血小板凍干再水化的條件及其凝血功能變化,分子生物學(xué)論文

血小板凍干再水化的條件及其凝血功能變化,分子生物學(xué)論文血小板(platelet)是由骨髓巨核細胞產(chǎn)生并釋放于血液循環(huán)中的最小細胞,在止血和凝血經(jīng)過中發(fā)揮著重要的作用。由于血小板保質(zhì)期較短，臨床輸注需求量大，加之臨床輸注需求時間的不確定性，造成了血小板過期浪費和臨床供不應(yīng)求的兩難尷尬局面。當前國內(nèi)血小板主要保存方式是22℃振蕩保存，有效期為5d。除此之外血小板還可深低溫冰凍保存，但這種方式方法的保存效果和臨床療效不確切。冷凍枯燥技術(shù)已廣泛應(yīng)用于各種生物材料的保存，凍干制品具有常溫下保存、性能穩(wěn)定、便于運輸?shù)奶攸c。本研究以過期血小板為原料，探尋求索血小板凍干再水化的條件，檢測其凍干再水化后凝血功能的變化，為過期血小板再利用及新鮮血小板冰凍或低溫保存研究提供了根據(jù)。1、材料與方式方法1.1實驗材料1.1.1血小板來源實驗組選擇體檢合格，一周內(nèi)未服用阿司匹林等抗血小板藥物的自愿獻血者，用血細胞分離機單采富含血小板血漿，22℃振蕩保存5d過期；對照組選擇新鮮機采血小板。1.1.2主要試劑和溶液海藻糖(CH22O112H2O，北京經(jīng)科宏達生物技術(shù)有限公司)；牛血清白蛋白(BSA，上海生工生物工程有限公司)；磷酸鹽緩沖液(PBS)；血小板聚集誘導(dǎo)劑二磷酸腺苷(ADP，Sigma公司)；凝血酶(Sigma公司)；膠原(Sigma公司)；瑞斯托霉素(Sigma公司)；CD62P-PE(Bioscience公司)；PAC-1-FITC(BDIS公司)；海藻糖加載緩沖液(含50mmol/L海藻糖，100mmol/LNaCl，10mmol/LKCl，10mmol/LEGTA，pH為6.8)；凍干保衛(wèi)劑(含20%海藻糖，1%牛血清白蛋白，9.5mmol/LHEPES，142.5mmol/LNaCl，4.8mmol/LKCl，1mmol/LMg-Cl2)；復(fù)水溶液為PBS緩沖液和蒸餾水以3:1比例混合制成。以上試劑和溶液均在有效期內(nèi)。1.2主要儀器冷凍枯燥機(LabConco，美國)；恒溫振蕩水浴(BellcoGlass，美國)；流式細胞儀(FACS-Calibur，BD，美國)；血球計數(shù)儀(CELL－DYN1700，Abbott，美國)；血小板聚集儀(APACT-2型)。1.3實驗方式方法1.3.1血小板的凍干保存血小板濃縮液離心洗滌后重懸于海藻糖加載緩沖液中，將上述懸浮液轉(zhuǎn)移進入離心管中，并用聚四氟乙稀生料帶密封，于37℃水浴中振蕩孵化4h。將孵化后的血小板懸浮液800g離心3min。去除上層孵化液，得到沉淀的血小板塊，參加凍干保衛(wèi)液打散重懸，使用血球計數(shù)儀進行計數(shù)，調(diào)節(jié)血小板在凍干保衛(wèi)液中的濃度為1109個/ml。將制備好的血小板凍干懸浮液裝入特制凍干血盒中，密封充注口。將血小板凍干懸液先以20℃/min的速率凍結(jié)至-40℃，預(yù)凍2h后，再以1.5℃/min對擱板升溫至-30℃，退火0.5h，然后進入一次枯燥，-38℃維持一次枯燥條件20h，最后以0.2℃/min的加熱速率使隔板溫度升高至20℃，維持二次枯燥條件10h直至凍干結(jié)束。凍干的血小板密封保存在室溫。1.3.2凍干血小板的水化將PBS緩沖液和蒸餾水以3:1的比例混合制成血小板凍干復(fù)水液，將1ml復(fù)水液在室溫下直接參加凍干樣品瓶中，輕輕震蕩直到樣品完全溶解于復(fù)水溶液中。1.3.3檢測血小板回收率用血球計數(shù)儀分別對凍干前和凍干再水化后的血小板計數(shù)，計算凍干再水化血小板回收率。凍干再水化血小板回收率(%)=凍干再水化后血小板計數(shù)/凍干前血小板計數(shù)100%。1.3.4檢測血小板穩(wěn)定性凍干再水化血小板分別在室溫放置0h、2h、4h、6h、8h后，用血球計數(shù)儀測定血小板回收率。1.3.5血小板形態(tài)及超微構(gòu)造觀察用掃描電鏡觀察血小板的形態(tài)；分別以戊二醛固定、脫水、環(huán)氧樹脂包埋后制作超薄切片，用透射電鏡觀察血小板超微構(gòu)造變化。1.3.6血小板聚集反響檢測將凍干血小板復(fù)水后轉(zhuǎn)入離心管中進行洗滌以去除細胞外保衛(wèi)劑，再用新鮮冰凍血漿重懸血小板，調(diào)整血小板濃度為(0.2~0.3)1012/L。用APACT-2型血小板聚集儀檢測凍干再水化后血小板對四種同濃度誘導(dǎo)劑凝血酶、膠原、ADP和瑞斯托霉素的聚集反響。1.3.7血小板外表糖蛋白檢測用三色流式細胞儀分別檢測凍干再水化血小板外表激活指標CD62p和PAC-1的表示出，經(jīng)凝血酶激活后測定CD62p和PAC-1的再表示出。再表示出率=凝血酶處理后表示出率-血小板表示出率1.3.8統(tǒng)計分析數(shù)據(jù)以均數(shù)標準差(xs)表示，采用SPSS16.0統(tǒng)計軟件進行數(shù)據(jù)分析處理，組間差異比擬用t檢驗，P0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。2、結(jié)果2.1血小板回收率及穩(wěn)定性實驗組和對照組間血小板計數(shù)有統(tǒng)計學(xué)意義(P0.05)，凍干再水化血小板回收率為49.36%，見表1；凍干再水化血小板穩(wěn)定性隨血小板放置時間的延長，血小板回收率逐步下降，見圖1。2.2血小板形態(tài)及超微構(gòu)造掃描電鏡顯示新鮮血小板透光性較強，形態(tài)呈圓形或橢圓形，邊緣光滑，而凍干再水化血小板透光性較弱，血小板變形，見圖2A和B。透射電鏡顯示新鮮血小板著色較深，顆粒、致密顆粒、過氧化酶顆粒等分散、清楚明晰，而凍干再水化血小板著色較淺，致密顆粒及顆粒不夠清楚明晰，且數(shù)目少于對照組，見圖2C和D。2.3聚集反響實驗組和對照組間血小板同濃度誘導(dǎo)劑下的最大聚集率均有統(tǒng)計學(xué)意義(P0.05)，實驗組血小板對凝血酶、膠原、ADP和瑞斯托霉素的聚集功能較對照組均出現(xiàn)下降，見表2。2.4血小板外表糖蛋白實驗組CD62p表示出率和再表示出率分別為50.25%、94.27%，均顯著高于對照組的8.12%、78.43%(P0.05)；凝血酶作用后CD62p再表示出率為44.02%，顯著低于對照組70.31%(P0.05)。實驗組PAC-1表示出率為3.85%，與對照組相比擬無顯著性差異(P0.05)，PAC-1再表示出率為42.75%，顯著低于對照組67.29%(P0.05)，凝血酶作用后PAC-1再表示出率為38.90%，顯著低于對照組65.28%(P0.05)，見表3。3、討論血小板數(shù)目減少或功能不全所致出血性疾患的預(yù)防和治療，臨床多采用輸注血小板制劑。血小板保存技術(shù)的缺陷是血小板過期浪費和臨床供不應(yīng)求的兩難處境的主要原因，因而，研究出一種能長期、高效、安全和方便的血小板保存方式方法一直是國內(nèi)外輸血工作者關(guān)注的熱門和難題。將過期的血小板再利用及血小板的凍干保存有著廣闊的應(yīng)用前景。本研究顯示凍干再水化的過期血小板回收率及穩(wěn)定性較差，講明凍干和再水化經(jīng)過對血小板功能造成一定影響，應(yīng)進一步改良凍干保存時擱板溫度，復(fù)水液組分和比例，以及增加預(yù)復(fù)水步驟。透射電鏡下新鮮血小板著色相對較深，可能為新鮮血小板生物活性較高或膜通透性相對較高，因此有較強吸附染料的能力。CD62p和PAC-1分別為血小板外表活化晚期標志物和活化早期的標志物，結(jié)果顯示過期血小板對凝血酶、ADP、膠原及瑞斯托霉素的最大聚集率明顯小于新鮮血小板，凝血酶作用后CD62p和PAC-1的再表示出率低于新鮮血小板，講明過期以及凍干和再水化經(jīng)過對血小板凝血功能有影響，但凍干再水化的過期血小板仍具有一定的存活能力和功能活性，因而選擇血小板進行冷凍枯燥保存是血小板長期保存切實可行的方式方法，為新鮮血小板冷凍枯燥保存提供理論根據(jù)。但對該方式方法保存血小板的回收率、穩(wěn)定性以及凝血功能等還需做進一步研究與改良，以到達臨床應(yīng)用的要求。以下為參考文獻：[1]王捷熙,楊超,王艷,等.小分子糖負載血小板+凍干保衛(wèi)劑混合懸液的相變點測定與屏蔽實驗研究[J].中國輸血雜志,2018,5(23):338-340.[2]王捷熙,韓穎,楊超,等.生物化學(xué)穩(wěn)定法冰凍枯燥血小板制劑的功能研究[J].中國輸血雜志,2018,5(23):341-343.[3]池春燕,林力紅.外科DIC患者輸注冷沉淀凝血因子的療效觀察[J].實驗與檢驗醫(yī)學(xué),2020,32(1):53-56.[