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文檔簡介
1、廣東省高等教育廳核心實驗室現(xiàn)代生物技術實驗室實驗教材基因工程實驗地圖(本科教材)華南農(nóng)業(yè)大學現(xiàn)代生物技術實驗室基因工程實驗丟失2009年4月編輯的話本實驗圖是為廣東省高校廳重點實驗室之一“現(xiàn)代生命技術研究所”開設的“基因工程原理和方法”而編寫的。本課程主要面向廣州石牌地區(qū)6所高校的研究生,還包括部分高年級本科生。本課程以實驗為主,要求所有學員提前完成“分子生物學”或“分子遺傳學”,以便學生在選修本課程時有較好的理論基礎。本課程實驗采用了一致的實驗系統(tǒng)(用質粒載體克隆植物DNA片段),學生掌握了DNA體外重組的基本技術訓練(實驗1-7)。另外,根據(jù)本研究室多年的教育研究經(jīng)驗,我們將近年來遺傳工程
2、技術發(fā)展的PCR、Southern雜交技術等納入實驗內(nèi)容,確保學生完成本課程后能更快地開展相應的研究工作,更好地適應今后研究工作的需要。(莎士比亞,北境外)。本實驗地圖由張楚雄、穆紅、李繼才、姚下午安、吳虎、將軍宇、劉耀光、梅萬通等教師參與編寫,李繼才老師負責指導書的編輯等。本實驗地圖是考試用的第三版,考試后將根據(jù)各學校的選課過程和要求做進一步修改。請兄弟大學的同行們多多提出寶貴的意見。(David aser,Northern Exposure)編輯2005年2月目錄基因工程實驗室學生代碼3實驗堿分解法提取質粒DNA 4實驗瓊脂糖凝膠電泳7實驗3 DNA酶9實驗4目的片段回收11實驗5 DNA
3、體外連接12實驗6重組DNA的轉基因15實驗7重組變壓器的快速鑒定18實驗八聚酶鏈反應(PCR) 19附錄一.各種試劑的母液公式28附錄二。常用實驗設備的清洗方法31主要參考書32基因工程實驗室學生守則1.實驗課前必須預習實驗地圖,了解實驗原理和基本操作過程。實驗課無緣無故缺席、遲到或早退渡邊杏。鄭智薰時間表上規(guī)定的實驗時間要按照林老師的安排及時操作。3.實驗課要自覺遵守課堂紀律,保持實驗室安靜清潔的衛(wèi)生,渡邊杏大聲談笑,吸煙,隨地亂扔紙屑,吐痰,渡邊杏。4.實驗前要檢查儀器、工具、試劑,實驗臺隨時要整齊、儀器、藥品擺放整齊。公用試劑用完了,必須立即蓋上蓋子,放回原處。試劑,不要把藥品灑在實驗
4、臺和地板上。5.在實驗中要嚴格遵守操作規(guī)程進行實驗,細心觀察實驗現(xiàn)象,如實記錄實驗結果。每次實驗完成后,都要寫實驗報告。6.實驗結束后,要好好清潔當天使用的器皿和工具,整理儀器和實驗臺,然后經(jīng)過林和教師的同意離開。7.使用儀器、藥品、試劑及各種其他物品時要注意節(jié)約。洗滌和使用機器時要小心,以免損壞機器。8.廢液倒入水槽,同時噴出水,噴出江珊、強堿等腐蝕性液體,先用水稀釋,然后倒入水槽,讓水流出。廢紙等其他固體廢棄物應倒進水槽渡邊杏,倒進垃圾桶。9.嚴禁擅自使用非當日實驗所需的儀器和物品,使用儀器要嚴格按照儀器使用的程序進行,貴重儀器要在林老師的指導下操作。實驗過程中機器出了故障,要立即向林和老
5、師報告情況。例如,違反使用規(guī)定造成的損失,用戶負責維修和賠償。10.每一個實驗課,任課教師輪流值班,值班生當天負責實驗室的衛(wèi)生、安全、所有服務工作,最后關閉水電、門窗,經(jīng)過林課教師的檢查同意后才能離開。實驗堿分解法提取質粒DNA一、目的學習和掌握基因工程操作技術中最常用的載體質粒DNA提取方法。二、原則質粒DNA提取一般使用堿分解法、煮沸法、SDS法、三唑酮-溶菌酶法等,其中堿分解法最常用。該方法具有質粒DNA產(chǎn)量高、速度快等優(yōu)點。其原理是,在:堿性溶液中,雙鏈DNA氫鍵斷裂,DNA雙螺旋結構被破壞,產(chǎn)生變性,但質粒DNA分子量相對較小,環(huán)狀超螺旋結構導致兩個互補鏈在高堿性pH條件下也沒有完全
6、分離,如果放入中和液,變性質粒DNA就會恢復到原來的配置。線性大分子質量細菌染色體DNA沒有報復性,形成細胞片段、蛋白質、SDS等不溶性復合物。通過離心沉積可以去除細胞碎片、染色體DNA和大部分蛋白質等,質粒DNA和小分子量的RNA留在上清液中?;祀s的RNA可以用RNA酶(RNaseA)去除。用苯酚/氯仿處理,可以去除殘留蛋白質。三、實驗材料含有質粒pBluescript II的大腸桿菌BH10B。四、設備和設備高壓滅菌鍋初順工作臺恒溫晃動。臺式離心機(制冷或鄭智薰董潔)渦流振蕩器五、實驗工具培養(yǎng)用試管測量桶冰盒幾根微量離心管微量拔出器吸管。六、試劑(準備方法見附錄)LB培養(yǎng)基氨芐西林(Amp
7、,100 mg/ml) 20% SDS溶液I溶液II(目前最好使用);溶液III(-20預冷)4 N NaOH 3 M NaAc(pH5.2)無水乙醇TE緩沖區(qū)(pH 8.0) RNase A(10 mg/ml) 70%乙醇飽和苯酚/氯仿/異丙醇(2533602433:1,注:本實驗指南的其他章節(jié)省略為苯酚/氯仿,“氯仿是指增加了1/24體積的異丙醇”。)七、實驗階段1.細菌培養(yǎng)(1)準備LB液體和瓊脂培養(yǎng)基,進行高壓滅菌。(2)在含有Amp 100 mg/ml的瓊脂培養(yǎng)基板(下劃線或涂布)上培養(yǎng)單菌落(37 C,1820小時)。(3)將含有Amp 100 mg/ml的LB液體培養(yǎng)基(45 m
8、l/管)放入培養(yǎng)基中,將單體放入培養(yǎng)基中。把培養(yǎng)管斜插在搖床上,搖晃37,過夜(約200 rpm,1416小時,通常不超過18小時)。需要大量提取的情況下,選擇單細胞,連接到裝有50MLB培養(yǎng)基的三角瓶,在37時搖晃18小時。質粒DNA提取(如果使用制冷離心機,請設置為4 預冷)將1.5毫升菌液吸入1.5毫升離心管。離心(5000 rpm,2分鐘),放棄清液。如果你想再提取一些DNA,就把1.5毫升的菌液扔出同一個離心管,離心力,清液。用移動器盡量去除清液。加入150毫升溶液I,用旋流振蕩器充分釋放菌體。加入250毫升溶液II,慢慢上下翻轉離心管,輕輕攪拌10多次。室溫下放置5分鐘。加入180
9、 ml預冷溶液III,上下翻轉離心管。10多次,輕輕混合。冰浴在10分鐘,或-20冰箱里放5分鐘左右(不要凍得太久)。離心(12000 rpm,5分鐘,4C)。(離心后,將離心機溫度設定為20 。)去除上清液。2/3倍苯酚/氯仿萃取,離心(12000 rpm,5分鐘)。去除上清液(約500 550毫升),2倍體積的無水乙醇(大量提取時上清液的容量大,以0.6倍體積代替乙醇,混合異丙醇)。離心(12000 rpm,5分鐘,室溫),倒入酒精。離心力在幾秒鐘內(nèi)用移動器盡可能地除去酒精。用0.5毫升70%酒精沉淀一次DNA,在離心2分鐘內(nèi)倒入酒精。離心力幾秒,用移動器盡可能地除去酒精,干燥10分鐘。添
10、加50100 ml TE(含20 mg/ml RNaseA)溶解DNA沉淀。37C放置幾個小時,-20C保存?zhèn)浼?。高輻射質粒DNA的產(chǎn)量一般為3-5mg/ml菌液。這種DNA可以直接用于限制性內(nèi)切酶切等反應。如果需要更高純度的DNA,可以進一步純化。質粒DNA的進一步純化添加TE使DNA溶液達到100毫升,加入100毫升苯酚/氯仿,充分振動。離心(12000 rpm,5分鐘),吸收上清液。加入1/10體積的3 M NaAc,加入體積的預冷絕對乙醇2倍混合。在-70oC冰箱里放大約10分鐘以上,或者在-20oC冰箱里放30分鐘到幾小時左右。離心力(12000 rpm,15分鐘,4oC),倒入酒精
11、,離心力幾秒鐘,用移動器最大限度地去除酒精。用0.5毫升70%酒精沉淀一次DNA,在離心2分鐘內(nèi)倒入酒精。離心力在幾秒鐘內(nèi)用移動器盡可能地除去酒精并干燥。添加50100 ml TE溶解DNA沉淀。(大量提取質粒DNA,溶液I,II,III的使用量可能會相應增加。例如,如果培養(yǎng)液為50毫升,則溶液I、II、III的用量分別為2.0毫升、4.0毫升和3.0毫升。)用這種實驗方法提取和純化的質粒DNA純度只能滿足一般目的的要求。如果純度高(例如用作復制載體和排序的模板),建議使用制造商提供的質粒純化套件進行提取。八、實驗注意事項1.高壓消毒要由專人管理,壓力為0.5磅時拔掉電源插頭,加熱到1.0磅,
12、保持20分鐘(通過,切斷開關控制)。2.使用滅菌工作臺前,請打開紫外線燈消毒,打開紫外線燈時不要打開北風裝置。3.抗菌藥物不能使用高溫滅菌。培養(yǎng)基滅菌后要降溫,直到?jīng)]有熱孫怡。4.為了避免細菌污染環(huán)境,額外的菌液煮殺后再倒入水槽。5.加入溶液II,溶液III,攪拌好的時候一定要柔軟,劇烈攪拌渡邊杏。6.在苯酚/氯仿萃取后吸清液時,要注意不要吸入下層苯酚/氯仿。但是不要留下太多的上清液,讓DNA損失更多。(本杰明富蘭克林,DNA名言)九、實驗日程1.第一天下午準備液體和瓊脂培養(yǎng)基。(5:30)在瓊脂培養(yǎng)基板上劃線,熬夜培養(yǎng)短桿菌生長。2.第二天下午(5336030),選擇單細胞乳酸菌,通宵培養(yǎng)。
13、3.上午停止培養(yǎng)9:00左右,在室溫或4下保管。下午提取質粒(純化在實驗2電泳過程中進行)。實驗瓊脂糖凝膠電泳一、目的學習瓊脂糖凝膠電泳分離DNA的原理和方法,檢測質粒DNA的純度、濃度和分子量。二、原則瓊脂糖是溶解在沸水中的天然聚合長鏈分子,45開始形成多孔剛性過濾孔,凝膠孔徑的大小由瓊脂糖的濃度決定。DNA分子在堿性環(huán)境中帶負電荷,加上電場作用,向兩極游泳。DNA分子在瓊脂糖凝膠中游泳時有電荷效應和分子篩效應。根據(jù)DNA,分子量的大小和構成不同,電泳的游泳率不同,分成不同的樂隊。瓊脂糖凝膠電泳分離DNA主要利用分子體效應,移動速度與分子量的大數(shù)值成反比。溴化B (EB)是扁平的分子,在紫外
14、線中發(fā)出熒光。EB可以與DNA分子形成EB-DNA復合物,其釋放的熒光強度比自由狀態(tài)EB釋放的熒光強度大10倍以上,熒光強度與DNA含量成正比。用肉眼觀察,可以檢測5 ng以上的DNA。質粒DNA有三種結構,環(huán)狀的超螺旋、開環(huán)和線性,移動速率因電泳而異(超螺旋線性開環(huán))。三、實驗材料上次實驗提取的質粒DNA。四、實驗設備微波電泳微電泳槽紫外透射檢測儀五、實驗工具微量萃取器吸管頭幾個附加模板。兩桶100 ml1三角瓶500 ml1透明膠帶六、試劑(準備方法見附錄)每個陣地10TBE電泳緩沖液10再型緩沖液EB母液(0.5MG/ML) DNA (HIND )七、實驗階段1.制作膠水(1)將0.8 g瓊脂糖放入包含100 ml 1TBE電泳緩沖液的500 ml三角瓶中,搖晃得很好,用電子秤測量三角瓶的總重量。在微波爐或電爐中加熱至瓊脂糖完全融化,在天平上加入蒸餾水,添加到原來的重量。冷卻到
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