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文檔簡介
1、牛病毒性腹瀉病毒SYBR,GreenfI實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)方法的建立及應(yīng)用?D。令Z'csibaskets/all-3-l.htmlHtarget=blank"class="keylink”公司;LightCycler480n熒光定量PCR儀,羅氏公司;2xEasyTaqPCRSuperMix,購自北京全式金生物技術(shù)有限公司;pCIone007BluntVectorKit,購自北京擎科生物技術(shù)有限公司。13引物的設(shè)計(jì)與合成參考GenBank中牛病毒性腹瀉病毒的全基因組核酸序列,設(shè)計(jì)特異性擴(kuò)增BVDV的SYBRGreenI熒光定量PCR引物,由北京擎科生物技術(shù)有限
2、公司合成,引物序列如表1所示。1.4 病毒RNA提取和cDNA合成取200pLBVDV病毒原液,按照病毒基因組DNA/RNA提取試劑盒說明書,提取BVDV病毒基因組RNA,然后按照反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書將RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA01.5 陽性標(biāo)準(zhǔn)品的制備以提取的BVDV病毒基因組cDNA為模板,BVDV-F/R為引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行檢測(cè),回收目的片段,連接至pCIone007載體,鑒定正確的重組質(zhì)粒作為陽性標(biāo)準(zhǔn)品,命名為pCIone007-E2o測(cè)定質(zhì)粒濃度,按照以下公式轉(zhuǎn)換成質(zhì)粒的拷貝數(shù):拷貝數(shù)=質(zhì)粒濃度x10-9x6.02x1023/(660x質(zhì)粒長度),將pCI
3、one007-E2質(zhì)粒進(jìn)行10倍倍比稀釋,放于-20冰箱備用。1.6 建立SYBRGreenI實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)方法以pCIone007-E2質(zhì)粒為模板,采用方陣法對(duì)引物濃度(520pmol/L)退火溫度(5562)進(jìn)行摸索,最終選取Ct最小值、熒光最高值、熔解曲線特異性明顯的PCR反應(yīng)條件。采用優(yōu)化完成的反應(yīng)條件,以10倍梯度稀釋后的陽性標(biāo)準(zhǔn)品pCIone007-E2為模板,進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR擴(kuò)增,根據(jù)Ct值繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。1.7 敏感性試驗(yàn)以稀釋后的標(biāo)準(zhǔn)品為模板,陽性對(duì)照以ddH20為模板,進(jìn)行BVDV的SYBRGreenI實(shí)時(shí)熒光定量PCR擴(kuò)增,每個(gè)濃度的標(biāo)準(zhǔn)品做3個(gè)樣本檢測(cè)。同時(shí)
4、相同濃度下進(jìn)行常規(guī)PCR試驗(yàn),分析對(duì)比兩種方法的敏感性。1.8 特異性獻(xiàn)用已建立的SYBRGreenI實(shí)時(shí)熒光定量PCR反應(yīng)體系,分別以BVDV、IBRV、BPIV3、BEFV、BEV的基因組作為模板,并以ddH20為陰性對(duì)照,分析該方法的特異性。1.9 重復(fù)性試驗(yàn)分別取等量的4份不同拷貝(4.87x103copies/pL,4.87x104copies/pL,4.87x105copies/pL,4.87x106copies/pL酌pCIone007-E2重組質(zhì)粒進(jìn)行熒光定量PCR檢測(cè)(同時(shí)設(shè)置空白對(duì)照),每份拷貝樣品做3個(gè)重復(fù),進(jìn)行批內(nèi)重復(fù)性試驗(yàn),通過計(jì)算Ct值的標(biāo)準(zhǔn)差(S)和變異系數(shù)(CV
5、)驗(yàn)證熒光定量PCR的批內(nèi)重復(fù)性。另外,取以上4份樣品,在同一反應(yīng)條件下間隔7d重復(fù)一次獨(dú)立的熒光定量PCR檢測(cè),共重復(fù)3次,然后計(jì)算Ct值的變異系數(shù)(CV),驗(yàn)證此方法的批間重復(fù)性。1.10 臨床樣品的檢測(cè)采用本試驗(yàn)建立的IBRVSYBRGreenI實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法檢測(cè)5個(gè)規(guī)?;膛?chǎng)送檢的67份奶牛腹瀉樣品,同時(shí)利用普通PCR進(jìn)行檢測(cè),比較二者的檢出率,并計(jì)算二者的符合率。2結(jié)果與分析2.1質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品的鑒定以BVDV基因組cDNA為模板,利用特異性弓|物BVDV-F和BVDV-R進(jìn)行PCR擴(kuò)增,得到約185bp左右的目的片段,與預(yù)期片段大小相同,無其他非特異性條帶,陰性對(duì)照無條帶(圖
6、1%將目的基因進(jìn)行回收,然后連接至pCIone007載體上。提取質(zhì)粒進(jìn)行測(cè)序,測(cè)序結(jié)果與NCBI登錄的標(biāo)準(zhǔn)序列對(duì)比,片段插入位置正確,同源性為100%,表明標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒pCIone007-E2構(gòu)建成功。pCIone007-E2的質(zhì)粒濃度為112ng/pL,總長度為2096bp,經(jīng)計(jì)算拷貝數(shù)為4.87x1010copies/pL.2.25 YBRGreenI實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法的建立用優(yōu)化后的反應(yīng)條件建立標(biāo)準(zhǔn)曲線,其斜率為-3.1389,截距為30.19,相關(guān)系數(shù)為0.9931(圖2),說明Ct值與10倍梯度稀釋后的陽性標(biāo)準(zhǔn)品之間有良好的線性關(guān)系。SYBRGreenI熒光定量PCR檢測(cè)BVDV的熔
7、解曲線顯示,質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品均出現(xiàn)了單一波峰,而陰性對(duì)照未出現(xiàn)熔點(diǎn)峰(圖3),表明試驗(yàn)過程中沒有出現(xiàn)引物二聚體及污染現(xiàn)象,且該引物為特異性擴(kuò)增。23特異性獻(xiàn)用建立的SYBRGreenI實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法對(duì)BVDV、IBRV、BPIV3、BEFV、BEV、ddH2O進(jìn)行檢測(cè),發(fā)現(xiàn)只有BVDV檢測(cè)為陽性(圖4),說明該方法有很強(qiáng)的特異性。2.26 感性試驗(yàn)將標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒pCIone007-E2作10倍梯度稀釋,用該方法對(duì)4.87x107copies/pL至4.87x100copies/瓜的標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒樣品進(jìn)行熒光定量PCR檢測(cè)。由圖5可知,該方法檢出核酸的最低模板拷貝數(shù)為4.87x101copies/pLo
8、常規(guī)PCR能檢出的核酸最低陽性質(zhì)??截悢?shù)為4.87x102copies/pL(圖61結(jié)果表明,本源筵立的SYBRGreenI實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法的敏感性高于普通PCR檢測(cè)方法。2.27 復(fù)性試驗(yàn)重復(fù)性試驗(yàn)結(jié)果(表2)表明,批內(nèi)變異系數(shù)為0.07%0.33%,批間變異系數(shù)為0.54%0.71%,表明該方法具有良好的批內(nèi)、批間重復(fù)性。2.28 床樣本檢測(cè)采用建立的SYBRGreenI實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法檢測(cè)了5個(gè)規(guī)?;膛?chǎng)送檢的67份奶牛腹瀉樣品,BVDV陽性31份,陽性檢出率為46.27%(31/67),而普通PCR陽性檢出率為43.28%(29/67),符合率為106.90%。3討論與結(jié)
9、論牛病毒性腹瀉病毒可引起患病牛呈現(xiàn)發(fā)熱、流涎、下痢、結(jié)膜炎、口腔黏膜糜爛潰瘍,孕牛出現(xiàn)流產(chǎn)、死胎和胎兒畸形,還會(huì)引起牛的免疫抑制以及持續(xù)性感染等問題13。牛病毒性腹瀉病毒在世界范圍內(nèi)廣泛流行,是影響?zhàn)B牛業(yè)健康發(fā)展的最重要疫病之一14。由于持續(xù)感染,??梢蚤L期帶毒排毒,是非常危險(xiǎn)的傳染源15。因此,關(guān)于牛群的檢測(cè)、監(jiān)測(cè)與淘汰對(duì)于牛病毒性腹瀉的控制非常重要。本研究建立的牛病毒性腹瀉病毒SYBRGreenI實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)方法不僅兼具特異性好、敏感性高W重復(fù)性好等優(yōu)點(diǎn),而且操作簡單,易于進(jìn)行大規(guī)模樣品檢測(cè)。此外,利用本方法檢測(cè)的樣品采樣方便,可直接檢測(cè)病原,為BVDV感染的早期診斷及病原流行病
10、學(xué)調(diào)查提供了有效可靠的技術(shù)手段。本研究通過對(duì)NCBI上收錄的多個(gè)BVDV序列進(jìn)行比對(duì),針對(duì)E2基因上的保守區(qū)域設(shè)計(jì)特異性引物,建立了SYBRGreenI實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)方法。用該方法檢測(cè)BVDV,最低檢測(cè)限為4.87x101copies/pL,敏感性比常規(guī)PCRB10倍;檢測(cè)IBRV、BPIV3、BEFV、BEV、ddH2O等均為陰性,只有檢測(cè)BVDV的結(jié)果為陽性,說明該方法的特異性強(qiáng)批內(nèi)變異系數(shù)為0.07%-0.33%,批間變異系數(shù)為0.54%-0.71%,表明該方法重復(fù)性高。用建立的熒光定量PCR方法對(duì)山東、江蘇和天津3個(gè)地區(qū)5個(gè)不同牛場(chǎng)的67份牛腹瀉樣品進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果表明,建立的S
11、YBRGreenI實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)方法陽性樣本檢出準(zhǔn)確率高于常規(guī)PCR方法。本試驗(yàn)建立的牛病毒性腹瀉病毒E2基因的SYBRGreenI實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)方法可以高效、準(zhǔn)確地確定牛群中是否存在BVDV感染,為今后BVDV的防控和凈化提供了有效的技術(shù)手段,也為BVDV的實(shí)驗(yàn)室研究提供了參考和理論支撐。參考文獻(xiàn):lLiXP,ZhouWG,GuanPY,etal.ResearchprogressonpathogenesisofbovineviraldiarrhoeavirusJ.ChinaAnimalHusbandry&VeterinaryMedicine,2018.2Moe
12、nnigV,BecherP.ControlofbovineviraldiarrheaJ.Pathogens,2018,7(1):29陸春明,鄢志剛,王建.上海嘉定、崇明地區(qū)奶牛病毒性腹瀉血清學(xué)調(diào)查研究幾獸醫(yī)導(dǎo)刊,2018(9):73-75.4WernikeK,GethmannJ,SchirrmeierH,etal.Sixyears(20112016)ofmandatorynationwidebovineviraldiarrheacontrolinGermanyasuccessstoryJ.Pathogens,2017,6(4):50.5肖盛中,周子恒,馬振國,等.牛病毒性腹瀉病毒重組E0蛋白間
13、接ELISA方法的建立及臨床應(yīng)用C中國畜牧獸醫(yī)學(xué)會(huì)獸醫(yī)病理學(xué)分會(huì)第二十四次學(xué)術(shù)研討會(huì)、中國病理生理學(xué)會(huì)動(dòng)物病理生理學(xué)專業(yè)委員會(huì)第二十三次學(xué)術(shù)研討會(huì)、中國實(shí)驗(yàn)動(dòng)物學(xué)會(huì)實(shí)驗(yàn)病理學(xué)專業(yè)委員會(huì)第三次學(xué)術(shù)研討會(huì)、中國獸醫(yī)病理學(xué)家第三次學(xué)術(shù)研討會(huì)論文集.2018.鐘發(fā)剛,王新華,沈敏,等.牛病毒性腹瀉病毒野毒株的分離鑒定切.中國預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報(bào),2000,22(6):463-464.7趙丹,王建華,王萬萼.牛病毒性腹瀉-粘膜病的檢測(cè)技術(shù)研究進(jìn)展北檢驗(yàn)檢疫學(xué)刊,2014,24(5):68-70.8王姝.牛病毒性腹瀉病毒E2蛋白單克隆抗體的制備及IPMA方法的建立與初步應(yīng)用D.哈爾濱:東北農(nóng)業(yè)大學(xué),2013.9栗
14、銘諫,尹安娜,趙彩娜,等.牛血清中牛病毒性腹瀉/粘膜病毒抗體檢測(cè)的初步分析J.曰肅畜牧獸醫(yī),2004,34(6):6-8.10羅長保,林志雄,魚海瓊,等.應(yīng)用酶聯(lián)免疫吸附驗(yàn)檢測(cè)牛病毒性腹瀉-黏膜病病毒J.中國獸醫(yī)雜志,2002,38(4):44.口1王偉利,肖成蕊,孟日增,等.牛病毒性腹瀉病毒一步法RT-PCR檢測(cè)方法的建立J.中國預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報(bào),2007,29(10):806-809.12GrigeraPR,MarzoccaMP,CapozzoAVE,etaLPresenceofbovineviraldiarrheavirus(BVDV)E2glycoproteininVSVrecombinantparticlesandinductionofneutralizingBVDVa
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