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文檔簡介
1、標(biāo)準(zhǔn)曲線制作一考馬斯亮藍法測蛋白質(zhì)含量一、標(biāo)準(zhǔn)曲線一般用分光光度法測物質(zhì)的含量,先要制作標(biāo)準(zhǔn)曲線,然后根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線査 出所測物質(zhì)的含量。因此,制作標(biāo)準(zhǔn)曲線是生物檢測分析的一項基本技術(shù)。二、蛋白質(zhì)含量測定方法1、凱氏定氮法2、雙縮脈法3、Folin-酚試劑法4、紫外吸收法5、考馬斯亮藍法三、誇馬斯亮藍法測定蛋白質(zhì)含量一標(biāo)準(zhǔn)曲線制作(一) 、試劑:1、考馬斯亮藍試劑:考馬斯亮藍G250 lOOmg溶于5()ml 95%乙醇,加入lOOml 85% H5PO4,用蒸憎水稀釋至10(X)ml,濾紙過濾。最終試劑中含0.01% (W/V)考馬斯亮藍G250,4.7% (W/V)乙醇,8.5% (W/V)
2、 H3PO4o2、標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)溶液:純的牛血清血蛋白,預(yù)先經(jīng)微量凱氏定氮法測定蛋白氮含量,根據(jù)其純度同0.15mol/LNaCl 配制成 100ug/ml 蛋白溶液。(二) 、器材:1、722S型分光光度計使用及原理()。2、移液管使用()o(三八標(biāo)準(zhǔn)曲線制作:1、試管編號01234561 OOug/ml標(biāo)準(zhǔn)蛋白(ml)0.00.10.2().30.40.50.60.15mol/L NaCI (ml)10.90.80.70.60.50.4考馬斯亮藍試劑(創(chuàng))5555555搖勻,lh內(nèi)以1號管為空白對照,在595nm處比色人5951縱坐標(biāo),標(biāo)準(zhǔn)蛋白含量為橫坐標(biāo)(六個點為10叱、20 ug. 30
3、ug、40畔、5()u® 60 ug),在坐標(biāo)軸上繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。1)、利用標(biāo)準(zhǔn)曲線査岀回歸方程。2)、用公式計算回歸方程。3)、或用origin作圖,測出回歸線性方程。即A595nm=aXX( )+6一般相關(guān)系數(shù)應(yīng)過0.999以上,至少2個9以上。4)、繪圖時近兩使點在一條直線上,在直線上的點應(yīng)該在直線兩側(cè)。(四)、蛋白質(zhì)含量的測定:樣品即所測蛋白質(zhì)含量樣品(含量應(yīng)處理在所測范圍內(nèi)),依照操作步驟1 操作,測出樣品的然后利用標(biāo)準(zhǔn)曲線或回歸方程求出樣品蛋白質(zhì)含量。一般被測樣品的仏9亦值在0.10.05之間,所以上述樣品如果人9亦值太大, 可以稀釋后再測人9洵值,然后再計算。(五)、注意
4、事項:1、玻璃儀器要洗滌干凈。2、取量要準(zhǔn)確。3、玻璃儀器要干燥,避免溫度變化。4、對照:用被測物質(zhì)以外的物質(zhì)作空白對照。藥品的配制(磷酸緩沖液的配制)一、藥品的配制步驟(一)、實驗準(zhǔn)備:1、準(zhǔn)備所需的藥品和玻璃儀器。2、洗滌。(怎樣洗滌算干凈?)(二)、計算:1、百分比濃度計算:1)、G/V 比 例如配1% NaCl,稱IgNaCI溶于100ml水。2)、V/V 比:例如配 75%乙醇 100ml, 75% XI00%=100% XX, X=75mlo 取 75ml 無水乙醇,加25ml蒸f留水。乙醇:乙醛:丙酮=2: 1: 2配500ml,各取200 ml, 100 ml, 200 ml混
5、合。3)G/V比:用的較少,如計算灰分中某種元素如氏的含量。2、摩爾濃度計算:注:藥品的分于量一般在標(biāo)簽中注明。1)、0.1M 或 0.1mol/L NaCl 配 lOOmLM二質(zhì)量/體積(L)稱取NaClO.l X0.1 X40=0.4g 摩爾數(shù)二G (g) /摩爾質(zhì)量2)、O.lmMNaCl 配 100mlmM二毫摩爾數(shù)/體積(L)稱取 NaC10.1X0.1X40=0.4g毫摩爾數(shù)二G (mg) /摩爾質(zhì)量3)、O.luNaCl E 100mlmM二微摩爾數(shù)/體積(L)稱取 NaC10.1X0.1X40=0.4mg微摩爾數(shù)二G (ug) /摩爾質(zhì)量稱取NaC10.1X0.1X40=0.4
6、ug3、混合溶液配制的計算:如配 3uMEOTA, 2.25mM NBT 以& 60uM溶液 100ml,用 50mM 磷酸緩沖液配制。注意:1、分別標(biāo)定體積計算2、分別配制再混合,但總體積不能 為1()()曲(三)、標(biāo)量:1、根據(jù)需要選擇不同量程的天平根據(jù)要求去不同精度的測量器,如量筒或移液 管。2、電于分析天平的使用。(四)、溶解:1、根據(jù)藥品配置要求選擇溶劑。蒸憎水,雙蒸水,無離于水等。2、只能用燒杯溶解。注意加入溶劑只能加入總體積的2/3左右,剩余溶劑洗滌 燒杯三次左右,直到洗滌干凈。小常識:藥品標(biāo)簽中一般標(biāo)識有藥品的溶解性能和分于式,可根據(jù)分于式和 所學(xué)的常識判斷藥品的結(jié)構(gòu)和
7、性質(zhì)特點(包括溶解性質(zhì))。如酸堿兩性物質(zhì)的配制(AA蛋白質(zhì)、核昔酸等)如果溶解性能不好可以 用稀酸或稀堿促進溶解,但pH應(yīng)在被要求的范圍內(nèi)。3、加熱促進溶解,但注意應(yīng)在配制的范圍內(nèi)有的藥品還需水溶加熱較好。如:配0.1%的淀粉,水裕加熱(溫度在80-90" C),過量會糊化。(五)、定容:1、用容量瓶定容;2、用玻璃棒引流或用小漏斗;3、用溶劑加入到接近刻度,然后用滴管加入到刻度。要求刻度與液體凹面相切 為止(眼睛可視);4、上下窯洞容量瓶幾次,混合均勻即可。(注意不再定容了,防止溶液漏掉。)(六)、裝入試劑瓶,貼上標(biāo)簽。標(biāo)簽應(yīng)注明以下內(nèi)容:藥品濃度、名稱、配制人、配制日期等。(七)
8、、清理實驗場所。二、磷酸緩沖液的配制。(一)、配制0.2m()l/L即().2MpH二6.8的磷酸緩沖液。用磷酸氫二鈉一磷酸二氫 鈉做緩沖液。選用藥品:Na2HPO4 - 12H2O (堿)和 NaH2PO4 - 12H.O (酸)配緩沖液 lOOmL 書中說明。(二)、計算:1、注:書中有注明配置的量。2、計算:Na2HPO4 - 12H2O 稱取 71.64X0.1=7.164gNaH2PO4 - 12H2O 稱取 31.21 XO.仁 3.121 g3、含有不同結(jié)晶水的換算。書中配l/15mol/L的緩沖液配1L,書中用NaHPCU 2HQ需要11.870L但用Na2HP()4 12H2O 需多少若?11.87= (178/358) XX, X=23.87ge(三)、分別配制緩沖液各100ml (根據(jù)需要確定配制的量)。即:0.2M Na2HPO4 - 2H2O 和 NaH2PO4 2H20100mL(四)、按書中的量配制取量再混合。 如:pH二68,分別去緩沖對49ml和51ml。(五)、用pH試紙cmi索賠的緩沖液的pH值,檢測配置是否準(zhǔn)確。
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