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大鼠取血方法割(剪)尾采血:100.1ml0.3~0.5ml。鼠尾刺血法:大鼠用血量不多時(shí)(僅做白細(xì)胞計(jì)數(shù)或血紅蛋白檢查),可承受本法。先將鼠78拔出針頭時(shí)即有血滴出,一次可采集10~50mm3。假設(shè)長(zhǎng)期反復(fù)取血,應(yīng)先靠近鼠尾末端穿刺,以后再漸漸向近心端穿刺。眼眶靜脈叢采血:20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml200-300g大鼠每次可采0.5-1.0ml,可適用于某些生物化學(xué)工程的檢驗(yàn)。斷頭取血:采血者的左手拇指和食指以背部較緊地握住大(小)鼠的頸部皮膚,并作動(dòng)物頭朝下傾的姿勢(shì)。右手用剪刀猛剪鼠頸,約1/2-4/5的頸部前剪斷,讓血自由滴入盛器。小鼠0.8~1.2ml;5-10ml。心臟采血:鼠類的心臟較小,且心率較快,心臟采血比較困難,故少用。假設(shè)做開胸一次死亡采血,先將動(dòng)物作深麻醉,翻開胸腔,暴露心臟,用針頭刺入右心室,吸取血液。小鼠約0.5-0.6ml0.8-1.2ml。淺麻醉大鼠四肢開放固定在平板上按常規(guī)碘酒、酒精消毒后用食指感覺心博最動(dòng)處1/30.2-0.5左右的地方垂直進(jìn)針〔1/4號(hào)〕針頭抵心臟有明顯的搏動(dòng)感,再稍進(jìn)針,有空虛感,血液跳動(dòng)而上針腔從血液的顏色很簡(jiǎn)潔推斷在心室還是心房,一般都在心室屢次同一大鼠的心臟采血,切記初次進(jìn)針的位置及深度,不要隨便更換固定姿勢(shì)!1ml4-5次〔200g大鼠〕頸動(dòng)靜脈采血:先將動(dòng)物仰位固定,切開頸部皮膚,分別皮下結(jié)締組織,使頸靜脈充分暴露,可用注射器吸出血液。在氣管兩側(cè)分別出頸動(dòng)脈,離心端結(jié)扎,向心端剪口將血滴入試鼠的血量、體內(nèi)藥物的濃度等影響均小些。頸動(dòng)靜脈插管:麻醉后手術(shù),大鼠固定后頭朝自己,頸部中線四周開1-2厘米口,用彎止血鉗鈍性分別,動(dòng)脈在中間,靜脈比較靠邊,而且分支較多,找到較粗的局部,留神,急躁分別,用線結(jié)扎遠(yuǎn)心端,在近心端預(yù)置一結(jié)扎用線,用止血鉗牽拉遠(yuǎn)心端線,使血管充盈,顯微剪剪開小口,插管,結(jié)扎.插管封口.(打結(jié)即可)動(dòng)脈方法相像.將動(dòng)靜脈插管引至背后,分清動(dòng)靜脈,一般手術(shù)后17小時(shí)或更長(zhǎng)時(shí)間開頭給藥,取血,通常動(dòng)脈取血,靜脈給藥,期間要用肝素沖管道.中進(jìn)針就可以了。左右兩邊頸靜脈均可以采,采左邊時(shí)上面的操作反方向。從鎖骨上方,緊貼鎖骨中間的地方進(jìn)針,這個(gè)位置很重要進(jìn)針后,稍稍抽下針管,假設(shè)沒有血,則往前或向后走下針頭,其實(shí)我的閱歷是大都是向前扎的太多了,應(yīng)往后抽下針頭。假設(shè)有血,哈哈,固定住注射器抽血吧。2ml100%存活的腹主動(dòng)脈采血:最好先將動(dòng)物麻醉,仰臥固定在手術(shù)架上,從腹正中線皮膚切開腹腔,使近心端,用尖頭手術(shù)剪刀,剪斷動(dòng)脈,使血液噴入盛器。股動(dòng)(靜)脈采血:①先由助手握住動(dòng)物,采血者左手拉直動(dòng)物下肢,使靜脈充盈?;蛘咭圆珓?dòng)為指標(biāo),右手15-20g0.2-0.8ml0.4-0.6ml。②在大鼠麻醉狀態(tài)下,固定,仰臥位固定,在大鼠的左側(cè)腹股溝處切口,暴露股動(dòng)靜脈,分別并分別插管〔插管中要求有肝素鹽水并在插管的一頭接上三通便利取血使用〕,取血。留意:間內(nèi)屢次取血,取血量過大會(huì)直接影響大鼠生理狀態(tài),即使得到一些數(shù)據(jù),意義也不大。目前比較可行的方法是在每個(gè)時(shí)間點(diǎn)各取一組大鼠的血,再進(jìn)展求算。尾靜脈取血不行,血量有限,而且采集時(shí)間太慢,根原來(lái)不及。眼底靜脈取血倒是可行的,血量最多的一回,我曾經(jīng)取到過接近4ml,一般可以在1ml以上,但取血有肯定難度,時(shí)間長(zhǎng)了,手就受不了了,我的閱歷是可以淺麻一下,用乙醚短確把握好取血的時(shí)間。2006ml左右,了就不太掙扎了。假設(shè)是單個(gè)大鼠連續(xù)取血,也可用本法,就是最多一次不行超出1ml,最好是0.5-0.6ml,并且適當(dāng)在消退期補(bǔ)充生理鹽水腹腔注射。尾靜脈的血沒有眼眶出得快,很慢的,取用量少還可以,在取前用甲苯擦一下,使
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