PCR引物的設(shè)計與實驗操作技巧_第1頁
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文檔簡介

微生物基因工程李剛副教授教學(xué)內(nèi)容一、PCR引物的設(shè)計與實驗操作技巧聚合酶鏈?zhǔn)椒错憽⒎肿涌寺〖癉NA序列分析這三大類實驗方法幾乎構(gòu)成了現(xiàn)代分子生物學(xué)的實驗工作的根底。而三者中,PCR方法在理論上出現(xiàn)最早,在實踐中應(yīng)用得最廣泛。PCR反響的七種根本成份熱穩(wěn)定DNA聚合酶。一對特異的引導(dǎo)DNA合成的寡核苷酸引物。dNTP〔混合液:標(biāo)準(zhǔn)PCR反響包含4種等摩爾濃度的脫氧核苷三磷酸,即dATP、dTTP、dCTP和dGTP。二價陽離子。所有的熱穩(wěn)定DNA聚合酶都要求有游離的二價陽離子,通常是Mg2+用于激活。一價陽離子。標(biāo)準(zhǔn)PCR緩沖液內(nèi)包含有50mmol/L的KCl,它對于擴(kuò)增大于500bp的DNA片段是有益的,提高KCl濃度在約70-100mmol/L范圍內(nèi)對改善擴(kuò)增較短的DNA片段產(chǎn)物是有利的。模板DNA。含有靶序列的模板DNA科研單鏈或雙鏈形式參加PCR混合液中。閉環(huán)DNA模板的擴(kuò)增效率略低于線性DNA。盡管模板DNA的長短不是PCR擴(kuò)增的關(guān)鍵因素,但當(dāng)使用高分子量的DNA〔>10kb〕作模板時,如用限制性內(nèi)切酶先行消化〔此酶不應(yīng)切割其中的靶序列〕,那么擴(kuò)增效果更好。PCR引物設(shè)計的幾條原那么:①引物長度一般引物長度為18-30堿基就足夠了。特殊情況下〔比方Tm值或GC含量不適宜〕可以進(jìn)一步延長到50-60bp長度。但超過60bp的引物長度比較少見。原因一是超過60bp長度的引物比較難以合成,因此合成價格大幅度增加。另外長引物在合成的時候出錯率也顯著增加。上下游引物的長度應(yīng)該根本相等,最好相差不要超過3bp。2.堿基組成G+C含量應(yīng)在40%到60%之間,4種堿基要在引物中分配均勻。假設(shè)是引物存在嚴(yán)重的GC傾向或AT傾向那么可以在引物5’端加適量的A、T或G、C尾巴。3.重復(fù)和自身互補(bǔ)序列不能有大于3bp的重復(fù)序列或自身互補(bǔ)序列存在。這種序列可形成發(fā)夾結(jié)構(gòu),如果這種結(jié)構(gòu)在PCR條件下穩(wěn)定,它會非常有效地阻止寡聚核苷酸和靶DNA之間的復(fù)性。4.上下游引物的互補(bǔ)性一個引物的3‘端不允許結(jié)合到另一個引物的任何位點上。因為在PCR中引物的濃度往往是比較高,所以即使引物間微弱的互補(bǔ),都會導(dǎo)致引物間形成雜交,隨后是引物二聚體的形成和擴(kuò)增。如果引物二聚體在PCR早期形成,它將和DNA聚合酶、引物及核苷酸競爭進(jìn)而抑制靶DNA的擴(kuò)增。精心進(jìn)行引物設(shè)計,應(yīng)用熱啟動PCR或降落PCR或特制的DNA聚合酶〔如:AmpliGold,Perkin-Elmer〕都可以防止引物二聚體的形成。當(dāng)在一個PCR中應(yīng)用多對引物時,請注意檢查任何一個3’末端都不能和其他任何引物互補(bǔ)。5.解鏈溫度〔Tm〕解鏈溫度〔Tm〕:也稱熔化溫度。計算出來的兩個引物的Tm值相差不能大于5C。擴(kuò)增產(chǎn)物的Tm值與引物的Tm值相差不能大于10C。這些特性保證了擴(kuò)增產(chǎn)物在每個PCR循環(huán)可有效地變性。為什么要計算引物的解鏈溫度解鏈溫度的計算方法6.3‘末端

3’末端的性質(zhì)非常關(guān)鍵。如果可能的話,每個引物的3‘末端堿基應(yīng)為G或C,不能為A。然而,并不推薦使用3’端有NNCG或NNGC序列的引物,因為末端GC堿基高的自由能可以促進(jìn)發(fā)夾結(jié)構(gòu)的形成,還可能產(chǎn)生引物二聚體。7.向引物的5‘端添加限制性酶切位點,噬菌體啟動子等序列有用而又不與靶DNA序列互補(bǔ)的序列一般加到引物的5’末端。一般來說,這些序列的存在不會顯著地影響寡核苷酸和靶DNA之間的復(fù)性。這些附加序列包括噬菌體啟動子和GC夾子。限制性酶切位點是一個特殊情況。因為位于DNA分子5‘末端的限制性酶切位點的切割效率比較低,所以引物應(yīng)當(dāng)超出限制性內(nèi)切酶識別位點至少3個核苷酸。保護(hù)堿基確實定保護(hù)堿基確實定不是隨意的,通常每一種限制性內(nèi)切酶都有自己最正確的保護(hù)堿基。每一種限制性內(nèi)切酶與其對應(yīng)的最正確保護(hù)堿基請到NEB公司網(wǎng)站或互聯(lián)網(wǎng)上查詢。8.引導(dǎo)位點的設(shè)置根據(jù)實驗的不同目的,引導(dǎo)位點的設(shè)置可能會受到突變位點、限制性內(nèi)切酶位點、編碼序列、微衛(wèi)星序列和順式作用元件的影響。當(dāng)針對cDNA模板設(shè)計引物時,正向和反向引物最好結(jié)合到不同外顯子的不同區(qū)域。這些可以很容易地把來源于cDNA的擴(kuò)增產(chǎn)物和來源于污染的基因組DNA的擴(kuò)增產(chǎn)物區(qū)分開。PCR設(shè)計軟件推薦PrimerPremier5WDNASISOligo7

PCR高保真酶推薦PE公司〔ABI〕Parken-ElmerDNA聚合酶,TakaRa公司的PrimeSTARHSPolymerase,ToYoBo公司的Kod-PlusPolymerase。PCR產(chǎn)物的克隆

在許多研究中,需要將PCR產(chǎn)物克隆,以獲得目的DNA片段。此時,所用PCR循環(huán)數(shù)應(yīng)盡量小,以減少平臺效應(yīng)或非特異性擴(kuò)增產(chǎn)物的干擾。通常將PCR產(chǎn)物插入到載體中有以下一些方法。1.平末端連接:由于TaqDNA聚合酶往往在PCR產(chǎn)物3'端加上多余的非模板依賴堿基,在用平末端連接克隆PCR產(chǎn)物前,可用Klenow片段或T4DNA聚合酶處理補(bǔ)平末端。2.在PCR產(chǎn)物克隆載體尾部加dT或ddT:TaqDNA聚合酶會在3'端加上多余的非模板依賴堿基,而且對A優(yōu)先聚合,所以PCR產(chǎn)物末端的多余堿基大局部都是A.。利用這一特點,可以經(jīng)限制酶切割產(chǎn)生的平末端用酶加上dT或ddT,使載體與PCR產(chǎn)物末端互補(bǔ)并進(jìn)行連接.載體末端加dT尾可直接用TaqDNA聚合酶和dTTP或ddTTP,ddTTP因缺少3-OH而不能再形成磷酸二酯鍵,保證在載體3'端只加上一個ddTTP,而其5'端所含的磷酸基團(tuán)可與PCR產(chǎn)物的3'端OH連接,連接產(chǎn)物在載體和PCR產(chǎn)物之間的雙鏈上帶兩個切口,這種重組DNA仍可轉(zhuǎn)化適宜的受體菌,并在細(xì)菌體內(nèi)修復(fù).目前很多公司已開發(fā)出可直接用于克隆PCR產(chǎn)物的帶3'-T的T-Vector。3.粘性末端連接:利用引物中附加在5'端的限制酶位點,直接將PCR產(chǎn)物經(jīng)適當(dāng)?shù)南拗泼盖懈詈螽a(chǎn)生粘性末端,與載體連接,產(chǎn)生重組DNA.如果下游兩個引物中含有兩個不同的限制酶位點.經(jīng)酶切后可定向克隆到載體中。PCR反響有哪些關(guān)鍵環(huán)節(jié)?①模板核酸的制備,②引物的質(zhì)量與特異性,③酶的質(zhì)量④PCR循環(huán)條件。尋找原因亦應(yīng)針對上述環(huán)節(jié)進(jìn)行分析研究。

模板最容易出現(xiàn)的問題一、模板含有雜質(zhì):①模板中含有雜蛋白質(zhì);②模板中含有Taq酶抑制劑;③模板中蛋白質(zhì)沒有消化除凈,特別是染色體中的組蛋白;④在提取制備模板時喪失過多,或吸入酚;⑤模板核酸變性不徹底。在酶和引物質(zhì)量好時,不出現(xiàn)擴(kuò)增帶,極有可能是標(biāo)本的消化處理,模板核酸提取過程出了毛病,因而要配制有效而穩(wěn)定的消化處理液,其程序亦應(yīng)固定,不宜隨意更改。

二、模板發(fā)生變異:如靶序列發(fā)生突變或缺失,影響引物與模板特異性結(jié)合,或因靶序列某段缺失使引物與模板失去互補(bǔ)序列,其PCR擴(kuò)增是不會成功的。通常模板發(fā)生變異的主要原因是模板切膠回收時間過長〔一般應(yīng)控制在1分鐘以內(nèi)〕或無意中將模板置于超凈工作臺中滅菌所致。

PCR引物常見的問題引物:引物質(zhì)量、引物的濃度、兩條引物的濃度是否對稱,是PCR失敗或擴(kuò)增條帶不理想、容易彌散的常見原因。有些批號的引物合成質(zhì)量有問題,兩條引物一條濃度高,一條濃度低,造成低效率的不對稱擴(kuò)增,對策為:①選定一個好的引物合成單位。②引物的濃度不僅要看OD值,更要注重引物原液做瓊脂糖凝膠電泳,一定要有引物條帶出現(xiàn),而且兩引物帶的亮度應(yīng)大體一致,如一條引物有條帶,一條引物無條帶,此時做PCR有可能失敗,應(yīng)和引物合成單位協(xié)商解決。如一條引物亮度高,一條亮度低,在稀釋引物時要平衡其濃度。③引物應(yīng)高濃度小量分裝保存,防止屢次凍融或長期放冰箱冷藏,導(dǎo)致引物變質(zhì)降解失效。④引物設(shè)計不合理,如引物長度不夠,引物之間形成二聚體等。

DNA聚合酶的問題酶失活:需更換新酶,或新舊兩種酶同時使用,以分析是否因酶的活性喪失或不夠而導(dǎo)致假陰性。需注意的是有時PCR失敗是由于忘加了酶。

Mg2+濃度Mg2+離子濃度對PCR擴(kuò)增效率影響很大,濃度過高可降低PCR擴(kuò)增的特異性,濃度過低那么影響PCR擴(kuò)增產(chǎn)量甚至使PCR擴(kuò)增失敗而不出擴(kuò)增條帶。對于一些難以擴(kuò)增的模板,建議買PCRBuffer中Mg2+free的PCR試劑,以便自己通過一些預(yù)實驗找出PCR反響中最正確的Mg2+濃度。

PCR反響體積通常進(jìn)行PCR擴(kuò)增采用的體積為20ul、30ul、50ul?;?00ul,應(yīng)用多大體積進(jìn)行PCR擴(kuò)增,是根據(jù)科研和臨床檢測不同目的而設(shè)定,在做小體積如20ul后,再做大體積時,一定要模索條件,否那么容易失敗。如果不愿重新摸索條件,一個最簡單可行的方法是按照小體積的條件多做幾管,最后將PCR產(chǎn)物聚集在一起。

另外,PCR管有普通管和薄壁管〔thinwallPCRtubes〕之分。普通管和薄壁管的熱傳導(dǎo)效率是不同的。熱蓋與非熱蓋PCR儀早期的PCR儀均為非熱蓋,因此每個PCR反響管中需要參加無菌石蠟油,以防止溶液的蒸發(fā)?,F(xiàn)在的PCR儀大局部都有熱蓋〔及頂部加熱器〕,會阻止溶液的蒸發(fā),因此PCR反響管中不需參加石蠟油了。

PCR出現(xiàn)假陽性的原因?

假陽性:出現(xiàn)的PCR擴(kuò)增條帶與目的靶序列條帶一致,有時其條帶更整齊,亮度更高。出現(xiàn)假陽性的原因主要有:

〔1〕引物設(shè)計不適宜:選擇的擴(kuò)增序列與非目的擴(kuò)增序列有同源性,因而在進(jìn)行PCR擴(kuò)增時,擴(kuò)增出的PCR產(chǎn)物為非目的性的序列。靶序列太短或引物太短,容易出現(xiàn)假陽性。需重新設(shè)計引物。

〔2〕靶序列或擴(kuò)增產(chǎn)物的交叉污染:這種污染有兩種原因:一是整個基因組或大片段的交叉污染,導(dǎo)致假陽性。這種假陽性可用以下方法解決:操作時應(yīng)小心輕柔,防止將靶序列吸入加樣槍內(nèi)或濺出離心管外。除酶及不能耐高溫的物質(zhì)外,所有試劑或器材均應(yīng)高壓消毒。所用離心管及樣進(jìn)槍頭等均應(yīng)一次性使用。必要時,在加標(biāo)本前,反響管和試劑用紫外線照射,以破壞存在的核酸。二是空氣中的小片段核酸污染,這些小片段比靶序列短,但有一定的同源性??苫ハ嗥唇?,與引物互補(bǔ)后,可擴(kuò)增出PCR產(chǎn)物,而導(dǎo)致假陽性的產(chǎn)生,這種污染可以通過更換實驗場地來解決,有時也可用巢式PCR方法來減輕或消除。

非特異性擴(kuò)增帶出現(xiàn)的原因非特異性擴(kuò)增帶出現(xiàn)的對策〔一〕非特異性擴(kuò)增帶出現(xiàn)的對策〔二〕采用熱啟動PCR:把PCR混合物在顯著低于Tm值的溫度下作哪怕短暫的保溫,也可能產(chǎn)生引物二聚體和非特異性配對。熱啟動PCR那么可以大大減少這些麻煩。其目標(biāo)是在第一個循環(huán)中等溫度升到超過反響物的Tm值后才允許反響中的一兩種關(guān)鍵成分進(jìn)入反響。例如在覆蓋有礦物油的小試驗中,所有反響管的一種公共成分〔如Taq酶〕可以先不加,而到第一個循環(huán)的變性階段溫度超過80℃以后再加。最近有一種熱啟動的方法是在參加TaqDNA聚合酶前先在管中參加其單克隆抗體〔Clonetech公司的TaqStartAntibody,或者ToYoBo公司的KodPlusDNA聚合酶〕,在溫度升高到將中和抗體變性失活之前,抗體阻遏聚合酶的活性,防止反響開始。非特異性擴(kuò)增帶出現(xiàn)的對策〔三〕嵌套式和半嵌套式PCR對于減少或消除不需要的產(chǎn)物同時提高靈敏度經(jīng)常是很成功的。首先在常規(guī)條件下用第一套跨越目的DNA片段的引物擴(kuò)增,假象產(chǎn)物經(jīng)常會與引物中的一條或兩條配對,但其內(nèi)部卻是無關(guān)序列。接著對一局部反響物-產(chǎn)物混合物進(jìn)行新一輪擴(kuò)增,采用的引物與第一對引物內(nèi)側(cè)的序列配對,在這一輪擴(kuò)增中只有真正的產(chǎn)物被擴(kuò)增。這種方法即使在目的產(chǎn)物開始用EB染色檢測不到而且有假象帶時也常常獲得成功。半嵌套式PCR,只第二條引物在目的片段一端的內(nèi)側(cè),也同樣有效。在基因步行或企圖進(jìn)行5‘或3’端RACE時,由于只有一條引物內(nèi)部的序列是的,經(jīng)常需要作這種變動。采用嵌套式PCR方法,第一、二輪擴(kuò)增在第20個循環(huán)左右終止而不是象通常的在第30-35個循環(huán)終止會獲得更好的結(jié)果,這樣做減少了產(chǎn)生不需要的高分子量帶和成片產(chǎn)物的

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