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文檔簡介
一、任務(wù)來源
本國家標準的制定任務(wù)列入國家標準化管理委員會2017年第三批國家標準
制修訂計劃,項目編號“20171816-T-424”。該標準由中國標準化研究院提出并
歸口,由清華大學(xué)等單位承擔(dān)該標準的制定任務(wù)。
二、標準制定目的和意義
微生物自發(fā)突變頻率狠低,正突變頻率更低,通過自然選育提高菌種生產(chǎn)能
力、篩選高產(chǎn)菌株的效率較低,效果不明顯。因此在生產(chǎn)實踐中,以人工誘變基
因突變?yōu)榛A(chǔ)的誘變育種是微生物育種的主要方法,尤其發(fā)酵工業(yè)中的各種優(yōu)良
高產(chǎn)菌株絕大部分都是以誘變育種方法獲得的。
化學(xué)誘變和紫外誘變是傳統(tǒng)的誘變育種方法,應(yīng)用范圍廣,誘變效果顯著;
ARTP誘變是新興的誘變方法,與化學(xué)誘變和紫外誘變相比更安全、高效。三種
方法各有利弊,實際生產(chǎn)中往往需要結(jié)合不同的誘變方法,通過多輪誘變來獲得
高性能的菌株。此標準編制旨在規(guī)范這三種誘變方式的實驗方法,以更好的推動
微生物誘變育種行業(yè)的發(fā)展。
三、標準制訂原則和依據(jù)
(一)標準編制原則
本標準參考了其他同類國家標準的內(nèi)容,同時充分考慮我國微生物誘變育種
的使用經(jīng)驗和要求。
(二)標準制訂主要依據(jù)
1、標準編寫遵循GB1.1-2009《標準化工作導(dǎo)則第1部分:標準的結(jié)構(gòu)和
編寫規(guī)則》的有關(guān)要求。
2、標準編寫內(nèi)容參考我國與誘變相關(guān)的文件、標準,包括
GB/T6682分析實驗室用水規(guī)格和試驗方法
GB/T27831-2011化學(xué)品遺傳毒性釀酒酵母菌基因突變試驗方法
GB/T21793-2008化學(xué)品體外哺乳動物細胞基因突變試驗方案
四、標準主要技術(shù)內(nèi)容
1
(一)標準適用范圍說明
本標準方法屬于生物技術(shù)范疇,主要用于微生物化學(xué)、物理誘變育種。規(guī)定
了微生物誘變育種的術(shù)語和定義、基本要求和操作步驟。
本標準適用于紫外線、等離子體和化學(xué)誘變劑等誘變方法對微生物進行誘變
育種的實驗操作流程。
(二)內(nèi)容提要
規(guī)定了紫外誘變、化學(xué)誘變和ARTP誘變的原理和適用范圍、誘變材料的準
備、誘變條件的選擇和操作步驟。
五、主要工作過程
2016年接到編制任務(wù),開展資料收集和分析工作。研究了GB/T27831-2011
《化學(xué)品遺傳毒性釀酒酵母菌基因突變試驗方法》、GB/T21793-2008《化
學(xué)品體外哺乳動物細胞基因突變試驗方案》了解了突變試驗的相關(guān)要求,同時
收集了紫外誘變、等離子體誘變、化學(xué)誘變期刊文章,總結(jié)各種誘變的操作規(guī)范。
了解微生物誘變應(yīng)用范圍、處理條件基本情況。
利用本課題組自主研發(fā)的常壓室溫等離子體誘變育種儀(ARTP)建立了等
離子體誘變的操作方法,并誘變了大腸桿菌,得到了致死率隨ARTP照射時間的
變化。
為了使編制的標準能更好的適用微生物誘變育種應(yīng)用,同時有效地促進誘變
育種效率的提高,在2016年10月提出了標準討論提綱,確定了編制原則和主要
內(nèi)容。該標準于2017年10月在全國標準信息公共服務(wù)平臺上進行公示,于2019
年2月召開專家會,聽取專家意見。
六、方法驗證及結(jié)果
(一)紫外誘變粗狀假絲酵母
1、供試菌株:粗狀假絲酵母(Candidavalida)1444
2、誘變條件:采用功率為20W紫外燈,照射距離為30cm,照射時間為0、
2、4、6、8、10、12、14分鐘。
3、操作步驟
2
誘變處理時先打開紫外燈,預(yù)熱20min,以穩(wěn)定波長。取制好的菌懸液5ml
于直徑為7cm的無菌培養(yǎng)皿中,內(nèi)加磁力轉(zhuǎn)子(無菌),在磁力攪拌下,開蓋用
紫外光照射不同時間,每隔2min定時取出菌液,于冰浴中保存1h,同未經(jīng)紫
外照射的菌液用無菌水進行梯度稀釋,每個稀釋度做3個平行,涂布于普通固
體平板,用黑色膠袋包好于30℃恒溫培養(yǎng)2d,觀察不同處理時間的平板菌落數(shù),
計算致死率。
4、實驗結(jié)果
出發(fā)菌株1444粗壯假絲酵母經(jīng)紫外線照射不同時間的致死曲線如圖1所
示,照射6min時致死率達85%,可作為后續(xù)誘變的條件。
圖1紫外誘變粗狀假絲酵母致死率曲線
(二)化學(xué)誘變樹狀多節(jié)孢
1、供試菌株:樹狀多節(jié)孢(NodulisporiumSylviforme)
2、誘變條件:誘變劑選用亞硝基胍(NTG),誘變劑濃度為0.5mg·mL-1、1.0
mg·mL-1、2.0mg·mL-1、3.0mg·mL-1、4.0mg·mL-1、5.0mg·mL-1,誘變時間為
10min、20min、30min,誘變溫度為26~28℃。
3、實驗步驟
用丙酮試劑將亞硝基胍溶液配制成終濃度為0.5mg·mL-1、1.0mg·mL-1、
2.0mg·mL-1、3.0mg·mL-1、4.0mg·mL-1、5.0mg·mL-1。取0.5mLNTG處
理液與4.5mL稀釋的孢子懸液混合,置于直徑6cm的培養(yǎng)皿內(nèi),開啟磁力攪
拌器,在26~28℃條件下分別處理10min、20min、30min后,用pH為8.0
的磷酸緩沖溶液稀釋終止反應(yīng),進行10-1、10-2、10-3系列梯度稀釋。從每個稀
3
釋度中取0.2mL/皿涂布于加有25~30mLPDA固體培養(yǎng)基平板上,28℃避光恒
溫培養(yǎng)3~5d,計數(shù)各梯度平皿菌落數(shù)并計算致死率。每次試驗測定結(jié)果都采
用三個平行組,測試結(jié)果為各重復(fù)樣的平均值。
4、實驗結(jié)果
本試驗應(yīng)用不同濃度NTG對紫杉醇產(chǎn)生菌原生質(zhì)體懸液進行處理,當(dāng)其濃
度超過5.0mg·mL-1、處理15min時,紫杉醇產(chǎn)生菌HD1-3的孢子完全致死(致
死率為100%)。因此,本試驗選定NTG溶液濃度3.0mg·mL-1、處理20min
作為適宜誘變劑量(致死率為74.6%±3.8%)(見表1)。
表1不同NTG溶液濃度和處理時間下原生質(zhì)體致死率
亞硝基胍濃度(mg·ml-1)時間(min)致死率(100%)
1020.7±1.8
0.51528.5±1.7
2041.3±2.3
1032.6±2.7
1.01549.3±2.5
2053.8±3.2
1047.6±2.6
2.01556.8±3.7
2067.1±3.6
1069.2±4.1
3.01574.6±4.3
2076.3±3.8
1076.3±4.3
4.01588.4±4.6
2097.6±4.3
1096.4±5.2
5.015100
20100
(三)ARTP誘變
1、供試菌株:大腸桿菌,
2、誘變條件:功率設(shè)定在100W,氣流量設(shè)定在10slpm,輻照距離2mm。
調(diào)整不同的處理時間:0s、30s、60s、120s、180s、240s、300s
3、實驗步驟
用移液槍吸取10ul對數(shù)生長中期的菌液滴到無菌的小鐵片中央,再將鐵片
置于帶蓋的無菌平皿中,每次用無菌鑷子取一片滴有誘變材料的鐵片置于常壓室
溫等離子體下照射一定時間,每個樣品設(shè)三個重復(fù)。取相同的菌液作為陰性對照,
4
陰性對照不照射等離子體。照射結(jié)束后,立即把照射過的小鐵片和陰性對照鐵片
直接放入準備好的預(yù)先加入1ml培養(yǎng)基的無菌EP管中,利用旋渦混合器,使菌
株掉落到培養(yǎng)基中。這一過程相當(dāng)于菌液已經(jīng)被稀釋100倍了。處理完成后的材
料和陰性對照稀釋到104cfu/ml、105cfu/ml、106cfu/ml(以誘變材料濃度為初始
值計算稀釋倍數(shù)),吸取50~100μl涂布固體平板,培養(yǎng)至產(chǎn)生菌落,選擇每塊
平板菌落數(shù)為102cfu數(shù)量級的平板計算菌落數(shù),計算致死率。
圖2ARTP誘變操作流程圖
制備菌懸液(或孢子懸液)→制作菌物載片→ARTP處理→洗脫形成新的菌懸液→涂布
→培養(yǎng)形成單菌落→液體培養(yǎng)篩選突變株
4、實驗結(jié)果
如表2所示,大腸桿菌用ARTP照射300s致死率為100%,240s致死率為
99.3%,可以選擇240s可作為適宜的誘變劑量。
表2大腸桿菌ARTP誘變致死率隨照射時間的變化
照射時間(秒)菌落數(shù)(×108)致死率(%)
08500.0
30
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