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文檔簡介
本文由探生科技技術(shù)人員提供,如果您想了解更多關(guān)于抗體的信息,可以訪問Fantibody全球抗體搜索引擎,您身邊的抗體專家查找相關(guān)資料,希望對您有幫助!dsRNA阻斷大鼠骨髓源性神經(jīng)干細胞Hes5表達的實驗研究摘要:目的
觀察外源性短雙鏈RNA(dsRNA)在轉(zhuǎn)錄后水平即mRNA水平降低基因表達的效率,并對其影響因素進行初步探討。方法
將體外分離培養(yǎng)的大鼠骨髓基質(zhì)細胞,通過由本實驗室配制的特殊培養(yǎng)基誘導(dǎo)成神經(jīng)干細胞,應(yīng)用人工合成的dsRNA于不同濃度轉(zhuǎn)染神經(jīng)干細胞,Westernbloting檢測dsRNA是否能阻斷轉(zhuǎn)錄因子Hes5的表達,0.5%錐蟲藍法測定各濃度組中培養(yǎng)細胞活力。結(jié)果
200~300nmol/L濃度的dsRNA能特異有效地阻斷Hes5的表達,而50~200nmol/L濃度的dsRNA有利于干細胞存活。結(jié)論
dsRNA能在神經(jīng)干細胞內(nèi)啟動RNA干擾作用,適宜濃度的dsRNA能在特異有效地阻斷內(nèi)源性基因的表達的同時,最大限度地保持細胞活力。關(guān)鍵詞:雙鏈RNA;Hes5;神經(jīng)干細胞,骨髓源性;RNA干涉;免疫印跡
Blockingwithdouble-strandedRNAoftheexpressionofHes5inratbonemarrow-derivedneuralstemcells
WANGHai-yan1;XURu-xiang1;JIANGXiao-dan1;LUOShen-qiu2
1InstituteofNeuromedicineofPLA,ZhujiangHospital,FirstMilitaryMedicalUniversity,Guangzhou510282,China;2DepartmentofCellularBiology,FirstMilitaryMedicalUniversity,Guangzhou510515,China
Abstract:Objective
Toexaminetheefficiencyofexogenoussmalldouble-strandedRNA(dsRNA)inknockingdownthegeneexpressionatthepost-transcriptionlevel,andinvestigatethefactorsthatmayinfluencethetransfection.Method
ThebonemarrowstromalcellsofSDratwereseparatedandculturedinvitro,followedbyinductionofthecellstoevolveintoneuralstemcellsusingspecialculturemediumpreparedbyourlaboratory.SyntheticdsRNAwasthentransferredintothecellsatvariedconcentrations,andtheresultswereanalyzedbyWesternblotting.Results
Theconcentrationsrangingfrom200to300nmol/LwereoptimalforspecificallyblockingtheexpressionofHes5,whereasthesuitableconcentrationsforthecellsurvivalwerebetween50and200nmol/L.Conclusion
dsRNAiscapableoftriggeringRNAinterferenceinneuralstemcells,andatappropriateconcentration,itmayspecificallyandeffectivelyknockdownendogenousgeneexpressionwithoutsacrificingtheviabilityofthecells.
Keywords:double-strandedRNA;hairyandenhancerofsplit;neuralstemcell,bonemarrow-derived;RNAinterference;Westernblotting
收稿日期:2003-07-11
基金項目:國家自然科學(xué)基金(3027049);軍隊及廣東省科技廳“十五”重大項目(01z054)
ThestudyissupportedbyNationalNaturalScienceFoundationofChina(3027049),andisakeyprojectoftheTenthFive-yearPlanofthePLAandScienceandTechnologyCommissionofGuangdongProvince
作者簡介:王海燕(1972-),女,第一軍醫(yī)大學(xué)在讀碩士研究生,電話E-mail:haiyanwang838@
RNA干涉(RNAinterference,RNAi)是一種轉(zhuǎn)錄后水平的基因沉默,作為關(guān)閉特定基因功能的新技術(shù),為研究特定基因功能提供了一種快速、簡便的方法,其特點是當外源性短雙鏈RNA(double-strandedRNA,dsRNA)進入細胞后,能高效的降解同源的mRNA,從而抑制相應(yīng)基因的表達。盡管RNAi在非哺乳動物細胞和部分哺乳動物細胞系如Hela、HEK293和P19中能有效發(fā)揮作用,RNAi在骨髓源性神經(jīng)干細胞內(nèi)是否能有效短暫地降解目的基因在蛋白水平的表達,目前還不清楚。為此,本實驗通過體外分離培養(yǎng)SD大鼠骨髓基質(zhì)細胞,經(jīng)本實驗室配制的特殊培養(yǎng)基誘導(dǎo)成神經(jīng)干細胞,然后應(yīng)用人工合成的dsRNA轉(zhuǎn)染神經(jīng)干細胞,觀察dsRNA是否能阻斷Hes5(hairyandenhancerofsplit)——一個特定表達于神經(jīng)干細胞的Notch信號通路下游基因的表達,并對其相應(yīng)的機制進行初步探討。
1
材料和方法
1.1
實驗動物與材料
6月齡健康成體SD大鼠,體質(zhì)量130g,由第一軍醫(yī)大學(xué)實驗動物中心提供。神經(jīng)干細胞培養(yǎng)液由本實驗室配制(專利申請中)。細胞分離液(CSM)、堿性成纖維細胞生長因子(bFGF)、L-谷胺酰胺、胰蛋白酶、腦源性神經(jīng)生長因子(BDNF)均購自Sigma公司。胎牛血清購于杭州四季青生物材料研究所。細胞裂解液、生物素化羊抗小鼠IgG及鏈酶親和素-生物素-過氧化酶復(fù)合物購自上海申能博彩生物科技有限公司。Hes5抗體及Nestin抗體購自chemicon公司,Hes5基因的dsRNA設(shè)計后交德國proligo公司合成,HRP標記的兔抗大鼠IgG、生物素化羊抗小鼠IgG、鏈酶親和素-生物素-過氧化酶復(fù)合物及化學(xué)發(fā)光檢測試劑購自武漢博士德生物工程有限公司。
1.2
骨髓基質(zhì)細胞的分離及培養(yǎng)成神經(jīng)干細胞
將大鼠處死后取出股骨,用注射器吸取1.5mlPBS和1.5ml肝素鈉鹽水(125U/ml),從骨的一端緩慢地沖洗骨髓腔。將所得的細胞懸液進行密度梯度離心,取單核細胞層(云霧狀層),按1×106密度種植于含b-FGF20ng/ml和10%FBS的特制培養(yǎng)液進行培養(yǎng),3d后半量換液。換液前用0.01mol/L的PBS輕輕沖洗培養(yǎng)細胞的表面,以去除未貼壁細胞。以后每隔3d換液1次,去除大部分雜質(zhì)細胞。約20~22d可見島嶼狀細胞團,隨機挑選3培養(yǎng)孔作Nestin鑒定,剩余培養(yǎng)孔細胞團用0.01mol/LPBS洗2遍,吸管輕柔吹打,制成單細胞懸液。特制培養(yǎng)基和10%FBS重懸細胞,按1×105/ml隨機分為7組接種于2板12孔培養(yǎng)板中。每組重復(fù)3孔繼續(xù)培養(yǎng)18~24h后,當細胞大概30%~50%融合時進行轉(zhuǎn)染。
1.3
siRNA(smallinterfereRNA)的制備
從GenBank上搜尋大鼠Hes5的cDNA序列,根據(jù)以下原則在編碼區(qū)挑選合適的靶堿基對:(1)最適宜長度為21~23個堿基對,GC比例盡可能的接近50%;(2)避免連續(xù)3個或3個以上的鳥嘌呤;(3)最好選擇由2個腺嘌呤開始的序列;(4)標記正義鏈3'端;(5)確信所選擇的序列與其他的基因不具有同源性。以下為Hes5的dsRNA序列,正義鏈:5'-GAGCCUG-CACCAGGACUAC-3',反義鏈:5'-GUAGUCCUGUGCAGGCUC-3',確信無誤后將目的序列提交德國pro-ligo公司制作。成品為正義鏈和反義鏈混合在一起的粉劑,用時將其溶解為終濃度20μmol/L的溶液。
1.4
細胞轉(zhuǎn)染
上述細胞繼續(xù)培養(yǎng)達到30%~50%融合時進行轉(zhuǎn)染。分別取1.25、2.50、3.75、5.00、6.25、7.50μl的dsRNA原液加入到Opti-MEM溶液中使其終溶液為90μl,而終濃度分別為50、100、150、200、250、300nmol/L(A液)。取2μlOligofectamineTM轉(zhuǎn)染液加入到8μlOpti-MEM溶液中使其總?cè)芤簽?0μl(B液)。將A、B溶液室溫靜置5~10min,然后將A、B溶液輕柔混勻,室溫孵育15~20min。Opti-MEM溶液洗細胞1次,12孔培養(yǎng)板每孔加400μlOpti-MEM溶液。將100μlA、B混合液再輕柔混勻,加入12孔培養(yǎng)板,每3孔為一個濃度組。37℃、5%CO2孵箱孵育4h后,加入3倍于正常濃度血清,各濃度組分別于轉(zhuǎn)染后48h提取蛋白檢測。
1.5
細胞免疫化學(xué)
取培養(yǎng)10~12d的鼠骨髓基質(zhì)干細胞(以可見細胞團為準),采用SABC法進行免疫細胞化學(xué)檢測。一抗為Nestin(鼠多抗,1∶200),反應(yīng)120min(37℃);二抗為生物素化羊抗小鼠IgG,室溫孵育30min;三抗為鏈親和酶素-生物素-過氧化酶復(fù)合物,室溫孵育10min。DAB染液顯色5~15min,著棕色細胞為染色陽性細胞。同樣的實驗重復(fù)3次,光鏡下觀察拍照。
1.6
Westernblotting檢測Hes5表達
收集幼鼠(14.5天齡SD大鼠)腦組織提取物、培養(yǎng)25d待轉(zhuǎn)染細胞及不同濃度dsRNA轉(zhuǎn)染4h細胞,用0.01mol/LPBS清洗3遍后,按常規(guī)方法提取蛋白,15%SDS分離蛋白質(zhì)。分離后的蛋白按常規(guī)方法轉(zhuǎn)膜、封閉,加入鼠抗Hes5一抗,4℃孵育12h,TTBS洗膜后加入HRP標記的羊抗大鼠抗體檢測Hes5的表達,陽性條帶以化學(xué)發(fā)光法顯示在X膠片上。實驗重復(fù)3次。
1.7
錐蟲藍法檢測培養(yǎng)細胞活力
用0.5%錐蟲藍按常規(guī)方法進行,每培養(yǎng)孔計數(shù)5次,每濃度組重復(fù)3次。Star統(tǒng)計軟件對以上實驗結(jié)果作統(tǒng)計分析。
2
結(jié)果
2.1
骨髓基質(zhì)細胞的體外培養(yǎng)及形成神經(jīng)干細胞
剛接種的細胞種類較多,大部分細胞呈圓形,包括造血干細胞及分化程度不同的其他各系細胞、MSCs等。細胞接種后24h內(nèi)見少數(shù)細胞開始貼壁生長,而大部分仍浮在溶液中的細胞呈圓形和橢圓形,細胞分裂,增殖旺盛,可見伸出小芽的細胞。48~72h后骨髓基質(zhì)細胞大部分貼壁,5d后半量換液去除部分懸浮細胞,可見細胞增殖減慢。10d后培養(yǎng)孔細胞分為2層,下層為梭形細胞鋪滿瓶底,上層為各種形態(tài)的半懸浮細胞,體外培養(yǎng)20~22d左右可見梭形細胞層上由大圓細胞形成的島嶼狀細胞團(圖1)。進行免疫細胞化學(xué)鑒定該細胞團表達Nestin(圖2),免疫印跡檢測表明該細胞團蛋白提取物與胚鼠腦組織提取物在Mr25000處有Hes5的表達,但是與胚鼠腦組織提取物相比,骨髓源性的神經(jīng)干細胞Hes5的表達量稍弱一些(圖3)。
圖1骨髓基質(zhì)細胞體外培養(yǎng)20~22d后形成的島嶼狀細胞團(原放大倍數(shù):×400)
Fig.1Ratbonemarrowstromalcells(BMSCs)formingisland-likecellmassat20to22daysofinvitroculture(Originalmagnification:×400)
圖2島嶼狀細胞團為Nestin陽性細胞(原放大倍數(shù):×400)
Fig.2Island-likecellmassexpressingnestin,aspecificantigenofneuronalstemcells(Originalmagnification:×400)
圖3
Westernblot檢測細胞團有較強的Hes5蛋白表達
Fig.3WesternblotanalysisshowingstrongHes5expression
Lane1:Proteinmarker;Lane2:Substancedistilledfromthebraintissueof14-day-oldrats;Lane3:BMSCproteinextract
2.2
適宜濃度的dsRNA能特異有效地阻斷Hes5的表達。
免疫印跡結(jié)果提示50、100、150nmol/L濃度的dsRNA轉(zhuǎn)染細胞后仍可見Hes5(Mr25000)的表達,50及100nmol/L濃度組Hes5蛋白的表達相似,而150nmol/L濃度稍弱。表明50及100nmol/L濃度的dsRNA不能阻斷內(nèi)源性的Hes5的表達,而150nmol/L濃度可部分抑制Hes5的表達;200、250、300nmol/L轉(zhuǎn)染組則無Hes5蛋白的表達(圖4)。說明200nmol/L及以上濃度的dsRNA能在神經(jīng)干細胞內(nèi)啟動RNAi作用,從而特異有效阻斷Hes5的表達。
圖4不同濃度dsRNA特異性阻斷Hes5表達情況
Fig.4
InhibitionofHes5expressionwithdsRNAofdifferentconcentrations
Lane1:Proteinmarker;Lane2:50nmol/L;Lane3:100nmol/L;Lane4:150nmol/L;Lane5:200nmol/L;Lane6:250nmol/L;Lane7:300nmol/L
2.3
低濃度的dsRNA有利于干細胞細胞存活
轉(zhuǎn)染對照組及50~200nmol/L濃度轉(zhuǎn)染組細胞均能正常生長,但形態(tài)存在明顯差異。50~100nmol/L轉(zhuǎn)染組形態(tài)無顯著變化,轉(zhuǎn)染48h后仍以大圓細胞為主,細胞活力好。150nmol/L組可見部分細胞分化,200nmol/L轉(zhuǎn)染組細胞則大部分分化,可見部分細胞老化及死亡。而250nmol/L高濃度轉(zhuǎn)染組有少部分細胞分化,大部分細胞胞膜不完整,細胞內(nèi)有黑色顆粒及空泡。300nmol/L組細胞于轉(zhuǎn)染后24h大部分凋亡。0.5%錐蟲藍法檢測培養(yǎng)細胞活力及統(tǒng)計結(jié)果表明,各濃度組之間存在顯著差異,濃度與細胞活力呈負相關(guān),相關(guān)系數(shù)為-0.9。這些結(jié)果提示,雖然高濃度dsRNA能更有效地阻斷內(nèi)源性Hes5蛋白的表達,但是高濃度對細胞毒性也不可低估,低濃度的dsR-NA則更有利于細胞存活(圖5)。
圖5不同濃度的dsRNA轉(zhuǎn)染BMSCs48h后細胞存活率
Fig.5SurvivalrateoftheBMSCs48haftertransfectionwithdsRNAofdifferentconcentrations
3
討論
Notch信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路是發(fā)育期間一條重要的通路,研究表明它在大量的組織和器官包括神經(jīng)組織的發(fā)育中發(fā)揮重要作用,調(diào)控著組織類型及形態(tài)的發(fā)生[1][2][3][4][5]。轉(zhuǎn)錄因子Hes5特異性表達在神經(jīng)干細胞中,是Notch信號在細胞內(nèi)重要的下游靶轉(zhuǎn)錄因子。它是否表達在骨髓源性神經(jīng)干細胞發(fā)育過程中,究竟有什么作用?
Timmons等[6]在1998年首次提出“dsRNA介導(dǎo)的RNAi”具有高效性和特異性,隨后的研究發(fā)現(xiàn),在各種生物,如果蠅、擬南芥菜、及小鼠等[7][8]均存在dsRNA介導(dǎo)的RNAi現(xiàn)象,表明RNAi可能是生物普遍存在的轉(zhuǎn)錄后水平上調(diào)節(jié)基因表達的方式。進一步研究發(fā)現(xiàn)體外合成長鏈dsRNA在植物和低等生物中能發(fā)揮特異的RNAi作用,但應(yīng)用于哺乳動物細胞中卻出現(xiàn)明顯的非特異性反應(yīng)[9][10],包括引起細胞的非特異性基因降解,甚至整個細胞蛋白質(zhì)合成停止而導(dǎo)致細胞死亡。2001年5月,Elbashir等[10]首先報道了以體外合成的siRNA轉(zhuǎn)染哺乳動物細胞造成特異性基因抑制的結(jié)果,293細胞鏈和Hela細胞鏈被轉(zhuǎn)染特異性dsRNA后,靶mRNA所表達的蛋白質(zhì)的量比轉(zhuǎn)染前降低了90%,但卻并未發(fā)現(xiàn)非特異性基因抑制及細胞死亡。而后的多項研究進一步證實,體外合成的dsRNA不論在低等生物如線蟲,還是在高等生物如人、鼠的細胞中,均能發(fā)揮其強大、特異的基因抑制功能[11][12],這一點對于體外轉(zhuǎn)導(dǎo)的基因和細胞的內(nèi)生基因同樣有效。并且,體外合成dsRNA觸發(fā)RNAi所需的有效濃度很低。
盡管這樣,Timmons卻發(fā)現(xiàn)RNAi似乎對神經(jīng)干細胞無作用[13],而Paul等[14]則認為高濃度(15μg/ml)的dsRNA在線蟲神經(jīng)元培養(yǎng)過程中,無論是增殖或者分化期都能有效的降解目的基因。說明dsRNA對于神經(jīng)細胞來說是一種很弱的基因沉默工具,且高濃度的dsRNA引入大多哺乳動物中,會引發(fā)強烈的細胞毒性,即引起PKR反應(yīng)導(dǎo)致mRNA大范圍的轉(zhuǎn)錄停止。最近幾個研究團體設(shè)計了一個替代方法,即通過轉(zhuǎn)染質(zhì)粒DNA使神經(jīng)元內(nèi)源性的表達dsRNA,但是收效甚微。考慮主要是由于分裂后的原代培養(yǎng)神經(jīng)元轉(zhuǎn)染效率低,且轉(zhuǎn)染本身對神經(jīng)元就是一個細胞毒性作用所
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