質(zhì)粒抽提原理及詳細(xì)操作步驟

質(zhì)粒抽提原理及詳細(xì)操作步驟蚩□羸墟擾暉總削月翅8電質(zhì)粒抽提，實(shí)驗(yàn)室必備技能之一■「—I質(zhì)粒質(zhì)粒存在于許多細(xì)菌以及酵母菌等生物中，是細(xì)胞染色體外能夠自主復(fù)制的很小的環(huán)狀DNA分子。質(zhì)粒抽提從細(xì)菌中分離質(zhì)粒DNA的方法包括3個(gè)基本步驟：培養(yǎng)細(xì)菌使質(zhì)粒擴(kuò)增；收集和裂解細(xì)菌；分離和純化質(zhì)粒DNA。采用強(qiáng)堿液、加熱或溶菌酶（主要針對(duì)革蘭氏陽(yáng)性細(xì)菌）可以破壞菌體細(xì)胞壁，十二烷基磺酸鈉（SDS）和TritonX-100 （一般很少使用）可使細(xì)胞膜裂解。經(jīng)溶菌酶和SDS或TritonX-100處理后，細(xì)菌染色體DNA會(huì)纏繞附著在細(xì)胞碎片上，同時(shí)由于細(xì)菌染色體DNA比質(zhì)粒大得多，>普健生物www.aTagen?comY普權(quán)生嘯.里P草追擾啡*JW易受機(jī)械力和核酸酶等的作用而被切斷成不同大小的線(xiàn)性片段。當(dāng)用強(qiáng)熱或酸、堿處理時(shí)，細(xì)菌的線(xiàn)性染色體DNA變性，而共價(jià)閉合環(huán)狀DNA(Covalentlyclosedcircular DNA，簡(jiǎn)稱(chēng)cccDNA)的兩條鏈不會(huì)相互分開(kāi)。當(dāng)外界條件恢復(fù)正常時(shí)，線(xiàn)狀染色體DNA片段難以復(fù)性，而是與變性的蛋白質(zhì)和細(xì)胞碎片纏繞在一起，而質(zhì)粒DNA雙鏈又恢復(fù)原狀，重新形成天然的超螺旋分子，并以溶解狀態(tài)存在于液相中。質(zhì)粒抽提最常用的方法是堿裂解法，它具有得率高、適用面廣、快速和純度高等特點(diǎn)。當(dāng)然，堿裂解法也有缺陷：容易導(dǎo)致不可逆的變性。要降低不可逆的變性，就要控制好堿裂解的時(shí)間。堿裂解法抽提質(zhì)粒需要用到以下三種溶液溶液I'替融生報(bào)曲*aSTWQ.?日匕門(mén) I50mmol/L 葡萄糖，25mmol/LTris-CI(pH8.0),10mmol/LEDTA(pH8.0),在15psi壓力下蒸汽滅菌15min,4C保存。溶液U0.2mmol/LNaOH(從10mmol/L貯存液中現(xiàn)用現(xiàn)稀釋)，10g/LSDS(室溫保存)。溶液皿5mol/L乙酸鉀60.0mL，冰乙酸11.5mL,無(wú)菌水28.5mL,4C保存，使用時(shí)置于冰浴中。下面介紹一下堿裂解法小提質(zhì)粒的具體操作：01V普健生物''www.aWQenFKcomjg□販堪応坤!eiWNIItBIl柱平衡：向吸附柱中加入500卩1平衡Buffer,12000rpm離心30-60s,倒掉收集管中的廢液；注意：吸附柱平衡后可最大限度激活硅基質(zhì)膜，提高質(zhì)粒的得率；吸附柱平衡后應(yīng)立即使用，長(zhǎng)時(shí)間放置會(huì)影響其吸附效果。02收菌：將過(guò)夜培養(yǎng)的菌液用8000g，2-3min低溫離心，吸棄液體培養(yǎng)基；注意：高拷貝的質(zhì)粒，需要5-15mL的培養(yǎng)菌液；低拷貝的質(zhì)粒，則需要15-30mL的培養(yǎng)菌液；殘留的液體培養(yǎng)基過(guò)多會(huì)影響細(xì)菌的裂解效果，應(yīng)盡可能吸干培養(yǎng)基。03如，L■単生輛wwkv.atsgenFMcom瘩白補(bǔ)址扭怵龍丸口接晉魅WWWJ.flgC!1M.CJUTi向離心管中加入250卩I溶液1（加入RNaseA）,吹勻菌沉淀并將懸液轉(zhuǎn)移至新1.5mLEP管中；注意：菌體懸浮不完全會(huì)導(dǎo)致裂解不完全，質(zhì)粒提取量和純度會(huì)降低。04向EP管中加入250卩I溶液U（裂解Buffer），溫和翻轉(zhuǎn)EP管6-10次，使菌體充分裂解，液體變得澄清濃稠（開(kāi)蓋拉絲）；注意：所用時(shí)間不宜超過(guò)5min，以免質(zhì)粒被破壞；切勿劇烈震蕩；液體未變得澄清，則表明裂解不充分，可適當(dāng)減少菌體量或增大 Buffer使用量；若溶液U出現(xiàn)渾濁，可37C水浴幾分鐘，待液體恢復(fù)澄清即可使用。05> 普健生物. wwwaugeviFMrom申白補(bǔ)』扯口兀機(jī)譏提晉卩

Y普權(quán)生fl!I i.—— -WITWx9*.D￡JE!1LX.iCJLFIJ蚩口航堪蛙嫌足制說(shuō)豐國(guó)電向EP管中加入350卩I溶液皿，溫和翻轉(zhuǎn)EP管6-10 次，此時(shí)可觀察到管內(nèi)出現(xiàn)白色絮狀沉淀，12000rpm 室溫離心10min；注意：若上清中仍有少量白色絮狀物，可再次離心2-3min 直至液體澄清。06將離心后上清轉(zhuǎn)移至吸附柱中，12000rpm離心30-60s ，倒掉收集管中的廢液；07可選：向吸附柱中加入500卩IBufferPD(富含蛋白酶)，12000rpm離心1min，倒掉收集管中的廢液；08注意：此步對(duì)富含內(nèi)源核酸酶的宿主菌(endA+)是必須的，對(duì)于endA-宿主菌可省略。08普健生物iMww.aiageniMcom吭口址制貫挖普H>普健生嘯向吸附柱中加入600卩IWashBuffer（加入無(wú)水乙醇），12000rpm離心1min，倒掉收集管中的廢液；09重復(fù)步驟8一次；10將吸附柱和收集管放回離心機(jī)中，12000rpm空轉(zhuǎn)離心2min；注意：此步驟非常關(guān)鍵，乙醇是否去除干凈會(huì)影響后續(xù)的洗脫效率以及PCR等效果。11將吸附柱轉(zhuǎn)移至新的1.5mLEP管中，拿到超凈工作臺(tái)中開(kāi)蓋鼓風(fēng)吹5-10min；12LX.*?生輛com英臼歪達(dá)扛博遷制孤抿晉甘向吸附柱膜的中央滴加40-50卩1預(yù)熱ElutionBuffer或者DD水，關(guān)蓋靜置3-5min,12000rpm離心2min;注意：洗脫Buffer預(yù)熱后效果更好；可以根據(jù)質(zhì)粒的拷貝數(shù)、宿主菌等因素調(diào)整洗脫Buffer的添加量。13離心后將EP管內(nèi)的液體重新滴加至吸附柱膜上，12000rpm離心1min;14做好標(biāo)記，取2卩1質(zhì)粒跑1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)驗(yàn)證；15提取出的質(zhì)粒-20C保存?！銎战∩飛ww.aisgenFMcom普毬生韌曲irwQ14>日匕門(mén)応cjuni3*QJiain^EW^M1w抽提質(zhì)粒中的常見(jiàn)問(wèn)題1提不出質(zhì)?；蛘哔|(zhì)粒提取量很少菌體中無(wú)質(zhì)粒：有些質(zhì)粒本身不能在某些菌種中穩(wěn)定存在，經(jīng)多次轉(zhuǎn)接后有可能造成質(zhì)粒丟失。例如柯斯質(zhì)粒在大腸桿菌中保存不穩(wěn)定， 因此不要頻繁轉(zhuǎn)接，每次接種時(shí)應(yīng)接種單菌落。另外，檢查篩選用抗生素使用濃度是否正確。質(zhì)?？截悢?shù)低：由于使用低拷貝數(shù)載體引起的質(zhì)粒DNA提取量低，可更換具有相同功能的高拷貝數(shù)載體。菌種老化：若是甘油保藏菌，需要在活化后再培養(yǎng)搖菌；建議涂布平板培養(yǎng)后，重新挑選新菌落進(jìn)行液體培養(yǎng)。吸附柱過(guò)載：不同產(chǎn)品中吸附柱吸附能力不同，如果需要提取的質(zhì)粒量很大，請(qǐng)分多次提取。>普健生物普健生翰^WWxS'.agEHUK.CJLJrTl若用富集培養(yǎng)基，例如TB或者2XYT,菌液體積必須減少；若質(zhì)?；蛩拗骶欠浅８叩目截悢?shù)或生長(zhǎng)率，則需調(diào)整LB培養(yǎng)液體積。堿裂解不充分：使用過(guò)多的菌體培養(yǎng)液，會(huì)導(dǎo)致菌體裂解不充分，可減少菌體用量或增加溶液I、：Q、皿的用量。對(duì)低拷貝數(shù)質(zhì)粒提取時(shí)，可加倍使用溶液I、：n、皿，有助于增加質(zhì)粒提取量和質(zhì)粒質(zhì)量。溶液使用不當(dāng)：溶液n和皿在溫度較低時(shí)可能出現(xiàn)渾濁，應(yīng)置于37C保溫片刻直至溶解為清亮的溶液，才能使用。洗脫液加入位置不正確：洗脫液應(yīng)加在硅膠膜中心部位，以確保洗脫液會(huì)完全覆蓋硅膠。膜的表面，達(dá)到最大洗脫效率。普健生物www.aisgenFMrom需向補(bǔ)過(guò)扯伸龍利譏抿轡林*普健生物Hirwj.due!i：3--uum洗脫液不合適：DNA只在低鹽溶液中才能被洗脫，pH洗脫效率取決于pH值。最大洗脫效率在pH7.0-8.5 之間。當(dāng)用水洗脫時(shí)確保其pH值在此范圍內(nèi)，如果pH過(guò)低可能導(dǎo)致洗脫量低。洗脫緩沖液加熱至60C后使用有利于提高洗脫效率。洗脫體積太?。合疵擉w積對(duì)回收率有一定影響。隨著洗脫體積的增大回收率增高，但產(chǎn)品濃度降低。為了得到較高的回收率可以增大洗脫體積。洗脫時(shí)間過(guò)短：洗脫時(shí)間對(duì)回收率也會(huì)有一定的影響。洗脫時(shí)放置1min可達(dá)到較好的效果。乙醇?xì)埩簦浩匆合礈旌髴?yīng)離心盡量去除殘留液體，樹(shù)脂型試劑盒漂洗后應(yīng)晾干樹(shù)脂，再加入洗脫緩沖液。V 普健生物口◎ www.sugenFMcom霊白補(bǔ)訃扯X龍機(jī)口找普魅呼普權(quán)生物趴*HTH斗［陽(yáng)UlTDSJCJm1蚩□臺(tái)広蛙暉總*只覽8電質(zhì)粒未全部溶解：洗脫溶解質(zhì)粒時(shí)，可適當(dāng)加溫或延長(zhǎng)溶解時(shí)間。2質(zhì)粒純度不高混有蛋白質(zhì)：不要過(guò)多使用菌體。溶液I、n>m處理并離心后，溶液應(yīng)為澄清的，如果還混有微小蛋白質(zhì)懸浮物，可再次離心去除后再進(jìn)行下一步驟。混有RNA:RNaseA處理不徹底，請(qǐng)減少菌體用量或加入溶液川后室溫放置一段時(shí)間。如果溶液I已保存6個(gè)月以上，要及時(shí)向I中添力口RNaseA?；煊谢蚪MDNA:加入溶液口、川后應(yīng)溫和混勻，若劇烈震蕩，可能把基因組DNA剪切A1V.普健生物口'1vwn怦TV*2EY普健生嘯Atf]AyniM. ” . ■成碎片混在質(zhì)粒中。如果加入溶液U后過(guò)于黏稠，無(wú)法溫和混勻，請(qǐng)減少菌體用量。細(xì)菌培養(yǎng)不要超過(guò)16h，時(shí)間過(guò)長(zhǎng)會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞和DNA的降解。⑷溶液皿加入時(shí)間過(guò)長(zhǎng)：溶液皿加入后，放置時(shí)間不要太長(zhǎng)，否則有可能產(chǎn)生小片段DNA污染。宿主菌含大量核酸酶：宿主菌含大量核酸酶，在質(zhì)粒提取中降解質(zhì)粒DNA，影響提取質(zhì)粒DNA的完整性，最好選用不含核酸酶的大腸桿菌宿主菌，例如DHa和TOP10。裂解時(shí)間過(guò)長(zhǎng)：加入溶液U后裂解時(shí)間不宜超過(guò)5min。質(zhì)粒的二聚體和多聚體形式：是質(zhì)粒復(fù)制過(guò)程中形成的，與宿主菌相關(guān)，電泳可檢測(cè)出。>普健生物d'-’w' com至白再這往體走制仇抿普甘Y普鍛生嘯■--卄2.忖“皿S里旦空毎呻愛(ài)削些at*3質(zhì)粒濃度的檢測(cè)DNA純度的判斷大多根據(jù)OD260/OD280的比值檢測(cè)，符合要求、純度高的DNA樣品其OD260/OD280在1.8-2.0之間，低于此范圍表明蛋白質(zhì)含量超標(biāo)，高于此范圍表明樣品中含有RNA。DNA的純度也可以根據(jù)OD260/OD230的