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文檔簡介
試驗一、血涂片的制備和染色
【原理】將一小滴血液勻稱涂在玻片上,呈單層緊密分布,制成薄血片。
用含天青B和伊紅的Romannowsky類染料進行染色。細(xì)胞中的堿性物質(zhì)
如RBC中的血紅蛋白與嗜酸性粒細(xì)胞胞質(zhì)中的嗜酸性顆粒等與酸性染料
伊紅結(jié)合染成紅色;細(xì)胞中的酸性物質(zhì)如淋巴細(xì)胞胞質(zhì)與嗜堿性粒細(xì)胞質(zhì)
中的嗜堿性顆粒等與堿性染料亞甲藍(lán)結(jié)合染成藍(lán)色;中性粒細(xì)胞的中性顆
粒呈等電狀態(tài)與伊紅和美藍(lán)均可結(jié)合,染成淡紫紅色。
【器材】
1.載玻片運用前,必需細(xì)致清洗,并用乙醇或軟布清潔。
2.推片選擇邊緣光滑的載玻片,在兩角分別作斜線標(biāo)記,然后用
坡璃切割刀裁去兩角,制成約15mm寬度的推片。
3.吸耳球。
4.顯微鏡。
5.酒精燈。
6.采血針。
7.注射器和針頭。
【試劑】
1.瑞氏(Wright)染液
(1)I液:包含瑞氏染料LOg、純甲醇(AR級以上)600ml、甘油15ml。
將全部染料放入清潔干燥的乳缽中,先加少量甲醇漸漸地研磨(至少
30min),以使染料充分溶解,再加一些甲醇混勻,然后將溶解的部分倒入
干凈的棕色瓶內(nèi),乳缽內(nèi)剩余的未溶解的染料,再加入少許甲醇細(xì)研,如
此多次研磨,直至染料全部溶解,甲醇用完為止。再加15ml甘油密閉保
存。
(2)II液:磷酸鹽緩沖液(pH6.4~6.8),包含磷酸二氫鉀(KH2POJ
0.3g、磷酸氫二鈉(Na2HPO4)0.2g、蒸鐳水加至1000mL配好后用磷酸
鹽溶液校正pH,塞緊瓶口貯存。如無緩沖液可用簇新蒸僧水代替。
2.吉姆薩染液包含吉姆薩染料0.75g、甘油35ml、甲醇65ml。將
吉姆薩染料、甘油和甲醇放入含玻璃珠的容器內(nèi),每天混勻3次,連續(xù)4
天,最終過濾備用。
3.瑞-吉復(fù)合染液
(1)I液:包含瑞氏染料1g、吉姆薩染料0.3g、甲醇500ml、中性甘
油10ml。將瑞氏染料和吉姆薩染料置干凈研缽中,加少量甲醇,研磨片刻,
再吸出上液*如此連續(xù)幾次,共用甲醇5002。收集于棕色玻璃瓶中,每
天早、晚各搖3min,共5d,以后存放1周即能運用。
⑵II液即磷酸鹽緩沖液(PH6.4?6.8)。包含無水磷酸二氫鉀6.64g、
無水磷酸氫二鈉2.56g,加少量蒸僧水溶解,用磷酸鹽調(diào)整pH,加水至
1000mlo
【操作】
1.采血
(1)靜脈采血法:用EDTAK抗凝1~2h內(nèi)的標(biāo)本,運用玻棒、毛細(xì)
管、注射針頭等在距載玻片一端1cm處加1滴抗凝血,直徑約4mm。
(2)皮膚采血法:選擇第三、四手指,并先采紅細(xì)胞、白細(xì)胞計數(shù),
再采血1滴置干凈玻片上用于血涂片制備。
2.制作涂片左手平執(zhí)載玻片,或放在類似桌子等平坦地方,右手
持推片從后方移動接近血滴,使血液沿推片邊緣綻開,將推片與載玻片呈
30。?45。角,用勻稱速度向前將血液推成厚薄相宜的血涂片,血涂片應(yīng)呈
舌狀,頭、體、尾三部分,且清晰可見。全部血液必需在推片到達(dá)末端前
用完。推大于一片血片。貧血病人推片速度要快。
3.干燥涂片
空氣干燥:快速干燥。
4.標(biāo)記涂片在載玻片的一端用記號筆編號,注明患者姓名或門診/
住院號。
5.染色
(1)瑞氏染色法:待血涂片干透后,用蠟筆在兩端畫線,以防染色
時染液外溢。然后將玻片平置于染色架上,滴加染液(I液)3~5滴,使
其快速蓋滿血涂片,約05~lmin后,滴加等量或稍多的緩沖液(II液),
輕輕搖動玻片或用吸球?qū)?zhǔn)血涂片吹氣,使染液充分混合。5?lOmin后用
流水沖去染液,待干。
(2)吉姆薩染色法:將固定的血涂片置于被pH6.4?6.8磷酸鹽緩沖
液稀釋10~20倍的吉姆薩染液中,浸染10?30min(標(biāo)本較少可用滴染)。
取出用流水沖洗,待干燥后顯微鏡檢查。
(3)瑞一吉復(fù)合染色法:操作步驟同瑞氏染色法,只是染色時將瑞
一吉復(fù)合染液I液和II液替代瑞氏染液的I液和II液。
6.視察結(jié)果將干燥后的血涂片置顯微鏡下視察。用低倍鏡視察血
涂片體、尾交界處的血細(xì)胞。在顯微鏡下,成熟紅細(xì)胞染成粉紅色;血小
板染成紫色;中性粒細(xì)胞胞質(zhì)染成粉紅色,含紫紅色顆粒;嗜酸性粒細(xì)胞
含大的桔黃色顆粒;嗜堿性粒細(xì)胞胞質(zhì)含有大量深紫藍(lán)色顆粒;單核細(xì)胞
胞質(zhì)染成灰藍(lán)色;淋巴細(xì)胞胞質(zhì)染成淡藍(lán)色。視察后顯微鏡擦拭。
【留意事項】
1.瑞氏染液簇新配制的染液偏堿,染色效果較差,經(jīng)在室溫下貯
存肯定時間,美藍(lán)漸漸轉(zhuǎn)變?yōu)樘烨郆后方可運用,這一過程稱染料成熟。
放置時間愈久,天青B愈多,染色效果愈好,但必需蓋嚴(yán)瓶口,以免甲醇
揮發(fā)或氧化成甲酸。甲醇必需用AR(無丙酮)。染液中也可加中性甘油3ml,
防止甲醇揮發(fā),使細(xì)胞染色較清晰°
2.采血
(1)不能采集以下部位的血液:①示指或拇指血液。②感染部位血
液,如甲溝炎。③耳垂部位血液,含單核細(xì)胞太多。
4.干燥涂片血涂片干透后方可固定染色,否則細(xì)胞尚未堅固地吸
附在玻片上,在染色過程中簡單脫落。
5.染色步驟
(1)操作留意事項與操作不當(dāng)?shù)暮蠊姳?-3。
操作留意事項操作不當(dāng)?shù)暮蠊?/p>
加染液應(yīng)適量過少則易蒸發(fā)沉淀,一旦染料沉積在血涂片
上,則不易沖洗,使細(xì)胞深染不易檢查C
沖洗時不能先倒掉染液,應(yīng)染料鎮(zhèn)靜在血涂片上
以流水沖洗
沖洗時間不能過久脫色
沖洗完的血涂片應(yīng)立放于支剩余水分浸泡脫色
架上
(2)染色時間與染液濃度、室溫與細(xì)胞多少有關(guān)。染液淡、室溫低、
細(xì)胞多則染色時間要K;反之,可削減染色時間。必要時可增加染液量或
延長時間。沖洗前,應(yīng)先在低倍鏡下視察有核細(xì)胞是否染色清晰,核質(zhì)是
否分明。應(yīng)當(dāng)在詳細(xì)實踐中摸索合適的時間,特殊是在更換染液時。每批
染色液和緩沖液,均需試染,以便駕馭染色時間和加緩沖液的比例。
6.結(jié)果視察低倍鏡下視察血涂片應(yīng)厚薄相宜,細(xì)胞不重疊,頭尾
與兩側(cè)有肯定的空隙,一些體積大的特殊細(xì)胞常在血涂片的尾部出現(xiàn)。如
有可能,干燥后的血涂片先用中性樹膠封片后再視察,不僅能長期保存血
涂片,而且視察效果更佳。
染色效可能緣由訂正措施
果
太藍(lán)涂片太厚、沖洗時間太短、中性水在含1%硼酸的95%乙醇溶
pH太高、染色時間太長、稀釋染液沖洗2次,用中性水沖洗,
液重復(fù)運用、貯存染液暴露于陽光待干鏡檢
太紅沖洗時間太長、中性水pH太低、規(guī)范操作。簇新配置中性水。
貯存染液質(zhì)量不佳、涂片干燥前加保證染液質(zhì)量不佳
封片
太淡染色時間太短、沖洗時間太長復(fù)染。應(yīng)先加緩沖液,后加
染液,或加染液與緩沖液的
混合液,不行先加染液
染料沉染料沉淀、染液未過濾、涂片太臟用甲醇沖洗2次,并馬上用
積水沖掉甲醇,待干后復(fù)染
藍(lán)色背固定不當(dāng)、涂片未固定貯存過久、留意涂片的固定。運用EDTA
景運用肝素抗凝劑抗凝靜脈血
試驗二、白細(xì)胞計數(shù)與分類計數(shù)
原理:用白細(xì)胞稀釋液將血液稀釋肯定的倍數(shù),同時破壞溶解紅細(xì)胞。將
稀釋的血液注入血紅細(xì)胞計數(shù)板,在顯微鏡下計數(shù)肯定體積內(nèi)的白細(xì)胞
數(shù),經(jīng)換算即可求出每升血液中的白細(xì)胞數(shù)量。
器材:顯微鏡、改良牛鮑計數(shù)板、試管、吸管、微量吸管、滴棒。
試劑:白細(xì)胞稀釋液
操作:
1s加稀釋液用吸管吸取白細(xì)胞稀釋液0.38ml于小試管中。
2、吸取血液用微量吸管吸取簇新全血或末稍血203,擦去管尖外部余
血。將吸管插入小試管中白細(xì)胞稀釋液的底部,輕輕放出血液,并吸取上
層白細(xì)胞稀釋液清洗吸管2~3次。
3、混勻?qū)⒃嚬苤醒号c稀釋液混勻,待細(xì)胞懸液完全變?yōu)樽睾稚?/p>
4、充池再次將小試管中的細(xì)胞懸液混勻。用滴棒蘸取細(xì)胞懸液1滴,充
入改良Neubauer計數(shù)板的計數(shù)池中,室溫靜置2?3min,待白細(xì)胞完全
下沉。充兩個池雙份計數(shù)取平均值。
5、計數(shù)在低倍鏡下計數(shù)四角4個大方格內(nèi)的白細(xì)胞總數(shù)。
6、計算:白細(xì)胞=4X10X20X106=20X107L
留意事項:
1s稀釋用吸管、微量吸血管、血紅細(xì)胞計數(shù)板均為計量工具,運用前需
經(jīng)過嚴(yán)格的校正,否則將干脆影響計數(shù)結(jié)果的精確。
2、運用標(biāo)本可為由靜脈搏穿刺實行的簇新全血,也可為靜脈末梢血。采
集末梢血時,應(yīng)留意采血部位不得有凍瘡、水腫、發(fā)結(jié)、炎癥等,以免標(biāo)
本失去代表性;同時也應(yīng)留意不能過度擠壓,以免組織液混入引起血液凝
因或造成計數(shù)結(jié)果不精確。
3、在充池時,如充液不足、液體外溢、斷續(xù)充液,或產(chǎn)生氣泡、充液后
移動蓋玻片等,均會使細(xì)胞分布不勻稱,造成計數(shù)結(jié)果不精確。
4、計數(shù)池內(nèi)的細(xì)胞分布應(yīng)勻稱,一般狀況下各大方格間的細(xì)胞數(shù)相差不
超過10%,若相差太大,應(yīng)重新充池。
5、計數(shù)大小方格內(nèi)的壓線細(xì)胞時,遵循數(shù)上不數(shù)下、數(shù)左不數(shù)右的原則。
6、白細(xì)胞數(shù)量過多時,可采納加人稀釋倍數(shù)的方法,留意區(qū)分雜質(zhì)和白
細(xì)胞。
分類計數(shù):
原理:將血液制成細(xì)胞分布勻稱的血涂片,用瑞氏染液染色,依據(jù)各類細(xì)
胞的形態(tài)特點和顏色差異將白細(xì)胞進行分類并計數(shù)。通常分類100個白細(xì)
胞,計算得出各種白細(xì)胞所占的百分率。
器材:顯微鏡、分類計數(shù)器、香柏油、拭鏡紙、清潔液。
試劑:瑞氏染液、磷酸鹽緩沖液
操作:
1、染色將血涂片用瑞氏染液染色,沖洗干凈,自然干燥后待用。
2、低倍鏡視察低倍鏡下視察白細(xì)胞分布和染色狀況。
3、油鏡視察選擇血涂片體尾交界處細(xì)胞分布勻稱、著色良好的區(qū)域,按
肯定的方向依次對所見的每1個白細(xì)胞進行分類,并用白細(xì)胞分類計數(shù)器
作好記錄,共計數(shù)100個白細(xì)胞。
4、計算求出各類細(xì)胞所占的百分率
留意事項:
1、由于各種白細(xì)胞體積大小不等,體積較小的淋巴細(xì)胞在血涂片的頭、
體部較多,而尾部和兩側(cè)以中性粒細(xì)胞和單核細(xì)胞較多,因此分類最佳區(qū)
域為體、尾交界處。
2、分類時要有秩序地、沒肯定方向連續(xù)地進行,既不重復(fù)亦不遺漏,避
開主觀選擇視野。
3、分類計數(shù)結(jié)果的記錄也可采納手工畫“正”或"++++”的方法。
試驗三、紅細(xì)胞計數(shù)
原理:稀釋液將血液稀釋肯定倍數(shù),充入計數(shù)池后,在顯微鏡下計數(shù)肯定
體積內(nèi)的紅細(xì)胞數(shù)量,經(jīng)換算求出每升血液中的紅細(xì)胞數(shù)量。
器材:微鏡、改良牛鮑記板、試管、微量吸管、玻璃棒。
試劑:細(xì)胞稀釋液
操作:
1、加稀釋液取小試管1支,加紅細(xì)胞稀釋液2ml。
2、加血用清潔干燥微量吸管采集末稍血或抗凝血10ul擦去管外余血,
輕輕加至紅細(xì)胞稀釋液底部,再輕吸上清液清洗吸管2?3次,馬上混勻。
3、充池混勻后用微量吸管或玻璃棒將紅細(xì)胞懸液充入計數(shù)池,室溫下平
放3?5min,待細(xì)胞下沉后于顯微鏡下計數(shù)。
4、計數(shù)用高倍鏡依次計數(shù)中心大方格內(nèi)4角和正中5個中方格內(nèi)的紅細(xì)
胞數(shù)。
5、計算
紅細(xì)胞/L=Nx5x10xi0限200二NxlO】。二100xio12
N:表示5個中方格內(nèi)數(shù)得的紅細(xì)數(shù)。
x5:將五個中方格紅細(xì)胞數(shù)換算成1個大方格紅細(xì)胞數(shù)。
xlO:將1個大方格紅細(xì)胞數(shù)換13血液內(nèi)紅細(xì)胞數(shù)。
xlO6:1L=106UI
200:為血液的稀釋倍數(shù)。
留意事項:白細(xì)胞
試驗四、網(wǎng)織紅細(xì)胞計數(shù)
原理:織紅細(xì)胞胞質(zhì)內(nèi)殘存的少量核蛋白體和核糖核酸等嗜堿性物質(zhì),在
活體染色時可被煌焦油藍(lán)染成藍(lán)色網(wǎng)狀或顆粒狀,可與完全成熟的紅細(xì)胞
區(qū)分。
器材:微鏡、香柏油、拭鏡紙、清潔液、試管、玻片
試劑:10g/l煌焦油藍(lán)水溶液,標(biāo)本簇新全血。
操作:
1、加染液于小試管中加入10g/L煌焦油藍(lán)生理鹽水溶液2滴,再加入簇
新全血2滴,馬上混勻,置室溫下15?20min。室溫不行過低37度。
2、制備涂片取1小滴制成薄血涂片,自然干燥。
3、視察在低倍鏡下選擇紅細(xì)胞分布勻稱的部位進行視察。
4、計數(shù)在油鏡下計數(shù)至少1000個紅細(xì)胞中的網(wǎng)織紅細(xì)胞數(shù)。
5、計算
網(wǎng)織紅細(xì)胞分?jǐn)?shù)二M/1000
網(wǎng)織紅細(xì)胞肯定值(網(wǎng)織紅細(xì)胞/L)=紅細(xì)胞/Lx網(wǎng)織紅細(xì)胞分?jǐn)?shù)
試驗五、紅細(xì)胞沉降率
原理:肯定量的枸椽酸鈉抗凝全血置于特制血沉管中,直立于特制血沉架
上lh后讀取紅細(xì)胞下沉后血漿的高度。
器材:魏氏血沉管、血沉架、吸管、試管。
試劑:09mmol/L枸椽酸鈉溶液,簇新全血。
操作:
1、加抗凝劑吸取濃度為109mmol/L的枸檬酸鈉0.4ml于試管中。
2、采靜脈血取靜脈血1.6ml,加入含抗凝劑的試管中,混勻。
3、裝血沉管用血沉管吸入混勻全血至刻度“0”處,拭去管外殘留余
血O
4、立血沉管將血沉管直立于血沉架上。
留意事項:
1、運用分析純枸椽酸鈉抗凝劑,配制時濃度應(yīng)精確,配成后液體不渾
濁、無沉淀,保存期為2周。
2、嚴(yán)格限制采血量,使抗凝劑與血液比例為1:4O
3、血沉管內(nèi)徑要標(biāo)準(zhǔn),放置要垂直,不得傾斜。
4、胞在單位時間內(nèi)下沉的速度與血漿蛋白的量與質(zhì),血漿中脂類的量和
質(zhì),紅細(xì)胞的大小與數(shù)量,是否成串錢相聚以與血沉管的內(nèi)徑、清潔度、
放置位置是否垂直,室溫凹凸等因素都有關(guān)系。
5、采集時應(yīng)空腹。
6、血沉的標(biāo)本要在采集后3h內(nèi)測定,并充分混勻。
7、溫過低、過高和貧血時,對結(jié)果有影響。為此,血沉應(yīng)盡量放在18~
25C。室溫下測定。室溫過高時血沉加快,可以按溫度系數(shù)校正。室溫過低
時血沉減慢,無法校正。
試驗六、血小板計數(shù)
原理:液經(jīng)稀釋液按肯定比例稀釋和破壞紅細(xì)胞后,充入血細(xì)胞計數(shù)板內(nèi)
在顯微鏡下計數(shù)肯定范圍內(nèi)的血小板數(shù)量,經(jīng)過換算求出每升血液中血小
板的數(shù)量。
器材微鏡,血細(xì)胞計數(shù)板,采血針,血紅蛋白吸管,試管。
試劑10g/L草酸鐵稀釋液。
操作:
1、吸取稀釋液精確吸取10g/L草酸核稀釋液0.38ml,置于清潔小試管
中。
2、采血常規(guī)消毒無名指,穿刺后,讓血液自然流出,精確采血20ul.置
于含有草酸鏤的稀釋液中,馬上充分混勻。
3、稀釋靜置待完全溶血后再混勻lmin,置室溫lOmin。
4、充液靜置取混勻的血小板懸液1滴充入血細(xì)胞計數(shù)板內(nèi),靜置10~
15min,使血小板充分下沉??諝飧稍锏募竟?jié)應(yīng)將血細(xì)胞計數(shù)板置濕盒內(nèi)。
5、計數(shù)用高倍鏡計數(shù)血細(xì)胞計數(shù)板中心大方格內(nèi)的四角和中心共5個中
方格內(nèi)血小板數(shù)量。
6、計算每升血小板數(shù)二5個中方格內(nèi)血小板數(shù)xlO'/L
留意事項
1、草酸鐵稀釋液要清潔,無細(xì)菌、塵埃等污染。存放時間較長后應(yīng)過濾
后再運用。
2、毛細(xì)血管采血時,針刺應(yīng)達(dá)3mm深,使血液流暢。拭去第1滴血后馬
上采血,以防血小板聚集和破壞。假如同時做白細(xì)胞和血小板計數(shù)時,應(yīng)
先采血做血小板計數(shù)。
3、血液加入血小板稀釋液內(nèi)要充分混勻,但不行過度振蕩,以免導(dǎo)致血
小板破壞和聚集。
4、血小板懸液充入血細(xì)胞計數(shù)板內(nèi)須要靜置10~15min,使血小板完全
下沉后再計數(shù)。但應(yīng)留意保持濕度,避開水分蒸發(fā)而影響計數(shù)結(jié)果。
5、計數(shù)時間線不行太強,留意微有折光性的血小板與塵埃等的鑒別,附
著在血紅細(xì)胞旁的血小板也要留意,不要漏數(shù)。
6、應(yīng)在lh內(nèi)計數(shù)完畢,否則結(jié)果偏低。
7、所用計量器材必需標(biāo)準(zhǔn)化。
8、檢查前,患者應(yīng)避開服用含有阿司匹林與其他抗血小板藥物。
試驗七、尿葡萄糖定性檢查
原理:葡萄糖或其他還原性糖的醛基在熱堿性溶液中,能將班氏試劑的藍(lán)
色硫酸銅還原為黃色的氫氧化亞銅,進而形成紅色氧化亞銅沉淀。
器材:試管架、中試管、滴管、試管夾、酒精燈。
試劑:
1s甲液枸椽酸鈉,無水碳酸鈉,蒸鐳水加熱助溶。
2、乙液硫酸銅,蒸儲水加熱助溶。冷卻后,將乙液緩慢加入甲液中,不
斷混勻,冷卻至室溫后補充蒸鐳水至1000ml。如溶液不透亮則須要過濾,
煮沸后出現(xiàn)沉淀或變色則不能應(yīng)用。
操作:
1、鑒定班氏試劑質(zhì)量取中號試管1支,加入班氏試劑2.0ml,搖動試管
緩緩加熱至沸騰,視察試劑有無顏色與性狀改變,若試劑仍為透亮藍(lán)色,
可進行以下試驗。
2、加尿液向班氏試劑中加離心后的尿液02ml,混勻。
3、加熱煮沸接著煮沸l(wèi)~2min,或置沸水浴5min,自然冷卻。
4、推斷結(jié)果推斷結(jié)果見表
糖定性試驗結(jié)果推斷
反應(yīng)現(xiàn)象報告方式葡萄糖含量(mmol/L)
藍(lán)色不變一<5.6
藍(lán)色中略帶綠色,但無沉淀±5.6?11.2
綠色伴少許黃綠色沉淀+<28
較多黃綠色沉淀,以黃為++28~56
土黃色渾濁,有大量沉淀+++57~112
大量棕紅色或磚紅色沉淀++++>112
留意事項:
1、試劑與尿液的比例為10:lo
2、煮混時應(yīng)時常搖動試管以防爆沸噴出,出可在沸水浴中試驗。
3、檢驗糖尿病患者尿液中葡萄糖,應(yīng)空腹或餐后2h留取尿標(biāo)本0
4、尿液中有大量尿酸鹽存在時,煮沸后也呈渾濁并帶綠色,但久置后并
不變黃色而呈灰藍(lán)色,故必需于冷卻后視察結(jié)果。尿中含大量鏤鹽時可抑
制氧化亞銅沉淀的生成,應(yīng)加堿煮沸除去。蛋白含量較高時也影響銅鹽的
沉淀,可用加熱乙酸法除去。
5、一些非糖還原性物質(zhì),如水合氯醛、氨基比林、PAS、阿匹林、青霉素、
鏈霉素、VitC、異煙腫等,當(dāng)基在尿中含量過高時亦呈陽性反應(yīng),應(yīng)停藥
3d后再進行檢查。在靜脈輸注大劑量VitC者5d內(nèi)不宜做尿糖定性,或定
性時先將尿液煮沸使之分解破壞。
試驗八尿沉渣鏡檢
原理:采納顯微鏡視察的方法,依據(jù)尿液細(xì)胞、管型等有形成分的形態(tài)特
征,識別并記錄其在顯微鏡肯定視野內(nèi)的數(shù)量。
器材:載玻片、離心機、刻度離心管、蓋玻片、滴管、一般顯微鏡、定量
尿沉渣分析板。
操作:
1、未離心干脆涂片法
(1)混勻:充分混勻尿液。
(2)制備涂片:取混勻的尿液1滴于載玻上,加蓋玻片,留意避開產(chǎn)生氣
泡。
(3)視察計數(shù):①先用低倍視察全片細(xì)胞、管型等成分的分布狀況,然后
用高倍鏡確認(rèn)。留意運用暗視野視察尿液有形成分,特殊是透亮管型。②
管型在低倍鏡下視察,至少計數(shù)20個視野;細(xì)胞在高倍鏡下視察至少計
數(shù)10個視野,取其三均值報告;尿結(jié)晶和鹽類數(shù)量以每一高倍視野+、2
+、3+、4+報告。計數(shù)時要留意細(xì)胞的完整性,還要留意有無其他異樣
巨大細(xì)胞、寄生蟲蟲卵、滴蟲、細(xì)菌、粘液絲等,男性尿液標(biāo)本還要留意
有無精子與卵磷脂小體。
2、離心沉淀涂片法
(1)離心尿液:透用于尿外觀非明顯渾濁的尿標(biāo)本,是尿沉渣檢查標(biāo)準(zhǔn)化
推行的方法。取尿液10ml離心5min,要求相對離心力為400go1500r/min
離心5min
(2)提取尿沉渣:手持離心管傾斜45。~90。,用滴管吸去上層尿液,保留
下層0.2ml尿沉渣。
(3)涂片:輕輕混勻尿沉渣后,取1滴置載玻片上,用18mmxl8mm或
22mmx22mm的蓋玻片覆蓋后顯微鏡檢查。
(4)視察計數(shù):與未離心尿干脆涂片法相同。
3、定量尿沉渣分析法定量尿沉渣分析板由1塊硬質(zhì)塑料板制成,每塊板
內(nèi)分為10個統(tǒng)一深度的計數(shù)池,每1個計數(shù)池內(nèi)的計數(shù)區(qū)為l.Oul計數(shù)區(qū)
分為10個大方格,每個大方格又分為9個小方格。
(1)未離心法:干脆取充分混勻的尿液1滴充入定量尿沉渣分析計數(shù)池內(nèi),
在低倍鏡下計數(shù)10個大方格內(nèi)管型總數(shù),在高倍鏡下計數(shù)10個大方格內(nèi)
細(xì)胞總數(shù),此即每微升尿液某種細(xì)胞或管型的數(shù)量。
(2)離心法:尿液標(biāo)本處理同離心尿沉淀涂片法,然后充池計數(shù),方法同
上。
4、報告結(jié)果
(1)涂片法:細(xì)胞以最低數(shù)?最高數(shù)/HP、管型以最低數(shù)~最高數(shù)/低倍鏡
視野報告。結(jié)晶以所占視野面報告,無結(jié)晶為(一);結(jié)晶占1/4視野:+);
結(jié)晶占1/2視野為(++);結(jié)晶占3/4視野為(+++);結(jié)晶滿視野為(++++)。
假如細(xì)胞、管理的數(shù)量過多難以計算,也可按結(jié)晶的報告方式報告結(jié)果。
(2)定量尿沉渣分析板法:以每微升某種細(xì)胞或管型數(shù)報告。
試驗九尿沉渣定量檢查
(一小時尿沉渣計數(shù)法)
操作:
1.標(biāo)未收集:患者先排尿棄去,精確收集3h尿液于干燥容器內(nèi)送檢
(標(biāo)本留取時間5:30?8:30)。
2,精確測量3h尿量,充分混合。取混勻尿液10ml,置刻度離心管中,
1500r/min離心5min,用吸管吸奔J_層尿液9ml,留下1ml,充分混勻。
吸取混勻尿液1滴,注于血細(xì)胞計數(shù)板內(nèi)。細(xì)胞共數(shù)10個大方格,管型
共數(shù)20個大方格。最終計算出紅細(xì)胞/h、白細(xì)胞/h、管型/h。
留意事項:
1.尿液應(yīng)簇新,PH應(yīng)在6以下。
2.尿液比重最好在1.026以上。
3.如尿液中含多量磷酸鹽時,應(yīng)加少量稀醋酸液(切勿加多),使其
溶解;含大量尿酸鹽時,應(yīng)加溫使其溶解。
4,亦可采納尿沉渣定量分析板或尿沉渣自動分析儀進行尿沉渣定量
檢查,詳見有關(guān)資料。
試驗十本-周氏蛋白定性檢查
試劑:
1.200g/L磺基水楊酸溶液;
2.2mol/L醋酸鹽緩沖溶液(pH4.9±0.1)c
操作:
1.先蔣尿液用磺基水楊酸法作蛋白定性檢查,如呈陰性反應(yīng),則可認(rèn)
為尿液標(biāo)本中本-周氏蛋白陰性。
2,取透亮尿液4ml于試管中,再加入醋酸鹽緩沖液1ml,混勻后,放
置56C。水浴中15分鐘。如有渾濁或出現(xiàn)沉淀,再將試管放入沸水中,煮
沸3分鐘,視察試管中渾濁或沉淀的改變,如渾濁變清、渾濁減弱或沉淀
削減,均提示本-周氏蛋白陽性。若煮沸后,渾濁增加或沉淀增多,表明
此尿液中還有其它蛋白質(zhì),此時應(yīng)將試管從沸水中取出,馬上過濾。如濾
液起先透亮,溫度下降后渾濁,再煮沸時又透亮,提示本-周氏蛋白為陽
性。
留意事項:
1.過多的本-周氏蛋白,在90C。以上不易完全溶解,故需與比照管
比較,也可將尿液稀釋后再測。
2.煮沸過濾除去尿中白、球蛋白時,動作要快速,并需保持高溫,否
則本-周氏蛋白也會濾去。
試驗十一尿含鐵血黃素定性試驗
試劑:
1.20g/L亞鐵富化鉀水溶液(用時簇新配制);
2.3%鹽酸。
操作:
1.取混勻的簇新尿液15ml,以2000r7min離心5min,傾去上清液。
2,在沉渣中加入簇新配制的20g/L亞鐵氟化鉀水溶液與3%鹽酸液各
2ml,充分混勻,室溫靜置lOmin。
3.再離心沉淀,取沉淀物涂片,加蓋玻片后用高倍鏡(必要時用油鏡)
檢杳
.一i如見有分散或成堆藍(lán)色閃光顆粒(直徑l~3um)即為陽性,如在
細(xì)胞內(nèi)則更為可信。
留意事項:
1.全部試管、玻片、試劑均應(yīng)防止鐵劑污染,以免出現(xiàn)假陽性。
2.一般應(yīng)做陰性比照,如亞鐵氟化鉀與鹽酸混和后即顯深藍(lán)色,表示
試劑已污染高鐵,不宜再用。
試驗十一尿乳糜定性檢查
【試劑】
1.乙酸(AR);
2.蘇丹III醋酸乙醇染色液或猩紅染色液。
【操作】
1.取尿5-10ml,加乙酸2-3ml,混合振搖后,使脂肪溶于乙酸。
靜置數(shù)分鐘后,2000r/min離心5mino
2,吸取乙酸與尿液的界面層涂片,加蘇丹III醋酸乙醇染色液或猩紅染
色液1滴。
3.鏡檢視察是否有紅色脂肪小滴。
[留章事項]
1.尿液中加少量飽和氫氧化鈉,再加乙酸,有助于澄清。
2.將分別的乙配層隔水蒸干,若留有油狀沉淀,也可加蘇丹川,鏡檢
證明有無脂肪小滴。
試驗十二尿膽色素原定性試驗
【試劑】
1,對二甲氨基苯甲醛試劑;
2.飽和醋酸鈉溶液;
3.氯仿;
4.正丁醇。
【操作】__
1.在試管中,加入尿標(biāo)本2ml與對二甲氨基苯甲醛試劑2ml,混合。
2,馬上加飽和醋酸鈉溶液4ml,混合,加氯仿3ml,振搖混合后,上
層水溶液呈紅色者為陽性反應(yīng)。
3.陽性結(jié)果應(yīng)用下法證明:如尿膽原含量多,用一次氯仿不能完全抽
提尿膽原,應(yīng)多次用氯仿抽提,直至氯仿層呈淡粉紅色或無色為止,再視
察上層水溶液色澤。如上層水溶液為紅色時,再加正丁醇4ml插提,如水
溶液仍呈紅色則證明尿中膽色素元為陽性。
【留意事項】
1.醋酸鈉溶液必需為飽和液。
2.當(dāng)尿膽色素原濃度太高時,應(yīng)將尿標(biāo)本稀釋25~100倍。
3.尿液必需簇新,不能久置。
試驗十三尿苯丙酮酸定性試驗
(三氯化鐵法)
【試劑】
1.lOOg/L三氯化鐵液;
2.磷酸鹽沉淀劑。
【操作】
L尿液4ml加磷酸鹽沉淀劑1ml,混勻,靜置3min,如出現(xiàn)沉淀,
可用濾紙過濾或離心除去。
2,濾液中加入濃鹽酸2~3滴和100g/L三氯化鐵溶液2~3滴,每加
1滴馬上視察顏色改變。以尿液顯藍(lán)綠色并持續(xù)2?4min,為陽性。
【留意事項】
1.尿中若含酚類藥物(如水楊酸制劑)與氯丙嗪,也可與氯化鐵結(jié)合
顯色,試驗前應(yīng)停用此類藥物。膽紅素也可造成假陽性。
2.小兒誕生后6周內(nèi)不易查出。故于誕生6周后檢查為宜。
3.大多數(shù)苯丙酮尿癥患者的尿液可出現(xiàn)陽性。但約1/4-1/2病例可
能會漏檢
4.亦可采納2.4-二硝基苯月井法。
試驗十四腦脊液顯微鏡檢查
器材:顯微鏡、改良牛鮑計數(shù)板、微量吸管、刻度吸管、小試管。
試劑:生理鹽水或紅細(xì)胞稀釋液,1%冰乙酸,白細(xì)胞稀釋液,瑞氏染液或
瑞■吉染液。
操作:
(1)充池:干脆用微量吸管吸取混勻的腦脊液,充入血細(xì)胞計數(shù)板的上下
2個計數(shù)池。
⑵計數(shù):靜置2?2min后,低倍鏡下計數(shù)2個計數(shù)池內(nèi)四角和中心大方
格共10個大方格內(nèi)的細(xì)胞數(shù)。
(3)計算:10個大方格內(nèi)的細(xì)胞總數(shù)即為每微升腦脊液細(xì)胞總數(shù),再換算
成每升腦脊液細(xì)胞總數(shù)。
1細(xì)胞總數(shù):
(1)澄'蓍腦普液:混勻后用滴管干脆滴入計數(shù)池,計數(shù)10個大方格
內(nèi)紅、白細(xì)胞數(shù),其總和即為每ul的細(xì)胞數(shù),(如細(xì)胞較多,可計數(shù)一大
格內(nèi)的細(xì)胞數(shù)xlO)。
(2)渾濁或帶血腦脊液:用血紅蛋白吸管吸取混勻的腦脊液20ul,
加入含紅細(xì)胞稀釋液0.38ml的小試管內(nèi),混勻后滴入計數(shù)池內(nèi),用低倍鏡
計數(shù)4個大方格中的細(xì)胞總數(shù),再乘以50即為每ul腦脊液的細(xì)胞總數(shù)。
2.白細(xì)胞數(shù):
(1)非血性標(biāo)本:小試管內(nèi)放入冰乙酸1?2滴,轉(zhuǎn)動試管,使內(nèi)壁
沾有冰乙酸后傾去之,然后滴加混勻的腦脊液3?4滴,數(shù)分鐘后,混勻
充入計數(shù)池,按細(xì)胞總數(shù)操作中的紅、白細(xì)胞計數(shù)法計數(shù)。
(2)血性標(biāo)本:將混勻的腦脊液用1%冰乙酸溶液稀釋后,按細(xì)胞總
數(shù)操作中的紅、白細(xì)胞計數(shù)法計數(shù),結(jié)果x稀釋倍數(shù)。
3.細(xì)胞分類:
(1)干脆分類法:白細(xì)胞計數(shù)后,將低倍鏡換成高倍鏡,干脆在高
倍鏡下依據(jù)細(xì)胞核的形態(tài)分別計數(shù)單個核細(xì)胞(包括淋巴細(xì)胞與單核細(xì)
胞)和多核細(xì)胞,應(yīng)數(shù)100個白細(xì)胞,并以百分率表示。若白細(xì)胞少于100
個,應(yīng)干脆寫出單核、多核細(xì)胞的詳細(xì)數(shù)字。
(2)染色分類法:如干脆分類不易區(qū)分細(xì)胞時,可將腦脊液離心沉
淀,取沉淀物2滴,加正常血清1滴,推片制成勻稱薄膜,置室溫或37C。
溫箱內(nèi)待干,進行瑞氏染色后用油鏡分類。
如見有不能分類的細(xì)胞,應(yīng)另行描述報告。
留意事項:
1、干脆白細(xì)胞計數(shù)時,也可用微量吸管吸取冰乙酸后盡可能全部吹出,
僅使吸管內(nèi)壁粘附少許冰乙酸,再吸以少量混勻的腦脊液于吸管中,數(shù)分
鐘后吸管內(nèi)紅細(xì)胞溶解,然后再充池計數(shù)。
2、細(xì)胞計數(shù)時,如發(fā)覺較多細(xì)胞有皺縮或腫脹等異樣現(xiàn)象,應(yīng)照實報告,
以幫助臨床醫(yī)學(xué)鑒別是陳舊性出血或簇新出血。
3、血性腦脊液中的白細(xì)胞必需校正后才有價值,校正方法是分別計數(shù)血
液紅細(xì)胞、白細(xì)胞數(shù)和腦脊液細(xì)胞總數(shù)、白細(xì)胞數(shù),扣除因出血而帶進腦
脊液的白細(xì)胞數(shù)。
腦脊液紅細(xì)胞數(shù)x血液白細(xì)胞數(shù)
白細(xì)胞校正數(shù)腦脊液白細(xì)胞未校正數(shù)一血液內(nèi)紅細(xì)胞數(shù)
4、細(xì)胞涂片時,為了使細(xì)胞簡單粘在玻片上,可取沉淀的細(xì)胞懸液2滴,
加血清1滴,混勻后涂片。
5、涂片染色分類時,如見內(nèi)皮細(xì)胞或異樣細(xì)胞,則另行描述報告,必要
時用巴氏或HE染色查找腫瘤細(xì)胞。
6、試驗結(jié)果后,血細(xì)胞計數(shù)板用075%乙醇浸泡消毒60min,忌用酚浸泡,
以免損壞計數(shù)板。
7、細(xì)胞計數(shù)時,應(yīng)留意新型隱球菌與白細(xì)胞的區(qū)分。
試驗十五腦脊液蛋白質(zhì)定性檢查
原理:腦脊液中球蛋白與苯酚結(jié)合,形成不溶性蛋白鹽而產(chǎn)生白色渾濁或
沉淀。
器材:小試管、刻度吸管、尖滴管。
試劑:5%飽和苯酚溶液
操作:
1、加試劑取試劑2ml于小試管中。
2、加標(biāo)本用尖滴管垂直滴加腦脊液標(biāo)本1~2滴。
3、視察結(jié)果在黑暗背景下馬上用肉眼視察結(jié)果。
4、推斷結(jié)果
(1)清晰透亮,不呈現(xiàn)云霧狀為(一)。
(2)呈微白霧狀,對光不易望見,黑色背景下才能見到(±)o
(3)灰白色云霧狀為(+3
(4)白色渾濁或白色薄云狀沉淀為(++)。
(5)白色絮狀沉淀或白色濃云塊狀為(+++)。
(6)馬上形成白色凝塊為(++++)。
留意事項:
1、當(dāng)室溫在10C。以下時,應(yīng)將試劑保存在37C。溫箱中,否則飽和度降低,
可致假陽性。
2、試管內(nèi)徑以小為佳,一般為(13±l)mm,加入試劑后馬上視察結(jié)果。
3、標(biāo)本中如紅細(xì)胞過多,應(yīng)離心沉淀取上清液檢測。
試驗十六漿膜腔積液顯微鏡檢查
器材:顯微鏡、改良牛鮑計數(shù)板、微量吸管、小試管。
試劑:生理鹽水或紅細(xì)胞稀釋液,冰乙酸,白細(xì)胞稀釋液,瑞氏染液或瑞
-吉染液。
操作:
(一)有核細(xì)胞計數(shù)
1、干脆計數(shù)法
(1法除紅細(xì)胞:在小試管內(nèi)放入冰乙酸1~2滴,轉(zhuǎn)動試管,使內(nèi)壁粘附
少許冰乙酸后傾去,滴加混勻漿膜腔積液3~4滴,混勻,放置數(shù)分鐘,
破壞紅細(xì)胞。
(2)充池:用微量吸管取混勻破壞紅細(xì)胞后的漿膜腔積液充入血細(xì)胞計數(shù)
板的2個計數(shù)池內(nèi)。
(3)計數(shù):靜置2~3min后,低倍鏡計數(shù)2個計數(shù)池內(nèi)四周和中心大方格
共10個大方格內(nèi)的有核細(xì)胞數(shù)。
(4)計算:10個大方格有核細(xì)胞總數(shù)即每微升漿膜腔積液的有核細(xì)胞總
數(shù),再換算成每升漿膜腔積液的有核細(xì)胞數(shù)。
2、稀釋計數(shù)法
(1)稀釋破壞紅細(xì)胞:依據(jù)標(biāo)本內(nèi)有核細(xì)胞多少,用白細(xì)胞稀釋液對標(biāo)本
進行肯定倍數(shù)稀釋,混勻,放置數(shù)分鐘,破壞紅細(xì)胞。
(2)充池:用微量吸管取混勻稀釋后的漿膜腔液充入1個計數(shù)池。
(3)計數(shù):靜置2~3min后,低倍鏡計數(shù)1個計數(shù)池內(nèi)的四角和中心大方
格共5個大方格內(nèi)的有核細(xì)胞總數(shù)。
(4)計算:依據(jù)5個大方格內(nèi)的有核細(xì)胞總數(shù)稀釋倍數(shù),計算每升漿膜腔
積液的有核細(xì)胞數(shù)。
(二)有核細(xì)胞分類
1s干脆分類法有核細(xì)胞計數(shù)后,將低倍鏡轉(zhuǎn)為高倍鏡,干脆在高倍鏡下
依據(jù)細(xì)胞形態(tài)和細(xì)胞核形態(tài)進行分類,共分類計數(shù)100個有核細(xì)胞,分別
計數(shù)單個核細(xì)胞(包括淋巴細(xì)胞、單核細(xì)胞與間皮細(xì)胞)和多個核細(xì)胞(粒
細(xì)胞)的百分率。方法基本與腦脊液同,漏出液中有核細(xì)胞數(shù)量常在100X
106/L以下;滲出液中有核細(xì)胞數(shù)量較多,常在500X107L以上。
2、涂片染色分類法在抽出穿刺液后,馬上以1000r/min離心5min,取
沉淀物制成勻稱的薄片,置于室溫下或37C。恒溫箱內(nèi)盡快干燥,瑞氏或瑞
-吉染色后油鏡分類計數(shù)100個有核細(xì)胞。一般標(biāo)本中可見到淋巴細(xì)胞、
嗜中性粒細(xì)胞、嗜酸性粒細(xì)胞、間皮細(xì)胞等。
留意事項:
1、有核細(xì)胞計數(shù)應(yīng)包括間皮細(xì)胞。
2、必要時可采納細(xì)胞玻片離心沉淀儀收集細(xì)胞,以提高白細(xì)胞分類計數(shù)
的精確性。
3、有核細(xì)胞分類計數(shù)誤差大,尤其是陳舊性、細(xì)胞變形的標(biāo)本,故舉薦
采納涂片染色分類計數(shù)。
4、染色分類計數(shù)過程中,若發(fā)覺間皮細(xì)胞和不能分類的異樣細(xì)胞應(yīng)中外
描述或作HE、巴氏染色查找腫瘤細(xì)胞。
試驗十七漿膜腔積液粘蛋白定性試驗
原理:漿膜腔上皮細(xì)胞在炎癥刺激下分泌粘蛋白。粘蛋白是一種酸性糖蛋
白,其等電點pH為3~5,因此,可在稀乙酸中出現(xiàn)白色沉淀。
器材:100ml量筒,滴管。
試劑:冰乙酸、蒸鐳水。
操作:
1、加試劑加2~3滴冰乙酸于100ml量筒中,再加大約100ml蒸僧水,
混勻,此時溶液的pH為3?5,靜置數(shù)分鐘。
2、加標(biāo)本垂直滴加待測標(biāo)本1滴于量筒中。
3、視察結(jié)果馬上在黑色背景下視察有無白色云霧狀沉淀生成與其下降程
度。
4、推斷結(jié)果
(1)陰性、陽性結(jié)果的推斷。
1)陰性:清晰,不顯霧狀或有稍微白色霧狀渾濁,但在下降過程中消逝。
2)陽性:出現(xiàn)白色霧狀渾濁并漸漸下沉至量筒底部不消逝。
(2)陽性程度的推斷
1)漸呈白霧狀為(土)
2)可見灰白色霧狀為(+)
3)白色薄云狀為(++)
4)白色濃玄狀(++++)
留意事項:
1s血性漿膜腔積液經(jīng)離心沉淀后,用上清液進行檢查。
2、量筒的高度與蒸偏水的量要足夠。
3、加入標(biāo)本后馬上在黑色背景下細(xì)致視察結(jié)果。如渾濁不明顯,下沉緩
慢,中途消逝者為陰性。
試驗十八精子活動率和活動力檢查
原理:精液液化后,將精液滴于載玻片上,顯微鏡下視察精子的活動狀況,
計算活動率和活動力Q
器材:顯微鏡,載玻片,蓋玻片。
試劑:5g/L伊紅Y染液
標(biāo)本:簇新液化精液°
操作:
1s計算精子活動率取液化精液1滴于載玻片上,加蓋玻片,高倍鏡下視
察100個精子,計數(shù)有尾部活動精子數(shù),計算其百分率,即精子活動率C
2、視察精子活動力在視察活動率的同時,視察精子活動的強度,將精子
活動分為a、b、c、d四個級別,即精子活動力。a級:精子呈前向快速運
動;b級:緩慢或呆滯的前向運動;c級:非前向運動;d級:死精子。
3、染色若不活動精子大于50%,可進行體外活體染色,以鑒別其死活。
取簇新液化精液和伊紅Y染液1滴于載玻片上,混勻,lmin后推成薄片,
自然干燥后于顯微鏡(高倍鏡)下視察。死精子呈紅色,活精子不著色。視
察100個精子,以不著色精子的百分率報告精子活率。
留意事項:
1、排精后lh內(nèi)送檢,時間過長,精子活動率和活動力減低。
2、檢查時留意保溫,溫度過低,精子活動率、活動力下降。如室溫低于
10C。時,應(yīng)將標(biāo)本先放入37co溫育5-lOmin后鏡檢。
試驗十九精子計數(shù)
原理:采納碳酸氫鈉破壞精液的粘稠度,甲醛固定精子,然后充計數(shù)池,
顯微鏡下計數(shù)肯定范圍內(nèi)的精子數(shù),換算成每升精液中的精子數(shù)。
試劑:精子稀釋液。
標(biāo)本:簇新精液化精液?
操作:
1、取稀釋液取精子稀釋液0.38ml于小試管內(nèi)。
2、加精液加入混勻的液化精液203,充分混勻。
3、充池取1滴精子懸液充入計數(shù)池內(nèi),靜置3~5min。
4、視察高倍鏡下計數(shù)中心大方格內(nèi)四角與中心5個中方格內(nèi)的精子數(shù)。
以精子頭部作為基準(zhǔn)進行計數(shù)。
5、計算
精子計數(shù)二5個中方格內(nèi)精子數(shù)xlo'/L
精子總數(shù)二精子數(shù)/Lx精液量(ml)xl()3
如
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