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分子標(biāo)記及其在植物遺傳育種中的應(yīng)用遺傳標(biāo)記(geneticmarker)具有多型性易于鑒別與目標(biāo)基因緊密連鎖

性狀標(biāo)記

色澤,形態(tài)…

細(xì)胞學(xué)標(biāo)記

倒位,易位,G/N/C帶…

生化標(biāo)記

同功酶…

分子標(biāo)記RFLP、RAPD、SSR、AFLP、SNP……基礎(chǔ)-基因表達(dá)結(jié)果表現(xiàn)型DNA堿基序列變異形態(tài)標(biāo)記遺傳學(xué)上穩(wěn)定、可見(jiàn)的外部特征---遺傳與環(huán)境、結(jié)構(gòu)基因與調(diào)控基因綜合作用的結(jié)果。如穗形、芒長(zhǎng)、穗長(zhǎng)、粒色、穗形、矮稈、卷葉等。特點(diǎn):直觀簡(jiǎn)單從基因型到表現(xiàn)型存在基因表達(dá)、調(diào)控、個(gè)體發(fā)育等環(huán)節(jié),表型差異有時(shí)難以反映基因型差異。細(xì)胞學(xué)標(biāo)記染色體數(shù)目變異及結(jié)構(gòu)變異,表現(xiàn)在染色體核型(數(shù)目、大小、隨體、著絲點(diǎn)位置等)和帶型(C帶、N帶、G帶等)。隨著分帶、細(xì)胞原位雜交等研究技術(shù)的發(fā)展,可在染色體水平揭示更多遺傳變異。特點(diǎn):直觀、快速而經(jīng)濟(jì),但變異十分有限,當(dāng)染色體數(shù)目形態(tài)相似時(shí)難以分辨。

生化標(biāo)記——貯藏蛋白和同工酶貯藏蛋白同工酶特點(diǎn):經(jīng)濟(jì)、方便、成本較低結(jié)構(gòu)基因表達(dá)產(chǎn)物,對(duì)非結(jié)構(gòu)基因無(wú)能為力;所檢測(cè)位點(diǎn)只是基因組一部分;數(shù)量有限,有時(shí)受發(fā)育時(shí)期和環(huán)境影響。分子標(biāo)記本質(zhì)是以核苷酸序列作為標(biāo)記,一般特點(diǎn):(1)不受季節(jié)、環(huán)境、基因表達(dá)與否的限制;(2)多態(tài)性高,存在著豐富的等位變異;(3)數(shù)量豐富,多態(tài)性遍及整個(gè)基因組;(4)表現(xiàn)為“中性”,不影響目標(biāo)性狀的表達(dá),與不良性狀無(wú)必然的連鎖;(5)許多分子標(biāo)記表現(xiàn)共顯性,能鑒別純合雜合基因型,提供完整的信息。分子標(biāo)記的分類(lèi)(Staub等1996)分子標(biāo)記以Southern為基礎(chǔ)如RFLP以PCR為基礎(chǔ)單引物PCR標(biāo)記有RAPD、

AP-PCR、DAF、ISSR等雙引物選擇性擴(kuò)增PCR主要指AFLP需克隆、測(cè)序構(gòu)建特殊雙引物PCR標(biāo)記 如SSR、STS等植物遺傳研究中常用的分子標(biāo)記RFLP—RestrictionFragmentLengthPolymorphismRAPD—RandomAmplifiedPolymorphicDNAs

(DAF,AP-PCR)SSR—SimpleSequenceRepeatAFLP—AmplifiedFragmentLengthPolymorphismRFLP原理:DNA限制性內(nèi)切酶酶切電泳轉(zhuǎn)移到硝酸纖維素濾膜同位素或非放射標(biāo)記(如地高辛等)的探針雜交膠片放射自顯影,顯示酶切片段大小酶切:3-5ugDNA,以10U內(nèi)切酶酶切5小時(shí)電泳:0.6-0.8%瓊脂糖膠70V電泳16小時(shí)染色:EtBr染色20分鐘變性:0.25MHCl20分鐘,抽真空,水冼印跡:加入0.4NNaOH,進(jìn)行Southern印跡沖洗:以2×SSC冼膠,風(fēng)干酶切—電泳—印跡—雜交—洗脫預(yù)雜交:將雜交膜放人預(yù)雜交液(水、5×HSB、DenhardtⅢ)中,封好后置65℃溫箱中振蕩5-6小時(shí)。雜交:預(yù)雜交液中加入標(biāo)記好的marker和探針,放入雜交膜浸勻。封好雜交盒后,置65℃溫箱中振蕩過(guò)夜。洗脫:將膜轉(zhuǎn)入洗脫盒,加入洗脫液65℃振蕩洗脫兩次(15min/次),吸干包好。—放射自顯影將洗脫好的雜交膜置于增感屏上,于暗室中將X-光片放于雜交膜上,再放上另一張?jiān)龈衅粒b人暗袋,并用夾板夾好。置-70℃超低溫冰箱中曝光10天左右。使用磷屏儀,操作更方便。RFLP探針來(lái)源:cDNA探針與基因組DNA(gDNA)探針cDNA探針:保守性較強(qiáng),探針檢測(cè)的多態(tài)性頻率較低。gDNA探針:檢測(cè)的多態(tài)性頻率較高,但不同種屬特異性較強(qiáng)。玉米R(shí)FLP探針:http:///probes.Html探針標(biāo)記—隨機(jī)引物法25ng變性DNA5ul

寡聚核苷酸2ulBSA3ul[α-32P]dCTP2ul

Klenow酶加水至50ul,37℃溫箱中標(biāo)記2小時(shí)RFLP標(biāo)記特點(diǎn)共顯性,可以區(qū)別純合和雜合基因型穩(wěn)定、重復(fù)性強(qiáng)某些植物中開(kāi)發(fā)探針已遍及整個(gè)基因組缺點(diǎn):DNA需要量較大,技術(shù)復(fù)雜;用于做圖較費(fèi)時(shí),難以分析大量樣品;

在基因組較大、嚴(yán)格自花授粉作物上多態(tài)性很低,使遺傳圖飽和度低。RAPD原理:用一個(gè)隨機(jī)引物(8-10bp)、堿基隨機(jī)排列的寡核苷酸序列,非定點(diǎn)地?cái)U(kuò)增基因組DNA,然后電泳分開(kāi)擴(kuò)增片段。PolymeraseChainReaction-PCR3'5'5'3'TargetDNAsequenceGCTCGCAGTACTTCATGACGAGCGdenature@95?C5'3'3'5'GCTCGCAGTACTTCATGACGAGCGTCATGAGCTCGCannealprimers@60?CTaqpolymerasebinds3’andextendsGCTCGC5'3'3'5'AGTACTTCATGACGAGCGTCATGAGCTCGCDNAisdoubledwitheachcycleRepeat25-40timesRAPD的操作PCR反應(yīng):DNA(20ng/μl) 1μlPrimer 15ng10×Buffer 2.0μlMg2+(25mM) 1.2μl

Taq酶(5U/μl) 0.15μldNTP(25mM) 0.2μl加水至20μl,再加入石臘油,進(jìn)行PCR擴(kuò)增Step195℃2分鐘Step295℃15秒Step336℃30秒Step472℃45秒Step5GOTOStep246循環(huán)Step6

72℃5分鐘

PCR擴(kuò)增:主要特點(diǎn)無(wú)需雜交,設(shè)計(jì)引物也無(wú)須知道序列信息;DNA需要量少,引物便宜,成本較低;技術(shù)簡(jiǎn)便,操作方便、快速,不涉及分子雜交和放射性自顯影等技術(shù)。不同物種間引物通用;缺點(diǎn):大多顯性遺傳,不能鑒別雜合和純合子;實(shí)驗(yàn)重復(fù)性較差,結(jié)果可靠性較低。DAF

(DNAamplificationfingerprinting):與RAPD不同的是:引物濃度更高,引物長(zhǎng)度更短(一般5-8個(gè)堿基),且往往用聚丙烯酰胺凝膠電泳,通常會(huì)產(chǎn)生非常復(fù)雜的帶型,譜帶信息比RAPDs大得多。(Caetano-Anolles等,1990)AP-PCR(arbitrarilyprimedpolymerasechainreaction)引物較長(zhǎng)(10~50bp);引物濃度較高;引物長(zhǎng)度不定,并且常常來(lái)自為其它目的而設(shè)計(jì)的引物(如M13通用測(cè)序引物)。ISSR共同優(yōu)點(diǎn):

在不需要知道所擴(kuò)增DNA序列情況下,產(chǎn)生DNA片段的指紋;需DNA量少,產(chǎn)生多態(tài)性豐富。缺點(diǎn):

對(duì)反應(yīng)條件非常敏感,重復(fù)性差。SCARs

(SequencedCharacterizedAmplifiedRegions)為提高RAPD標(biāo)記穩(wěn)定性,把目標(biāo)RAPD片段克隆測(cè)序,根據(jù)片段兩末端的序列設(shè)計(jì)特定引物(通常24個(gè)堿基),再進(jìn)行PCR擴(kuò)增,可把相應(yīng)的單一位點(diǎn)鑒定出來(lái)。具有更高的可重復(fù)性共顯性微衛(wèi)星標(biāo)記(SSR)真核生物基因組普遍存在,呈隨機(jī)分布,大約每隔10-50kb就存在一個(gè)SSR.哺乳動(dòng)物中約為植物的5-6倍;植物中平均23.3kb有一個(gè)SSR;雙子葉植物SSR數(shù)量大于單子葉植物,核DNASSR數(shù)量多于細(xì)胞質(zhì)DNA;根據(jù)核心序列堿基數(shù)的不同,可分為單堿基、2堿基、3堿基、4堿基等多種重復(fù)型。不同物種其重復(fù)序列及重復(fù)單位頻率不同。通過(guò)對(duì)54個(gè)植物種核DNA和28個(gè)植物種細(xì)胞器DNASSR(1-4bp)的搜索,發(fā)現(xiàn):(AT)n最豐富,然后依次是:(A)n、(T)n、(AG)n、(CT)n、(AAT)n、(ATT)n、(AAC)n、(GTT)n、(AGC)n、(GCT)n、(AAG)n、(CTT)n、(AATT)n、(TTAA)n、(AAAT)n、(ATTT)n及(AC)n、(GT)n。同一類(lèi)內(nèi)堿基種類(lèi)不同的SSR,豐度差別很大。SSR的分布特點(diǎn)SSR的功能長(zhǎng)期以來(lái)一直認(rèn)為SSR是轉(zhuǎn)錄啞區(qū),沒(méi)有明確的生理功能。但隨著研究深入,證明并非如此。SSR的主要功能:

編碼氨基酸;染色體末端的SSR,有保護(hù)DNA完整性、避免降解、融合及丟失的功能;提高或降低臨近基因轉(zhuǎn)錄速率;基因重組的熱點(diǎn),是基因變異的來(lái)源;部分SSR可產(chǎn)生轉(zhuǎn)錄啟動(dòng)復(fù)合物或活化染色體兩端序列多是保守的單拷貝序列,可以根據(jù)兩端序列設(shè)計(jì)一對(duì)特異引物,通過(guò)PCR將其間微衛(wèi)星序列擴(kuò)增出來(lái),利用電泳技術(shù)獲得長(zhǎng)度多態(tài)性。不同材料重復(fù)次數(shù)的不同,導(dǎo)致了SSR長(zhǎng)度的高度變異性。SSR分析SSR分子標(biāo)記的創(chuàng)制基因組文庫(kù)的構(gòu)建探針制備-預(yù)雜交-帶有SSR克隆的選擇測(cè)序引物設(shè)計(jì)檢測(cè)其它方法:EST-SSR、相關(guān)種間SSR......Cross-speciesSSRTaxonomic Transferability Polymorphism

Divergence%(N)%(N)Samesubgenus 89.8(521) 78.3(299)Samegenus 76.4(1800) 86.0(773)Samealliance 45.4(403) 50.4(141)Samefamily 35.2(1683) 58.4(363)SSR的操作PCR反應(yīng):DNA(20ng/μl) 4μlPrimer(1mM) 0.25μl10×Buffer 2.0μlMg2+(25mM) 1.2μlTaq酶(5U/μl) 0.1μldNTP(25mM) 0.2μl加水至20μl混合后,進(jìn)行PCR擴(kuò)增:Step1 95℃2分鐘Step2 95℃30秒Step3 56℃30秒Step4 72℃60秒Step5 GOTOStep231循環(huán)注:SSR引物退火溫度在52-65℃不等。SSR的特點(diǎn):兩側(cè)順序保守,在同種間多相同;數(shù)量豐富,在整個(gè)基因組均勻隨機(jī)分布;實(shí)驗(yàn)重復(fù)性好,結(jié)果可靠;多數(shù)SSR增減重復(fù)序列頻率高,在品種間具廣泛位點(diǎn)變異;共顯性標(biāo)記,可鑒別雜合子和純合子;僅需微量組織,適合PCR分析半自動(dòng)化相對(duì)的物種專(zhuān)一性;由于開(kāi)發(fā)時(shí)需針對(duì)每個(gè)座位的微衛(wèi)星序列,發(fā)現(xiàn)其兩端的單拷貝序列設(shè)計(jì)引物,需建立基因文庫(kù)、克隆識(shí)別與篩選、測(cè)序等過(guò)程,開(kāi)發(fā)困難,費(fèi)用較高,耗時(shí)長(zhǎng);實(shí)際分析時(shí)一般每次只分析單個(gè)位點(diǎn);不同引物退火溫度不同,需要探索。不足:SSR的檢測(cè)瓊脂糖凝膠檢測(cè)(同前)聚丙烯酰胺凝膠檢測(cè)一般采用銀染、熒光檢測(cè)。銀染檢測(cè)程序脫色:加1升10%HAC液,脫色20分鐘沖洗:用重蒸水沖洗膠板2次,每次5分鐘染色:加染色液(1%AgNO3,0.075%甲醛)30分鐘沖洗:用重蒸水沖洗膠板不超過(guò)5秒鐘;顯影:預(yù)冷顯影液(30g/LNaCO3,0.075%甲醛,0.4mg/mlNa2SO3),輕搖到帶紋出現(xiàn);定影:在固定/停止液并輕搖3-5分鐘;沖洗:用重蒸水沖洗2次,每次2分鐘;干膠:室溫下自然干燥過(guò)夜。AFLP(AmplifiedFragmentLengthPolymorphism)原理:基于RFLP技術(shù)和PCR技術(shù)的結(jié)合

DNAMseI-MseI

MseI-EcoRI

EcoRI-EcoRIMseI-MseI片段環(huán)化,不利小片段擴(kuò)增;EcoRI-EcoRI

引物的退火溫度高;MseI-EcoRI

片段優(yōu)先擴(kuò)增酶切連接接頭序列MseⅠ接頭、PstⅠ分別為:MseⅠ:

5’-GACGATGAGTCCTGAG-3’3’-TACTCAGGACTCAT-5’PstⅠ:5’-CTCGTAGACTGCGTACC-3’3’-CTGACGCATGGTTAA-5’EcoRⅠ:

5’-CTCGTAGACTGCGTACC-3’3’-CTGACGCATGGTTAA-5’

M00:5'-GATGAGTCCTGAGTAA-3';P00:5'-

GACTGCGTACCAATTC-3';E00:5'-GACTGCGTACCAATTC-3';MseI-primers+3:5'-GATGAGTCCTGAGTAANNN-3‘EcoRI-primers+3:5'-GACTGCGTACCAATTCNNN-3‘PstI-primers+3:5'-GACTGCGTACATCGAGNNN-3‘

AFLP技術(shù)的特點(diǎn)(1)由于內(nèi)切酶及選擇性堿基組合數(shù)和種類(lèi)很多,產(chǎn)生標(biāo)記數(shù)無(wú)限,可覆蓋整個(gè)基因組。(2)多態(tài)性遠(yuǎn)遠(yuǎn)超過(guò)其它分子標(biāo)記,一般可檢測(cè)到50-100個(gè)AFLP擴(kuò)增產(chǎn)物,能夠在遺傳關(guān)系十分相近的材料產(chǎn)生多態(tài)性,被認(rèn)為是指紋圖譜技術(shù)中多態(tài)性最豐富的一項(xiàng)技術(shù)。(3)AFLP分析由于擴(kuò)增片段較短(30-700bp),分辨率高。(4)AFLP分析用樣量少(0.05-0.5gDNA),而且對(duì)模板濃度的變化不敏感。(5)由于特定引物擴(kuò)增,退火溫度高,因而假陽(yáng)性低,可靠性高。(6)引物在不同物種間是通用的,可用于沒(méi)有任何分子生物學(xué)研究基礎(chǔ)的物種。(7)銀染技術(shù)具有快速、方便的特點(diǎn),在1-2天內(nèi)可以得到指紋。AFLP操作具體包括三個(gè)步驟:1.

酶切--連接;2.PCR擴(kuò)增,使目的序列擴(kuò)增到0.5~1μg;3.

電泳分離(利用聚丙烯酰胺凝膠)。對(duì)于基因組較大的物種,需要進(jìn)行兩步擴(kuò)增—預(yù)擴(kuò)增和選擇性擴(kuò)增。AFLP操作步驟:模板DNA的酶切與連接DNA(200ng/μl) 2.5μlMseⅠ 3單位PstⅠ 3單位MseⅠ接頭(50pmol/μl) 1.0μlPstⅠ接頭(5pmol/μl) 1.0μl10×NEBBuffer 2.5μl100×BSA 0.25μlATP(10mM) 2.0μlT4-連接酶(3U/μl) 0.4μl加水至25μl,37℃酶切-連接4-6小時(shí),或過(guò)夜。

AFLP實(shí)驗(yàn)程序DNA片段的預(yù)擴(kuò)增取2.0μl完成的樣品,加入18μl如下混合液:

MseⅠ引物(M00,50ng/μl)0.6μl

PstⅠ引物(P00,50ng/μl)0.6μl10×PCRBuffer 2.0μlMg2+(25mM) 1.2μl

Taq酶(5U/μl) 0.1μldNTP(25mM) 0.16μl加ddH2O至20μl

混合后,在如下PCR條件下擴(kuò)增:Step1 95℃2分鐘Step2 95℃30秒Step3 56℃30秒Step4 72℃60秒Step5 GOTOStep231cyclesStep6 72℃5分鐘AFLP的選擇性擴(kuò)增取4μl稀釋預(yù)擴(kuò)增液,加入16μl如下反應(yīng)液:PstⅠ引物(50ng/μl) 0.8μlMseⅠ引物(50ng/μl)0.8μl10×PCRBuffer 2.0μlMg2+(30mM) 1.1μldNTP(25mM) 0.18μlTaq酶(5U/μl) 0.12μlddH2O 11.0μl混合后按如下PCR程序擴(kuò)增:

Step1 95℃2分鐘

Step2 95℃30秒

Step3 65℃30秒(-0.7℃/cycle)

Step4 72℃60秒

Step5 GOTOStep212循環(huán)

Step6 95℃30秒

Step7 56℃30秒

Step8 72℃60秒

Step9 GOTOStep630cyclesStep10 72℃5分鐘AFLP的檢測(cè)銀染熒光同位素檢測(cè)注意事項(xiàng):1.AFLP酶切反應(yīng)對(duì)模板DNA質(zhì)量要求較高,要求260/280在1.8左右,且不能有降解。2.AFLP反應(yīng)對(duì)模板DNA濃度不是很敏感,在50pg-50ng時(shí),均可以觀察到多態(tài)性帶,但為了實(shí)驗(yàn)的準(zhǔn)確性,DNA濃度不能太低。3.酶切-連接反應(yīng)可以分開(kāi)作,也可以合在一起作,但合在一起更方便些。4.AFLP反應(yīng)對(duì)PCR要求較高,要首先摸索優(yōu)化Mg2+、dNTP條件,達(dá)到最佳擴(kuò)增。5.EcoRⅠ受甲基化胞嘧啶的影響較小,而PstⅠ對(duì)富含的甲基化胞嘧啶十分敏感,因而PstⅠ-MseⅠ檢測(cè)的多為表達(dá)區(qū)域,而EcoRⅠ-MseⅠ檢測(cè)位點(diǎn)聚集在甲基化較高的重復(fù)序列區(qū)域。6.引物中用作選擇性核苷酸的G和C含量對(duì)擴(kuò)增出的產(chǎn)物數(shù)目有影響。一般而言,G和C含量越高,擴(kuò)增出的產(chǎn)物數(shù)目越少。7.同位素、熒光標(biāo)記分辨率較高,但價(jià)格昂貴,操作不方便;銀染方法方便快捷,掌握好各個(gè)環(huán)節(jié),同樣可以達(dá)到很好的效果。為什么用雙酶解?適合PCR擴(kuò)增效率與變性膠的分辨率減少PCR擴(kuò)增的片段,從而減少使用選擇性堿基的數(shù)目使標(biāo)記單鏈成為可能增加PCR擴(kuò)增的靈活性增加使用引物的靈活性為什么要預(yù)擴(kuò)增?減少選擇性堿基的錯(cuò)配減輕背景提供足量模板DNA降低模板濃度的影響目的:分子標(biāo)記輔助選擇(MAS)篩選BAC文庫(kù),進(jìn)行圖位克?。╩ap-basedgenecloning)AFLPSCARPIC/Simpson遺傳多樣性系數(shù)=1-Pi2等位基因數(shù)目A

A=4PIC=1–SUM(0.47)2+(0.30)2+(0.17)2+(0.04)2=0.64SSR資料:遺傳相似系數(shù)Gower(1985):

a+da+b+c+d簡(jiǎn)單匹配系數(shù)(SM)(Simplematchingcoefficient)

aa+b+cJaccard

相似系數(shù)(Jaccard1908).

2a2a+b+cDice(1945)相似系數(shù),即

Nei&Li(1979)相似系數(shù).其中:abcd+

-+-kj遺傳距離的計(jì)算:Rogers(1972)Rogers-W(RogersdistanceasmodifiedbyWright(1978)兩個(gè)隨機(jī)群體j、k間的遺傳距離(Nei1972):

Xij

為X群體第i個(gè)位點(diǎn)第j個(gè)等位基因頻率

Yij為Y群體第i個(gè)位點(diǎn)第j個(gè)位點(diǎn)基因頻率

在種質(zhì)資源研究中,大多數(shù)采用羅杰斯距離(RD)和改良的羅杰斯距離(MRD)(Rogers,1972;Goodman&Stuber,1983)。根據(jù)遺傳特性確定的羅杰斯距離在相關(guān)種質(zhì)的親緣關(guān)系分析中非常有用;而改良的羅杰斯距離還適用于雜種優(yōu)勢(shì)研究。

聚類(lèi)分析聚類(lèi)指標(biāo):遺傳相似系數(shù)遺傳距離聚類(lèi)方法:SAHN(SequentialAgglomerativeHierarchicalandNested)clustering

常用UPGMA分析軟件:NTSYS-pc2.02(Rholf,1998)QTL分析單標(biāo)記作圖法;區(qū)間作圖法;Mapmaker/QTLhttp://www-/genome_software

復(fù)合區(qū)間作圖法;Cartographer、QTLmapperhttp:///qtlcart/WQTLCart.htmhttp:///ics/faculty/zhujun.htm‘A’HomozygotefortheallelefromAparent‘B’HomozygotefortheallelefromBparent‘H’HeterozygotecarryingbothalellesAandB‘C’EitherBBorABgenotype‘D’EitherAAorABgenotype‘-’MissingdatafortheindividualatthislocusdatatypeF2intercross2051*locus1BBBHH-AAABBBHHH-AABA*locus2AB-ABHABHAB-AB-ABHAH*locus3ABBAHHHBHABHABHBBHH-#Locus3maybemis-scoredinindividual12!*locus4ABHHABAAAHAB-ABHABHH*locus5ABHABHAA-ABHABHAHHHB*trait8.79.0-7.56.8EST(ExpressedSequenceTags)SNP(singlenucleotidepolymophism)cSSR、cSNPDNA微陣列(Microarray)蛋白質(zhì)組學(xué)......新型分子標(biāo)記EST是長(zhǎng)約150-400bp的基因表達(dá)序列片段,攜帶著完整基因的某些片段。

mRNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA,克隆到質(zhì)粒或噬菌體載體,構(gòu)建cDNA文庫(kù),而后大規(guī)模隨機(jī)挑選克隆,對(duì)5’或3’端進(jìn)行一步法測(cè)序,獲得對(duì)生長(zhǎng)發(fā)育、遺傳變異、衰老死亡等過(guò)程認(rèn)識(shí)的技術(shù)。EST(ExpressedSequenceTags)DNADatabankscDNAresourcesGenbank(NCBI),NucleotideSequenceDatabase(EMBL),DDBJ,MGC,…GenomicDNAresourcesHTG,dbGSS,GOLD,ERGO,…ESTresourcesdbEST,UniGene,GIs,STACKS,DOTS,…OthersdbSTS,UniSTS,dbSNP,TransFac,ISIS,Repbase,......常用基因組網(wǎng)址:擬南芥:TheArabidopsisInformationResource(TAIR)

/水稻:RiceGene

http:///大豆:SoyBase

4/玉米:MaizeDB,MaizeGDBhttp:///小麥:GrainGene

http:///棉花:CottonDB

/htdocs-cotton/cottondb.html苜菽:Alfagenes

http:///大麥:BarleyDB--http:///barley.html油菜:BrassicaDB

Http:///brassica.html高梁:SorghumDbhttp:///sorghumdb.html單核苷酸多態(tài)(SNP

-singlenucleotidepolymophism)SNP是由于單個(gè)核苷酸改變而導(dǎo)致的核酸序列多態(tài),即基因中的點(diǎn)突變。特點(diǎn):雙等位基因在基因組中的發(fā)生頻率比較高有些SNP位點(diǎn)還影響基因的功能

SNPs可大大豐富既有的連鎖圖成熟自動(dòng)化技術(shù),有望分析成千上萬(wàn)的SNPs

cSSR、cSNP———從EST中開(kāi)發(fā)SSR、SNP目前某些植物全序列的測(cè)定及EST數(shù)據(jù)庫(kù)的開(kāi)發(fā),為SSR、SNP的開(kāi)發(fā)開(kāi)辟了新的途徑。優(yōu)點(diǎn):表達(dá)序列,與特定功能有聯(lián)系多態(tài)性豐富,可大大豐富標(biāo)記數(shù)目開(kāi)發(fā)簡(jiǎn)單、經(jīng)濟(jì)利用DNA芯片技術(shù),將大量探針固定于玻/硅片上,然后用熒光標(biāo)記樣品進(jìn)行大量分子雜交,以比較不同組織或器官的基因表達(dá)水平,篩選突變基因,分析基因表達(dá)模式。

優(yōu)點(diǎn):密度高、制作方便,解決了傳統(tǒng)核酸雜交技術(shù)復(fù)雜、自動(dòng)化程度低、檢測(cè)目的分子數(shù)量少、低通量等不足DNA微陣列(Microarray)微型化高通量—提高信息量平行化—提高信息的可比性微量化—降低待檢樣品用量自動(dòng)化—提高工作效率低成本—可迅速普及推廣生物芯片的特征與優(yōu)點(diǎn)蛋白質(zhì)組學(xué)為基礎(chǔ)的分子標(biāo)記蛋白質(zhì)是基因表達(dá)的產(chǎn)物,是基因功能的執(zhí)行體,決定了生物的生長(zhǎng)、發(fā)育、繁殖等各種性狀。蛋白質(zhì)組研究---了解生物體蛋白質(zhì)表達(dá)的時(shí)空分布規(guī)律,不同個(gè)體/組織間的表達(dá)差異蛋白質(zhì)分子標(biāo)記---定位生物的表性變異(如抗病、抗逆等性狀)和相關(guān)基因Thekeytechniqueinvolvesinproteomics1.Massspectrometry2.Two-dimensionalgelelectrophoresis3.Yeasttwo-hybridsystem分子標(biāo)記技術(shù)

在植物遺傳研究中的應(yīng)用利用遺傳圖和遺傳標(biāo)記可用來(lái)加速植物育種進(jìn)程。經(jīng)典遺傳圖譜:形態(tài)、生理和生化標(biāo)記,數(shù)量極為有限,圖譜分辨率大都很低,表現(xiàn)標(biāo)記少,圖距大,飽和度低。分子標(biāo)記技術(shù)的發(fā)展,使圖譜上標(biāo)記的密度越來(lái)越高。植物基因組遺傳作圖構(gòu)建遺傳圖譜(molecularmarkerlinkagemap)以具有遺傳多型性的分子標(biāo)記為“路標(biāo)”P(pán)olymorphicmolecularmarkeras“routesign”以減數(shù)分裂中發(fā)生的遺傳重組交換值為圖距Recombinationfrequency(%)inmeiosisas“mapdistance(cM)”繪制高密度的分子標(biāo)記連鎖圖GeneticlinkagemapwithhighdensityQTL作圖所需的數(shù)據(jù)遺傳標(biāo)記數(shù)據(jù)數(shù)量性狀數(shù)據(jù)分子標(biāo)記連鎖圖譜的構(gòu)建

定位群體親本間多態(tài)性分子標(biāo)記的篩選定位群體的組建

定位群體分子標(biāo)記分析分子標(biāo)記連鎖圖譜的繪制利用3個(gè)分離群體,一個(gè)人,三個(gè)月時(shí)間,能完成包括1032個(gè)AFLP標(biāo)記的遺傳連鎖圖譜(Faye等1995)。AFLP不僅能縮小抗病基因與連鎖標(biāo)記之間的距離,而且在RFLP遺傳圖上,可增加染色體末端標(biāo)記和填充RFLP空隙,不干擾RFLP標(biāo)記簇,從而大大增加了遺傳圖的飽和度。在植物遺傳多樣性研究上的應(yīng)用對(duì)植物種質(zhì)資源遺傳多樣性的全面了解,對(duì)于拓寬遺傳基礎(chǔ)的育種策略十分重要。eg.賈繼增等(1997)利用21條染色體上473個(gè)RFLP探針對(duì)小麥遺傳多樣性分析發(fā)現(xiàn),小麥不同位點(diǎn)、不同染色體上的遺傳多樣性各不相同,普通小麥B基因組遺傳多樣性較高,其中尤以2B、6B、7B更高,而D組的遺傳多樣性最差。對(duì)在小麥育種中引進(jìn)新的遺傳變異具有一定的意義。

eg.通過(guò)288個(gè)位點(diǎn)上對(duì)338個(gè)一粒小麥系群AFLP指紋分析,結(jié)合種系分析,發(fā)現(xiàn)來(lái)源于土耳其東南部Karacadag山脈的一個(gè)野生一粒小麥(T.boeoticum)群體與栽培一粒小麥(T.monococcum

)遺傳上最為相近,從而推斷該地區(qū)為現(xiàn)代栽培一粒小麥的發(fā)源地(Heun等1998)。植物起源、分類(lèi)和進(jìn)化研究品種的DNA指紋圖譜

定義:能夠鑒定作物品種之間差異的電泳圖譜。特點(diǎn):高度的個(gè)體特異性、環(huán)境的穩(wěn)定性及豐富的多態(tài)性。用途:鑒定品種真實(shí)性和純度,用于新品種登記和品種知識(shí)產(chǎn)權(quán)保護(hù)等。其中AFLP被推薦為指紋圖譜繪制的最佳方法之一。eg.Law等(1998)利用6個(gè)AFLP引物組合產(chǎn)生90多條多態(tài)性條帶,建立了英國(guó)1934-1994廣泛種植的55份小麥的指紋圖譜。基因定位

質(zhì)量性狀的基因定位

近等基因系(NearIsogenicLines,NILs)NILs幾乎僅在目標(biāo)性狀上存有差異,一般凡是能在近等基因系間揭示多態(tài)性的分子標(biāo)記,就極可能位于目標(biāo)基因的兩翼附近。利用NILs方法已定位了許多質(zhì)量性狀基因,eg.番茄抗病毒基因Tm-2a,番茄抗細(xì)菌病毒基因及水稻半矮桿基因Sdy等。原理:將分離群體(F2、BC、DH)中的個(gè)體依據(jù)目標(biāo)性狀(如抗病、感病)分成兩組,在每一組中將若干個(gè)體DNA等量混合,形成兩個(gè)DNA混合池(如抗病池和感病池)。由于分組時(shí)僅對(duì)目標(biāo)性狀進(jìn)行選擇,因此兩個(gè)池之間理論上就應(yīng)主要在目標(biāo)基因區(qū)段存有差異,也稱近等基因池法。優(yōu)點(diǎn):克服了許多作物沒(méi)有或難以創(chuàng)造相應(yīng)NILs的限制(Michelmore等1991)。定位基因:萵苣抗霜霉病基因、水稻抗癭蠓基因水稻抗稻瘟病基因、水稻耐黃叢卷葉病毒病基因等分離群體分組分析法(BulkedSegregationAnalysis)產(chǎn)量、品質(zhì)、熟期等大多數(shù)重要農(nóng)藝性狀,均表現(xiàn)數(shù)量性狀的遺傳特點(diǎn),受許多數(shù)量基因座位(QuantitativeTraitLoci,QTLs)和環(huán)境因子的共同作用。數(shù)量遺傳學(xué)無(wú)法確定控制數(shù)量性狀的QTLs數(shù)目,也無(wú)法確定單個(gè)QTL的遺傳效應(yīng)及染色體位置。分子連鎖圖譜的發(fā)展,可以實(shí)現(xiàn)對(duì)單個(gè)QTL遺傳效應(yīng)的追蹤,從而應(yīng)用于分子標(biāo)記輔助選擇。目前已發(fā)展了QTLs定位的多種方法。數(shù)量性狀基因的定位基于圖譜的基因克隆

誰(shuí)最先了解基因的功能,誰(shuí)就擁有了該基因的知識(shí)產(chǎn)權(quán),也就獲得了更多的利潤(rùn)。

克隆基因途徑——正向遺傳學(xué)和反向遺傳學(xué)。前者以欲克隆基因的功能為基礎(chǔ),通過(guò)鑒定其產(chǎn)物或某種表型的突變進(jìn)行;后者則著眼于基因本身,通過(guò)其特定的序列或其在基因組中的特定位置進(jìn)行。圖位克隆條件:(1)目標(biāo)基因附近緊密連鎖的DNA標(biāo)記;(2)知道這些標(biāo)記與目的基因的位置一旦建立與目的基因緊密連鎖的分子標(biāo)記圖,就可以找到染色體步行的起始點(diǎn),從而進(jìn)行定位克隆。比較基因組研究

利用相同的DNA分子標(biāo)記(主要是cDNA標(biāo)記和基因克?。┰谙嚓P(guān)物種之間進(jìn)行遺傳或物理作圖,比較這些標(biāo)記在不同物種基因組中的分布特點(diǎn),揭示染色體或染色體片段上的基因及其排列順序的相同或相似性,并由此對(duì)相關(guān)物種的基因組結(jié)構(gòu)和起源進(jìn)化進(jìn)行分析。新發(fā)現(xiàn):不同物種之間在標(biāo)記探針的同源性、拷貝數(shù)及連鎖順序上都具有很大程度的保守性。eg

番茄、馬鈴薯和辣椒(Tanksley等1988;1992);水稻、小麥和玉米(Ahn等,1993;1994);小麥、大麥和黑麥(Devos等,1993);高粱和玉米(Pereira等,1994);以及大麥和水稻(Maroof等,1996)......比較基因組學(xué)研究表明,不同物種之間在標(biāo)記探針的同源性,拷貝數(shù)及連鎖順序上都具有很大程度的保守性。啟示:模式植物上遺傳作圖成果可推而廣之??山柚容^基因組共享分子標(biāo)記,使建立高密度遺傳連鎖圖可資利用的標(biāo)記顯著增加,從而大大提高了獲取離目標(biāo)基因很近分子標(biāo)記的的可能性。應(yīng)用比較基因組學(xué)進(jìn)行基因的克隆綠色革命Rht1、Rht2基因的克隆擬南芥GAI水稻EST篩選小麥BAC文庫(kù)Rht1、Rht2Blast探針標(biāo)記深遠(yuǎn)意義比較基因組研究已使得傳統(tǒng)的植物遺傳學(xué)突破了物種的框架限定,發(fā)展成了新的系統(tǒng)遺傳學(xué)。隨著最近一些生物的基因組全序列的獲得,比較基因組研究也隨之步入了一個(gè)新的時(shí)代。研究基因表達(dá)與調(diào)控傳統(tǒng)方法是利用cDNA文庫(kù)篩選和Northern雜交。AFLP研究基因表達(dá)是非常有效的方法,可同時(shí)比較植物發(fā)育的不同時(shí)期以及分離某些重要基因(cDNA-AFLP)。利用cDNA-AFLP的方法,闡明了馬鈴薯塊莖在不同發(fā)育階段基因表達(dá)的情況,并克隆了2個(gè)與塊莖脂肪氧合酶高度同源的cDNA片段(Bachem等1996)。在植物育種上的應(yīng)用在雜交育種中,單單根據(jù)育種材料的表型特點(diǎn)選配親本,往往會(huì)受到環(huán)境條件的干擾。輔之以DNA分子標(biāo)記的差異性分析,將使得親本選配更為快速、準(zhǔn)確,從而提高育種效率。揭示育種材料之間的親緣關(guān)系雜種優(yōu)勢(shì)利用正成為許多作物提高產(chǎn)量和改善品質(zhì)的重要途徑。對(duì)遺傳差異與雜種優(yōu)勢(shì)關(guān)系的評(píng)價(jià)方法經(jīng)歷了從形態(tài)性狀遺傳距離,到生化標(biāo)記遺傳差異,親緣系數(shù),以及分子標(biāo)記遺傳差異等各種嘗試。雜種優(yōu)勢(shì)預(yù)測(cè)及機(jī)理研究

DNA分子標(biāo)記的應(yīng)用,使得能夠在整個(gè)基因組范圍內(nèi)對(duì)大量親本材料間的遺傳距離進(jìn)行估測(cè),并在此基礎(chǔ)上有效地預(yù)測(cè)具有強(qiáng)優(yōu)勢(shì)的組合(Smith等,1992;Bernardo,1994)。結(jié)果:既有相關(guān)性很高的報(bào)道,又有完全相反的結(jié)果。張啟發(fā)認(rèn)為:分子標(biāo)記雜合度與雜種優(yōu)勢(shì)的相關(guān)性因遺傳材料而異,在經(jīng)過(guò)改良的優(yōu)良種質(zhì)中,兩者之間高度相關(guān),而在一些未經(jīng)改良的優(yōu)良種質(zhì)中,相關(guān)程度很低。提出了“上位性是雜種優(yōu)勢(shì)的主要遺傳基礎(chǔ)”的重要觀點(diǎn)。應(yīng)用cDNA-AFLP技術(shù)進(jìn)行雜種優(yōu)勢(shì)機(jī)理的研究表明,強(qiáng)優(yōu)勢(shì)與弱優(yōu)勢(shì)組合間基因表達(dá)有明顯差異,有增強(qiáng)型、減弱型和沉默型。雜種優(yōu)勢(shì)表現(xiàn)與單親沉默、雙單親沉默有密切關(guān)系。大量研究表明,雖然分子標(biāo)記揭示的遺傳距離與雜種優(yōu)勢(shì)的關(guān)系比較復(fù)雜,但親本之間的遺傳差異

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