗室用水規(guī)格和試驗方法
GB19489-2008實驗室生物安全通用要求
GB/T27401-2008實驗室質(zhì)量控制規(guī)范動物檢疫
農(nóng)業(yè)部農(nóng)醫(yī)發(fā)[2017]25號病死及病害動物無害化處理技術(shù)規(guī)范
3術(shù)語和定義
下列術(shù)語和定義適用于本文件。
3.1牛病毒性腹瀉病BovineViralDiarrheaVirus
牛病毒性腹瀉/黏膜病簡稱為牛病毒性腹瀉病,是指由牛病毒性腹瀉病毒引發(fā)牛的一種傳染病,
臨床上以發(fā)熱、腹瀉、呼吸道癥狀、出血綜合征、黏膜糜爛、白細(xì)胞減少、懷孕母牛流產(chǎn)、產(chǎn)畸型
胎為主要特征。
3.2RT-PCR基因分型RT-PCRgenotyping
即利用分子生物學(xué)方法,對其基因進(jìn)行分型的技術(shù)。
4流行病學(xué)
各種年齡的牛都易感染、以幼齡牛易感性最高。傳染來源主要是病畜。病牛的分泌物、排泄物、
血液和脾臟等都含有病毒,以直接接觸或間接接觸方式傳播。牛病毒性腹瀉病毒可以穿過胎盤感染,
特別是懷孕早期。牛病毒性腹瀉—黏膜病毒血清抗體陰性的母牛一旦感染,常常通過胎盤使胎兒產(chǎn)
生免疫抑制,引起持續(xù)性病毒血癥,如果小牛正常產(chǎn)出,病毒血癥能持續(xù)地帶入成年期,這種牛體
內(nèi)始終帶毒,是牛群中最危險的傳染源。
2
5RT-PCR基因分型
5.1樣品采集
用無菌注射器直接采集血液或者抗凝血至滅菌離心管,或使用獸用采血針、真空無菌采血管、
真空無菌抗凝管采血管,采集全血或抗凝全血,編號備用。
5.2樣品處理
5.2.1血清處理
使用無抗凝劑采血器,采血后采血管傾斜于25℃~37℃靜置30min~45min,待血液完全凝固,
轉(zhuǎn)速8000rpm離心10min或4000rpm離心30min,用移液槍把血清移入儲存管備用。
5.2.2全血的處理
5.2.2.1采血
使用抗凝枸櫞酸葡萄糖(ACD)為抗凝劑。利用滅菌離心管收集血液時,加入1/6體積的ACD
抗凝劑,充分混勻;利用商品化EDTA抗凝采血管收集血液時,直接收集血液并混勻即可。
5.2.2.2RNA的提取
在樣本制備區(qū),根據(jù)待檢樣品數(shù)量取n個無RNAse離心管,編號。每管中加入600μLTrizol,分
別加入100μL待檢血清或抗凝血,充分混勻后加入200μL氯仿,充分顛倒混勻;于4℃、12000g離
心15min,小心吸取上清至一新的無RNAse離心管中,加入0.5mL異丙醇,輕輕混勻,4℃、12000g
離心10min;棄上清,加入1mLDEPC水配制的冰冷75%乙醇充分洗滌沉淀;4℃、12000g離心5
min,棄上清,12000g離心10s,吸去殘存的液體,室溫風(fēng)干3min,加入適量(20~25μL)DEPC
水溶解,直接用于檢測或-80℃保存。
5.3基因分型
5.3.1套式RT-PCR
參考文獻(xiàn)(DecaroN,etal.,2012.AnestedPCRapproachforunambiguoustypingofpestiviruses
infectingcattle;GaoS,etal.,2016.Genomeanalysisofanatypicalbovinepestivirusfromfetalbovine
serum)中的引物,分別為:
PanBVDVpcrF(5′-CTCTGCTGTACATGGCACATG-3′)
PanBVDVpcrR(5′-TTCTCACTNGCRTCCATCAT-3′)
BVDV-1npcrF(5′-TTTCAAGCTGCTCHGAYAC-3′)
BVDV-2npcrF(5′-ATCCTGACCAATGCTAGGTCC-3′)
BVDV-3npcrF(5′-TCCTGTGGCAACCGGTAGGT-3′)
取2μL待檢RNA進(jìn)行RT-PCR擴(kuò)增,每個反應(yīng)體系需要25μL反應(yīng)液,含2XStepBuffer12.5μL、
上游引物PanBVDVpcrF(10μM)1μL、下游引物PanBVDVpcrR(10μM)1μL、1XStepEnzymeMix
1μL、DEPC水7.5μL。根據(jù)檢測的RNA數(shù)量(n),首先配制n+1個體系的反應(yīng)液,混勻后分裝至N+1
個PCR管中,分別加入1μL待檢RNA、DEPC水對照,混勻瞬時離心后進(jìn)行第一輪RT-PCR擴(kuò)增。反
應(yīng)參數(shù)為:50℃30min;94℃2min;94℃30s,55℃30s,72℃1min,共35個循環(huán);72℃10min。
反應(yīng)結(jié)束后取1μLPCR產(chǎn)物稀釋至49μLDEPC水中。取2μL第一輪擴(kuò)增產(chǎn)物分別進(jìn)行BVDV-1、
BVDV-2、BVDV-3的分型檢測。反應(yīng)體系為PremixTaq(dyeplus)12.5μL、引物BVDV-1
npcrF/PanBVDVpcrR(10μM)各1μL或引物BVDV-2npcrF/PanBVDVpcrR(10μM)各1μL,或引物
BVDV-3npcrF/PanBVDVpcrR(10μM)各1μL,DEPC水10.5μL,待檢第一輪擴(kuò)增產(chǎn)物2.0μL。反應(yīng)
程序為98°C10s,55°C30s,72°C1min,30個循環(huán),72℃10min。利用含GelRed核酸染料的1%瓊脂
糖凝膠電泳,經(jīng)凝膠成像掃描儀觀察目的片段大小。目的條帶的大小分別為:BVDV-1,505bp;
BVDV-2,833bp;BVDV-3,211bp。
5.3.2熒光定量RT-PCR
參考文獻(xiàn)(Baxietal.,2006.Aone-stepmultiplexreal-timeRT-PCRfordetectionandtypingof
bovineviraldiarrheaviruses;Liuetal.,2008.ATaqManreal-timeRT-PCRassayforselectivedetection
ofatypicalbovinepestivirusesinclinicalsamplesandbiologicalproducts.)中的引物,在一反應(yīng)管中同
時檢測BVDV-1和BVDV-2,在另一反應(yīng)管中對BVDV-3單獨進(jìn)行檢測。
5.3.2.1BVDV-1和BVDV-2分型
檢測BVDV-1和BVDV-2的引物為PestiF:5'-CTAGCCATGCCCTTAGTAG-3',PestiR:5'-
CGTCGAACCAGTGACGACT-3',探針為
BVDV-1P:FAM-TAGCAACAGTGGTGAGTTCGTTGGATGGCT-BHQ
BVDV-2P:TxR-TAGCGGTAGCAGTGAGTTCGTTGGATGGCC-BHQ
反應(yīng)體系為25μL,以MX3000Preal-timePCR儀器檢測為例,每一體系中加入2XOneStep
RT-PCRBuffer12.5μL、ExTaq0.50μL、反轉(zhuǎn)錄酶0.50μL、PestiF(10μM)0.50μL、PestiR(10
μM)0.50μL、BVDV-1P(10μM)0.25μL、BVDV-2P(10μM)0.25μL、ROXReferenceDyeorDyeⅡ
0.50μL、DEPC水8.25μL,待檢RNA1.0μL,反應(yīng)程序為42℃5min;95℃10s進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄反應(yīng),然
后按95℃5s、60℃30s在熒光定量RT-PCR進(jìn)行40個循環(huán)的擴(kuò)增。在擴(kuò)增結(jié)束后根據(jù)擴(kuò)增曲線判定
樣品中BVDVRNA的存在與否以及BVDV基因型(FAM通道的擴(kuò)增曲線表示BVDV-1陽性,TxR
(ROX)通道擴(kuò)增曲線表示BVDV-2陽性)。
5.3.2.2BVDV-3分型
檢測BVDV-3的引物為
T34F:5'-GACTAGTGGCAGTGAGC-3'
T220R:5'-GAGGCATTCCTTGATGCGTC-3'
4
BVDV-3PFAM-ACTCGGGGCTTCGGTGATCCAGGG-BHQ
反應(yīng)體系為25μL,以MX3000Preal-timePCR儀器檢測為例,每一體系中加入2XOneStep
RT-PCRBuffer12.5μL、ExTaq0.50μL、反轉(zhuǎn)錄酶0.50μL、T34F(10μM)0.50μL、T220R(10
μM)0.50μL、BVDV-3P(10μM)0.25μL、ROXReferenceDyeorDyeⅡ0.50μL、DEPC水8.50
μL,待檢RNA1.0μL,反應(yīng)程序42℃,5min;95℃,10s進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄反應(yīng),然后按95℃5s、60℃30
s在熒光定量RT-PCR進(jìn)行40個循環(huán)的擴(kuò)增。在擴(kuò)增結(jié)束后根據(jù)擴(kuò)增曲線判定樣品中BVDV-3RNA存
在與否(FAM通道擴(kuò)增曲線表示BVDV-3陽性)。
5.4BVD防制規(guī)程
見附件B
附錄A
(規(guī)范性附錄)
溶液配制
以下所用試劑均為分析純
A.1抗凝枸櫞酸葡萄糖(ACD)為抗凝劑
稱取檸檬酸0.48g、檸檬酸鈉1.32g、葡萄糖1.47g溶于100mL去離子水中,高壓滅菌。
A.2DEPC水
在通風(fēng)櫥中,將DEPC加入去離子水(符合GB/T6682)中至終濃度為0.1%,充分作用12h。
121℃高壓滅菌30min,冷卻后分裝備用。
A.350×TAE貯存液
Tris堿242.0g
冰醋酸57.1mL
EDTA(0.5mol/L,pH8.0)100.0mL
加蒸餾水定容至1000mL,在1.034×105Pa壓強(qiáng)下蒸汽滅菌20min,使用時用蒸餾水稀釋成
1×TAE。
A.41.0%瓊脂糖凝膠
瓊脂糖1g
加1×TAE定容至100mL,在微波爐中加熱融化、混勻,冷卻至55℃,加入適合濃度的核酸染
料,倒入已封好的凝膠灌制平臺上,插上樣品梳,凝固后移去樣品梳,當(dāng)天使用。
附錄B
(規(guī)范性附錄)
BVD防制規(guī)程
牛病毒性腹瀉病,是由牛病毒性腹瀉病毒(BVDV)引起的。BVDV屬于黃病毒科瘟病毒屬。
該病毒是有囊膜的正鏈RNA病毒,能通過胎盤感染在妊娠期30d至150d的懷孕母牛,引起流產(chǎn)、
死產(chǎn)或者犢牛未成年死亡,造成大量經(jīng)濟(jì)損失。幸存下來的犢牛對該病毒產(chǎn)生“免疫耐受”現(xiàn)象,并
轉(zhuǎn)化為持續(xù)感染(PI)牛。PI牛是BVDV傳播的重要傳染源。PI牛每天排出大量病毒,并傳染群
體中其它動物。這些帶毒牛通常在2歲之內(nèi)死于黏膜病,部分牛只可存活2年甚至更長。各生產(chǎn)階
6
段的奶牛(犢牛、后備牛、產(chǎn)奶牛)和公牛都可被暫時感染,感染持續(xù)數(shù)天至數(shù)周,直至其免疫系
統(tǒng)清除病毒。雖然BVDV感染造成的死亡率低,但該病毒會降低牛只自身免疫力,從而導(dǎo)致牛只對
其它疾病更易感,如乳房炎、口蹄疫、牛傳染性鼻氣管炎(IBR)、腹瀉、肢蹄病等。BVDV有兩
種感染方式,一種是急性感染(TI),BVDV可以感染各年齡段的牛,影響奶牛場生產(chǎn)的各個方面:
從奶的質(zhì)量和產(chǎn)量,到犢牛健康和獸醫(yī)費用。另一種是持續(xù)感染(PI),從繁殖性能到動物使用年
限。急性感染是由于牛只接觸了PI牛或者其它急性感染牛,一般持續(xù)數(shù)天到數(shù)周,感染期間,感染
會抑制牛只的免疫系統(tǒng)(免疫抑制),導(dǎo)致牛只對繼發(fā)感染敏感,例如乳房炎和體細(xì)胞數(shù)的增加。
持續(xù)感染僅發(fā)生在,當(dāng)BVDV感染懷孕母牛時,該母牛正處于其妊娠期的第30-150d接觸該病毒,
病毒進(jìn)入胚胎而產(chǎn)生。PI牛經(jīng)常無臨床表現(xiàn),但終身感染,排毒量是急性感染的1000倍。PI犢牛
存活下來,不僅成活率低,而且在存活期間會持續(xù)傳播病毒。PI牛帶來的危害遠(yuǎn)遠(yuǎn)超越單一的牛舍
或者牧場。病毒可以傳播到相鄰的牛舍或牧場,因此會存在大量的動物迅速被感染和再感染的潛在
危險。
B1.牛病毒性腹瀉最大的危害是持續(xù)感染
B1.1繁殖影響,包括空懷率高、流產(chǎn)、木乃伊胎、早期胚胎死亡、死胎或弱犢。
B1.2腹瀉,尤其在初次感染時,多見于青年牛。
B1.3產(chǎn)奶量降低,乳質(zhì)降低。
B1.4生長緩慢,先天缺陷,發(fā)育不良。
B1.5免疫抑制長達(dá)6周,使牛只易感染其它疾病,如乳房炎、肺炎和牛呼吸道綜合征(BRD)、
肺溶血性巴氏桿菌感染等。
B1.6感染胎兒,生出PI犢牛,PI母牛經(jīng)常會發(fā)生早期胚胎損失,或者產(chǎn)出死胎或木乃伊胎兒。即
使能順利生出的犢牛,所產(chǎn)犢牛100%為PI犢牛。這些犢牛成活率低,生長狀況不好,而且持續(xù)大
量排毒、并易感其它疾病,影響整個群體的健康和生產(chǎn)狀況。
B2制定牛病毒性腹瀉最佳控制方案和凈化策略
B2.1只引入非PI牛。購入的妊娠母牛所產(chǎn)的犢牛,只有進(jìn)行BVDV抗原檢測,確認(rèn)為陰性,方可
進(jìn)入現(xiàn)有牛群并允許配種。
B2.2配種前,對所有未接受過BVDV抗原檢測的犢牛和后備牛以及群中無后代的母牛(如流產(chǎn)、
沒有確認(rèn)懷孕、所生犢牛死亡或淘汰、所生犢牛為公犢出售等)進(jìn)行BVDV抗原檢測。
B2.3持續(xù)對全部新生犢牛進(jìn)行BVDV抗原檢測。
B2.4認(rèn)真記錄并保存檢測結(jié)果。
B2.5設(shè)計免疫方案,選擇適合的疫苗和免疫時間。需要考慮公牛、斷奶前、斷奶、青年牛和引入非
PI牛。購入的妊娠母牛所產(chǎn)的犢牛,只有進(jìn)行BVDV抗原檢測,確認(rèn)為陰性,方可進(jìn)入現(xiàn)有牛群
并允許配種。
B26與獸醫(yī)、相鄰牧場和后備牛供應(yīng)商合作,及時發(fā)現(xiàn)風(fēng)險,將BVDV進(jìn)入牛群的風(fēng)險降到最低。
B2.7免疫是控制BVD的工具之一,目前已有商品化疫苗用于預(yù)防牛病毒性腹瀉/黏膜病。3月齡以上
健康牛肌肉注射,每頭接種2.0mL,21日后以相同劑量進(jìn)行二免,免疫期為6個月。但是如果PI牛存
在于群體中,單純只依靠免疫不能將牧場風(fēng)險降到最低,推薦采取免疫接種與PI牛檢測淘汰的綜合
防控措施。
B3如何處理抗原陽性的檢測結(jié)果
B3.1確定群體目標(biāo)和相應(yīng)的措施。
B3.2如果犢牛被懷疑是PI牛,應(yīng)盡早實施隔離并采集血液進(jìn)行BVDV抗原檢測(利用套式RT-PCR
或熒光定量進(jìn)行病毒分型),檢測陽性者應(yīng)保持隔離,間隔15d進(jìn)行第二次采樣檢測。如果犢牛確
認(rèn)是PI牛,應(yīng)對其無害化處理,以切斷BVDV向繁育群體的傳播。
B3.3對PI牛的母親進(jìn)行BVDV抗原檢測(PI牛的母親也可能是PI牛)。
B3.4如果確認(rèn)PI牛的母親不是PI牛,那么其母親不需要被淘汰。
B3.5與獸醫(yī)、相鄰牧場和后備牛供應(yīng)商合作,及時發(fā)現(xiàn)風(fēng)險,將BVDV進(jìn)入牛群的風(fēng)險降到最低。
B4.對于牛病毒性腹瀉的幾種誤解
B4.1弱毒疫苗可以消除PI犢牛事實:試驗表明,注射弱毒疫苗后,并不能引起PI犢牛發(fā)病或死亡。
然而,也有報道表明,弱毒疫苗可以導(dǎo)致PI犢牛生病或死亡,但不是100%發(fā)生。
B4.2PI牛很瘦,皮毛不好,而且是一個生產(chǎn)性能表現(xiàn)不好的牛事實:盡管大多數(shù)PI牛不健康,但報
告指出,50%以上的持續(xù)感染牛表現(xiàn)正常,并以很好的狀態(tài)進(jìn)入泌乳牛群。PI牛不能用肉眼判斷。
只能通過檢測來較弱病毒發(fā)現(xiàn)和確認(rèn)。
B4.3犢牛是PI牛,因為他們的母親是PI牛事實:最近研究表明,7%PI牛的母親是PI牛;但另外93%
的PI牛的母親是免疫機(jī)制正常的非PI牛。
B4.4PI牛引起的最重要的經(jīng)濟(jì)損失是該牛只的死亡事實:低受孕率、頻繁流產(chǎn)和犢牛死亡率高等相
關(guān)聯(lián)的繁殖損失是持續(xù)感染動物所造成的最大經(jīng)濟(jì)損失。
B4.5BVDV不會感染已免疫的牛只事實:PI牛所散發(fā)的大量病毒能夠攻克在攻擊下起保護(hù)作用的一
定層次的免疫保護(hù),單純免疫不能解決BVDV問題。
B5檢測的價值
B5.1PI牛檢測帶來200元/頭牛的價值。不再浪費時間治療大量病牛。
B5.2PI陰性狀態(tài)說明動物不是持續(xù)感染BVDV,能夠極大降低產(chǎn)業(yè)鏈傳播疾病的風(fēng)險。
B5.3BVD給產(chǎn)業(yè)造成損失在美國超過10億元。檢測會挽回?fù)p失。
B6牛病毒性腹瀉的檢測工具
B6.1ELISA實驗室檢測--BVDV抗原/抗體檢測試劑盒,可以掌握流行病學(xué)。
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