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文檔簡(jiǎn)介
第八章微生物監(jiān)測(cè)環(huán)境第一節(jié)環(huán)境污染的指示微生物第二節(jié)污染物生物毒性的微生物學(xué)檢測(cè)方法第三節(jié)污染物致突變性的微生物檢測(cè)方法一、一般污染指示微生物指示微生物:在常規(guī)環(huán)境監(jiān)測(cè)中,用以指示環(huán)境樣品污染性質(zhì)與程度,并評(píng)價(jià)環(huán)境衛(wèi)生狀況的具有代表性的微生物。(一)細(xì)菌總數(shù)1、定義:環(huán)境中被測(cè)樣品在一定條件下培養(yǎng)后所得的1mL或1g檢樣中所含有的細(xì)菌菌落總數(shù)。反映環(huán)境中異養(yǎng)型細(xì)菌的污染從度,也間接反映一般營(yíng)養(yǎng)性有機(jī)物的污染程度。2、方法(1)液態(tài)與固態(tài)對(duì)象中的細(xì)菌總數(shù):
將經(jīng)過(guò)一定倍數(shù)稀釋的樣品懸液,定量接種(傾注或圖布)于營(yíng)養(yǎng)平板,有氧37℃培養(yǎng)48h后觀(guān)察菌落。(2)空氣中的細(xì)菌總數(shù):平板暴露沉降法采用直徑9cm平皿在1.2m高處暴露5min,培養(yǎng)計(jì)數(shù);奧氏公式:5min內(nèi)落在100cm2營(yíng)養(yǎng)瓊脂平板上的細(xì)菌數(shù)和10L空氣中所含的細(xì)菌數(shù)相同最小采樣量和最小沉降面積(為避免出現(xiàn)“0”粒的概率,確保結(jié)果可靠性)。儀器法采用固體撞擊式采樣器。C=1000×50NA×tC-空氣細(xì)菌數(shù)A-捕集面積,cm2t-暴露時(shí)間,minN-菌落數(shù),個(gè)菌落計(jì)算方法有效菌落:無(wú)片狀菌落的平皿;若片狀菌落不到培養(yǎng)皿一半,而另一半分布又均勻,可以半皿計(jì)數(shù)再乘2代表全皿;選擇平均菌落數(shù)在30~300之間進(jìn)行計(jì)算;若有兩個(gè)稀釋度的平均符合,按兩者菌落總數(shù)之比來(lái)決定,<2報(bào)告平均數(shù),>2則報(bào)告較少的菌落總數(shù);若均大于300(小于30),按稀釋度最高(低)的平均菌落數(shù)乘以稀釋倍數(shù)報(bào)告;若所有稀釋度均不在30~300之間,則以最接近的報(bào)告。報(bào)告方式:<100報(bào)告實(shí)有數(shù)字;>100采用兩位有效數(shù)字,余者四舍五入;無(wú)法計(jì)算時(shí),注明稀釋倍數(shù)結(jié)果:cfu/ml或cfu/g細(xì)菌總數(shù)的衛(wèi)生標(biāo)準(zhǔn)生活飲用水<100cfu/ml室內(nèi)空氣<500~1000/m3室內(nèi)空氣指示菌以咽喉正常菌叢中的綠色鏈球菌為最合適,在上呼吸道和空氣中較易發(fā)現(xiàn)。對(duì)方法的評(píng)價(jià):相對(duì)性無(wú)菌水1.
稀釋平板計(jì)數(shù)法—固體培養(yǎng)法第一步:菌樣巧妙稀釋得到不同稀釋度(10-x)菌液菌樣被無(wú)菌水不同稀釋倍率后平板培養(yǎng)圖
10-2
10-3
10-4
10-5
各取1ml,均勻涂布于冷固體培養(yǎng)基平板上或與溫?zé)嵋簯B(tài)固體培養(yǎng)基混合冷卻。第三步:培養(yǎng)稀釋度過(guò)低,菌落密集無(wú)法計(jì)數(shù)可以計(jì)數(shù),但數(shù)量過(guò)多,費(fèi)時(shí)費(fèi)力數(shù)量合適,統(tǒng)計(jì)計(jì)算,作為結(jié)果數(shù)量太少,誤差因素太大,不做計(jì)數(shù)第二步:接種平板每一個(gè)細(xì)菌會(huì)生成一個(gè)菌落一般計(jì)數(shù)平板的細(xì)菌生長(zhǎng)菌落數(shù)以30~300個(gè)為宜。第四步:計(jì)數(shù)細(xì)菌數(shù)量=?細(xì)菌數(shù)量=數(shù)出的菌落數(shù)/稀釋度例如:10-5稀釋度時(shí)菌落數(shù)為125個(gè)細(xì)菌數(shù)量=125/10-5=1.25×107個(gè)/mL
平板計(jì)數(shù)法是采用最廣的一種活菌計(jì)數(shù)法如國(guó)標(biāo)法水中細(xì)菌總數(shù)的測(cè)定。注意:作空白及取平行樣(2~3組)均值減小誤差平均(二)霉菌和酵母菌總數(shù)意義:偏酸性好氧條件,存活力強(qiáng),有機(jī)營(yíng)養(yǎng)物廣泛;反映環(huán)境的一般性污染。方法:虎紅培養(yǎng)基、察氏培養(yǎng)基等;傾注平板法;25-28℃3-5天。結(jié)果:cfu/ml或cfu/g衛(wèi)生標(biāo)準(zhǔn):方法評(píng)價(jià):主要適用于霉菌,酵母菌附帶生長(zhǎng),均非環(huán)境中全部酵母菌。二、糞便污染指示菌(一)糞便污染指示菌的理想條件:是人畜糞便中的正常菌,且數(shù)量較糞便中其他菌為多受人畜糞便污染的環(huán)境中可檢出,而未受污染環(huán)境無(wú)該菌存在排出至環(huán)境后,該菌存活時(shí)間與腸道致病菌相當(dāng)或略長(zhǎng)對(duì)氯等消毒劑及其他不良因素的抵抗力略強(qiáng)于腸道致病菌檢出與鑒定方法比較簡(jiǎn)便迅速(二)總大腸菌群是一群能在37℃,24h內(nèi)發(fā)酵乳糖產(chǎn)酸產(chǎn)氣,需氧或兼性厭氧的G-無(wú)芽孢桿菌;主要包括四個(gè)菌屬:埃希氏菌屬、檸檬酸桿菌屬、克雷伯菌屬、腸桿菌屬;方法:多管發(fā)酵法、濾膜法。不適于用大腸菌群作為糞便污染指示菌的食品冷凍食品經(jīng)射線(xiàn)照射處理的食品
pH較高的食品在上述食品中大腸菌群的細(xì)菌比許多腸道病原微生物更易死亡1、多管發(fā)酵法初發(fā)酵:在2個(gè)各裝有已滅菌的50mL濃乳糖蛋白胨的大發(fā)酵瓶中,無(wú)菌操作加入水樣100mL;在10只含5mL培養(yǎng)基的發(fā)酵管中加水樣10mL,混勻后37℃培養(yǎng)24h;如無(wú)酸及氣體產(chǎn)生,為“-”;如有酸和氣體,或無(wú)氣體但有酸產(chǎn)生,為“+”;如有氣體產(chǎn)生,但沒(méi)產(chǎn)酸,溶液也不渾濁,可能是操作技術(shù)問(wèn)題,須重作檢驗(yàn);平板分離:從陽(yáng)性管中取液,分別接種在品紅亞硫酸鈉培養(yǎng)基或伊紅美藍(lán)培養(yǎng)基上,注意編號(hào),
37℃培養(yǎng)24h。多管發(fā)酵法如無(wú)細(xì)菌增殖現(xiàn)象,為“-”;如僅發(fā)現(xiàn)芒狀、霉?fàn)罨蚱渌麩o(wú)關(guān)菌屬的菌落,為“-”;挑取符合下列特征的菌落1/3涂片、G染色、鏡檢;品紅亞硫酸鈉培養(yǎng)基:紫紅色,具金屬光澤;深紅色,不帶或略帶金屬光澤;淡紅中心色較深;伊紅美藍(lán)培養(yǎng)基:深紫黑色,具金屬光澤;紫黑色,不帶或略帶金屬光澤;淡紫紅色,中心色較深。多管發(fā)酵法復(fù)發(fā)酵試驗(yàn):挑取鏡檢G-無(wú)芽孢桿菌的其余部分菌落,接種于含10mL普通濃度乳糖蛋白胨培養(yǎng)基的發(fā)酵管中,37℃培養(yǎng)24h,觀(guān)察產(chǎn)酸產(chǎn)氣;根據(jù)復(fù)發(fā)酵結(jié)果,統(tǒng)計(jì)出陽(yáng)性管及瓶數(shù),查表得出總大腸菌群數(shù)。多管發(fā)酵法水源水檢驗(yàn)時(shí)水樣稀釋10倍,預(yù)備15支發(fā)酵管,5支裝5ml濃培養(yǎng)基,加水樣10ml;10支裝10ml普通培養(yǎng)基,5支加水樣1ml,5支加稀釋水樣1ml;以后檢測(cè)同飲用水,根據(jù)存在的陽(yáng)性管數(shù)查另外的檢數(shù)表。濾膜法比發(fā)酵法縮短時(shí)間,有可能在24h內(nèi)完成。孔徑0.45-0.65μm,多孔性硝化纖維膜;濾膜滅菌:蒸餾水煮15min×3次;濾器滅菌:酒精棉球火焰滅菌或121℃30min;過(guò)濾水樣:粗糙面向上,過(guò)濾水量的確定以培養(yǎng)后濾膜上長(zhǎng)出的菌落不多于50個(gè)為原則。濾膜法水樣過(guò)濾后,繼續(xù)抽氣5s關(guān)閉,帶菌濾膜置于品紅亞硫酸鈉培養(yǎng)基上,二者之間不得留有氣泡,37℃培養(yǎng)24h;挑取特征菌落染色鏡檢;G-無(wú)芽孢桿菌的穿刺接種到乳糖蛋白胨半固體培養(yǎng)基(預(yù)先煮沸排氣),37℃培養(yǎng)6~8h,產(chǎn)氣者為“+”,培養(yǎng)基內(nèi)部形成龜裂狀,甚至部分上??;結(jié)果與衛(wèi)生標(biāo)準(zhǔn):大腸菌群數(shù)(個(gè)/L或個(gè)/ml);飲用水標(biāo)準(zhǔn):0個(gè)/100ml,土壤<100個(gè)/g大腸菌群值:水樣中可檢出1個(gè)大腸菌群細(xì)菌的最小水樣容積;土壤>10-2方法評(píng)價(jià):發(fā)酵法耗時(shí)長(zhǎng)、濾膜法不適于混濁度高的水樣、結(jié)果可能不準(zhǔn)確、不能指示水中細(xì)菌;來(lái)源不單一;不能指示病毒新進(jìn)展:“大腸菌群產(chǎn)色基質(zhì)試驗(yàn)”兩個(gè)活性底物鄰硝基苯-β-D-吡喃半乳糖苷及4-甲基傘形酮基-β-D葡萄糖醛酸,分別被大腸菌群的β-半乳糖苷酶和大腸桿菌的β-葡萄糖醛酸酶分解產(chǎn)生黃色的鄰硝基苯和發(fā)熒光的化合物,24h即可完成糞大腸菌群能在44.5℃發(fā)酵乳糖的大腸菌群,亦稱(chēng)耐熱性大腸菌群。糞大腸菌群與糞便中大腸桿菌數(shù)直接相關(guān),且在外環(huán)境中不易繁殖,因此意義更大。方法:多管發(fā)酵法、濾膜法EC培養(yǎng)基:三號(hào)膽鹽、胰蛋白胨、乳糖M-TEC培養(yǎng)基:眎蛋白胨、酵母膏、乳糖、十二烷基磺酸鈉、脫氧膽鹽鈉、溴甲酚紫、溴酚紅等糞大腸菌群結(jié)果:同總大腸菌群衛(wèi)生標(biāo)準(zhǔn):方法評(píng)價(jià):是種較好的水中腸道致病菌的指示菌糞鏈球菌意義:在人糞便中數(shù)量?jī)H次于大腸菌群細(xì)菌在水中不會(huì)自行繁殖,但抵抗力弱于致病菌為水質(zhì)細(xì)菌學(xué)評(píng)價(jià)提供有意義的補(bǔ)充材料根據(jù)Fe/Fs(糞大腸菌群/糞鏈球菌)∮來(lái)推測(cè)糞便污染的來(lái)源,僅適于新鮮污染方法:多管發(fā)酵法、濾膜法Fe/Fs≥4,認(rèn)為污染主要來(lái)自于人糞;≤0.7,主要來(lái)自溫血?jiǎng)游锛S便<4而>2,混合污染以人糞為主<1而>0.7,混合污染以動(dòng)物糞便為主產(chǎn)氣莢膜梭菌∮意義:存在于人及溫血?jiǎng)游锛S便中,具有芽孢的厭氧桿菌;具有較強(qiáng)抵抗力,特別適用于含有毒物質(zhì)的水體方法:多管發(fā)酵法、濾膜法、傾注法蛭弧菌∮意義:天然寄生菌,對(duì)污染的指示滯后,其指示污染可彌補(bǔ)大腸菌群的不足。方法:自來(lái)水雙層瓊脂平板法產(chǎn)氣莢膜梭菌蛭弧菌第三節(jié)其他指示微生物致病菌的指示菌沙門(mén)氏菌志賀氏菌銅綠假單胞菌金黃色葡萄球菌鏈球菌破傷風(fēng)梭菌腸炎沙門(mén)氏菌志賀氏菌銅綠假單胞菌產(chǎn)色素的銅綠假單胞菌金黃色葡萄球菌鏈球菌破傷風(fēng)梭菌腸道病毒的指示微生物脊髓灰質(zhì)炎病毒選用理由:脊髓灰質(zhì)炎病毒疫苗株對(duì)環(huán)境壓力相對(duì)穩(wěn)定,抵抗力較其它病毒強(qiáng),操作相對(duì)安全,與其他病毒比較易從環(huán)境樣品中檢測(cè)到濃縮方法:濾膜法、氫氧化鋁吸附沉淀法、聚乙二醇脫水透析法檢測(cè)方法:蝕斑實(shí)驗(yàn)、免疫學(xué)法噬菌體f2選用理由:與腸道病毒基本性狀相似,核酸均為RNA,理化性質(zhì)相近;存在于人類(lèi)糞便中,在水和污水中存在的數(shù)目多于腸道病毒;對(duì)外環(huán)境和氯的耐受力與腸道病毒相似或稍強(qiáng);檢測(cè)方法簡(jiǎn)單檢測(cè)方法:空斑定量測(cè)定法不足之處:在人糞便中數(shù)量不多;DNA大腸桿菌噬菌體在人類(lèi)糞便中經(jīng)常存在,并可能在水環(huán)境中繁殖,易掩蓋或混淆。作為腸道病毒污染指標(biāo)不理想,可作為消毒效果評(píng)價(jià)指標(biāo)第二節(jié)
污染物生物毒性的微生物學(xué)檢測(cè)方法
一、原核微生物檢測(cè)法發(fā)光細(xì)菌——細(xì)菌生物發(fā)光抑制試驗(yàn)細(xì)菌發(fā)光的生物學(xué)機(jī)制:NADH2FMN細(xì)胞色素O2蟲(chóng)熒光色素酶O2,醛激活的蟲(chóng)熒光色素酶蟲(chóng)熒光色素酶+光(一)細(xì)菌生物發(fā)光抑制試驗(yàn)試驗(yàn)原理環(huán)境條件不良或有毒物存在時(shí),因細(xì)菌熒光素酶活性或細(xì)胞呼吸受到抑制,發(fā)光能力受影響而減弱,其減弱程度與毒物的毒性大小和濃度成一定比例關(guān)系常用明亮發(fā)光桿菌“Microtox”法,是目前國(guó)際通用、使用最為廣泛的污染物毒性微生物學(xué)檢測(cè)方法細(xì)菌生物發(fā)光抑制試驗(yàn)試驗(yàn)方法菌種復(fù)蘇:加入2%NaCl,穩(wěn)定1~2h樣品處理:樣品稀釋并調(diào)pH6~8,同時(shí)調(diào)溶液的滲透壓使之含2%NaCl。毒性測(cè)定:定量加入菌液和樣品,15℃培養(yǎng)5或10min,直接讀出光量抑制百分率求不同劑量及其IR之間的回歸方程,計(jì)算IC50凍干菌種:白色粉末狀,含4%發(fā)光菌細(xì)胞,2%NaCl,保護(hù)劑和緩沖物質(zhì),-20~-25℃?zhèn)溆?,有效期一年IR=陰性對(duì)準(zhǔn)組指標(biāo)值-實(shí)驗(yàn)組指標(biāo)值陰性對(duì)準(zhǔn)組指標(biāo)值×100%陽(yáng)性有機(jī)對(duì)照-苯酚陽(yáng)性無(wú)機(jī)對(duì)照-Zn2+陰性對(duì)照-蒸餾水細(xì)菌生物發(fā)光抑制試驗(yàn)質(zhì)量控制同一劑量平行測(cè)定管間的發(fā)光強(qiáng)度差異值應(yīng)<20%100mg/L苯酚的IC50,5min應(yīng)為13~26mg/L100mg/LZnSO4?7H2O的IC50,15min應(yīng)為3~10mg/L 細(xì)菌生物發(fā)光抑制試驗(yàn)方法評(píng)價(jià)與傳統(tǒng)魚(yú)類(lèi)96h毒性試驗(yàn)有良好的一致性靈敏、快速,自動(dòng)化程度高各實(shí)驗(yàn)室間重現(xiàn)性好,變異系數(shù)10~20%,明顯好于傳統(tǒng)魚(yú)類(lèi)96h毒性試驗(yàn)?zāi)壳啊癕icrotox”已有效地應(yīng)用于化學(xué)物質(zhì)的定量構(gòu)效關(guān)系研究(二)硝化細(xì)菌——硝化作用抑制試驗(yàn)試驗(yàn)原理毒物抑制硝化作用的酶類(lèi)導(dǎo)致亞硝化或硝化細(xì)菌對(duì)底物的利用能力或產(chǎn)物生產(chǎn)量下降。通過(guò)測(cè)量底物或產(chǎn)物的變化來(lái)檢測(cè)污染物毒性作用的程度試驗(yàn)方法:方法評(píng)價(jià):靈敏度與“Microtox”相當(dāng),但結(jié)果相關(guān)性較差菌種增至108個(gè)/ml定量加入菌液、NaNO2溶液、不同濃度樣品,蒸餾水做對(duì)照30℃培養(yǎng)4h,定時(shí)取樣分析NO2-含量隨時(shí)間變化,得出硝化作用強(qiáng)度比較樣品組與對(duì)照組,可得IC50二、真核微生物檢測(cè)法(一)藻類(lèi)——生長(zhǎng)抑制試驗(yàn)試驗(yàn)原理:常用硅藻、柵藻、小球藻等,生長(zhǎng)迅速,對(duì)水質(zhì)變化敏感,通過(guò)測(cè)定其生長(zhǎng)量來(lái)反應(yīng)水質(zhì)污染情況或物質(zhì)毒性程度試驗(yàn)方法:藻體生長(zhǎng)量;釋出氧量;攝取14C量;細(xì)胞DNA及ATP測(cè)定結(jié)果評(píng)價(jià)與標(biāo)準(zhǔn):藻細(xì)胞最大生長(zhǎng)速率與對(duì)照相比降至50%以下,且呈劑量反應(yīng)關(guān)系時(shí),即可認(rèn)為受試物有毒性作用(二)原生動(dòng)物——微尺度群落級(jí)毒性試驗(yàn)試驗(yàn)原理:在正常條件下自然界水環(huán)境的微型生物群落種類(lèi)、分布與構(gòu)成均有一定規(guī)律。在外界環(huán)境因素的干擾下,群落的平衡被破壞,結(jié)構(gòu)特征也隨之變化。通過(guò)分析相關(guān)的微型生物群落結(jié)構(gòu)參數(shù),即可判斷水環(huán)境的質(zhì)量狀況或污染物質(zhì)的毒性特征。具有很強(qiáng)的生態(tài)學(xué)意義。原生動(dòng)物——微尺度群落級(jí)毒性試驗(yàn)聚氨酯泡沫塑料塊(PFU)法作為微型動(dòng)物的生態(tài)島,其上原生動(dòng)物群集速度隨種類(lèi)上升而下降,兩者交叉點(diǎn)及為平衡點(diǎn),達(dá)到平衡時(shí)間取決于環(huán)境條件據(jù)報(bào)道:孔徑100~150μm,厚度5cm,規(guī)格5×6.5×7.5cm3為好,可依靠垂墜物懸掛在任何水層據(jù)報(bào)道:其擠出液可見(jiàn)到水體中大約85%的原生動(dòng)物種類(lèi),可以反映整個(gè)群落動(dòng)態(tài)變化的全過(guò)程和基本趨勢(shì)原生動(dòng)物——微尺度群落級(jí)毒性試驗(yàn)試驗(yàn)方法與評(píng)價(jià):一般情況下,隨著污染程度的升高,原生動(dòng)物種類(lèi)數(shù)(S)會(huì)減少,多樣性指數(shù)(d)會(huì)降低,Seq會(huì)下降;在一個(gè)以異養(yǎng)型生物為主的水體中,異養(yǎng)型指數(shù)(HI)高,表示存在有機(jī)污染,此時(shí)群集速度常數(shù)(G)會(huì)增大,T90會(huì)縮短三、活性污泥毒性檢測(cè)法脫氫酶活性試驗(yàn)試驗(yàn)原理:活性污泥中微生物的脫氫酶類(lèi)能使被氧化有機(jī)質(zhì)的氫原子活化并傳遞給特定的氫受體,反映活性污泥對(duì)污水中有機(jī)質(zhì)的氧化分解能力。毒性物質(zhì)的存在會(huì)抑制脫氫酶的活性,可通過(guò)指示劑的還原變色速度來(lái)確定脫氫酶的活性,以判斷毒性物質(zhì)的作用強(qiáng)度。常用指示劑為T(mén)TC(氯化三苯基四氮唑),它受氫后變?yōu)榧t色TF(三苯基甲臜)(485nm)脫氫酶活性試驗(yàn)試驗(yàn)方法:TF標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)的制作馴化的活性污泥經(jīng)離心洗滌制成懸浮液在測(cè)定管中定量加入懸浮液、Tris-HCl緩沖液、樣品、TTC等,以蒸餾水做對(duì)照37℃水浴避光反應(yīng)顯色,加濃硫酸終止加入丙酮萃取TF,離心上清液485nm比色,得TF產(chǎn)生量,計(jì)算脫氫酶活性酶活:指酶催化化學(xué)反應(yīng)的能力,衡量標(biāo)準(zhǔn)是酶促反應(yīng)速度的大小,用單位時(shí)間內(nèi)底物的消耗量或產(chǎn)生生成量來(lái)表示呼吸抑制試驗(yàn)試驗(yàn)原理:廢水中有毒物質(zhì)可以抑制微生物的呼吸,使其耗氧量和CO2產(chǎn)生量下降,下降的程度與毒性物質(zhì)的濃度和強(qiáng)度有關(guān)試驗(yàn)方法:傳統(tǒng)的瓦勃氏呼吸儀法和目前的直接測(cè)定DO法結(jié)果評(píng)價(jià):相對(duì)好氧速率=污泥的呼吸耗氧速率內(nèi)源性呼吸耗氧速率×100%四、微生物學(xué)檢測(cè)法評(píng)價(jià)簡(jiǎn)便靈敏快速經(jīng)濟(jì)結(jié)果的差異性結(jié)果的變異性與哺乳動(dòng)物試驗(yàn)互為補(bǔ)充第三節(jié)
污染物致突變性的微生物檢測(cè)方法一、基因突變?cè)囼?yàn)二、DNA損傷修復(fù)試驗(yàn)三、DNA重組試驗(yàn)四、微生物致突變?cè)囼?yàn)與致癌物的確定一、基因突變?cè)囼?yàn)鼠傷寒沙門(mén)氏菌/哺乳動(dòng)物微粒體酶試驗(yàn)(Ames試驗(yàn))應(yīng)用與評(píng)價(jià):良好的環(huán)境致突變物與潛在致癌物初篩報(bào)警Ames試驗(yàn)已被我國(guó)食品安全性毒理學(xué)評(píng)價(jià)程序、農(nóng)藥登記毒理學(xué)試驗(yàn)方法、新藥(西藥)毒理學(xué)研究指導(dǎo)原則、化妝品安全性評(píng)價(jià)程序和方法、食品功能毒理學(xué)評(píng)價(jià)程序和檢驗(yàn)方法等列為評(píng)價(jià)致突變性的必做試驗(yàn)鼠傷寒沙門(mén)氏菌/哺乳動(dòng)物微粒體酶試驗(yàn)(Ames試驗(yàn))原理:人工誘變的鼠傷寒沙門(mén)氏菌株,又稱(chēng)TA(his)菌株,是組氨酸營(yíng)養(yǎng)缺陷型菌株,在致突變物的作用下,能發(fā)生回復(fù)突變?yōu)橐吧透鶕?jù)該菌在特殊培養(yǎng)基上的生長(zhǎng)能力,判斷受試物是否具有致突變性哺乳動(dòng)物肝勻漿中含微粒體混合功能氧化酶,對(duì)間接致突變物有生物活化作用鼠傷寒沙門(mén)氏菌/哺乳動(dòng)物微粒體酶試驗(yàn)(Ames試驗(yàn))常用菌株:TA97、TA98、TA100、TA102①組氨酸依賴(lài)性,+表示需要②深粗糙型脂多糖屏障丟失,+表示缺失,有抑菌③紫外線(xiàn)損傷修復(fù)基因缺陷,+表示缺失,無(wú)修復(fù)能力④抗氨芐青霉素因子,+表示有⑤抗四環(huán)素質(zhì)粒,+表示有鼠傷寒沙門(mén)氏菌/哺乳動(dòng)物微粒體酶試驗(yàn)(Ames試驗(yàn))實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì):菌株選擇:TA97、TA98、TA100、TA102溶劑選擇:根據(jù)受試物的理化性質(zhì),水溶性的最好用滅菌雙蒸水,非水溶的一般常用二甲基亞砜(DMSO),每皿有機(jī)溶劑用量不得超過(guò)0.1ml鼠傷寒沙門(mén)氏菌/哺乳動(dòng)物微粒體酶試驗(yàn)(Ames試驗(yàn))劑量選擇:在0.2~500μg/皿之間選擇2或3個(gè)劑量,常用為0.2、2、20、500μg/皿。有殺菌作用的包括一個(gè)最低殺菌濃度,有沉淀的包括一個(gè)最小沉淀濃度,誘變陰性的包括一個(gè)最大溶解濃度,無(wú)殺菌作用的最高檢測(cè)濃度至少應(yīng)為500μg/皿。受試溶液應(yīng)新鮮配制陽(yáng)性對(duì)照物的選擇:必須同時(shí)做陽(yáng)性對(duì)照,用以檢定菌株的回變性和特異性以及S-9混合液的效果鼠傷寒沙門(mén)氏菌/哺乳動(dòng)物微粒體酶試驗(yàn)(Ames試驗(yàn))試驗(yàn)設(shè)計(jì)的嚴(yán)密性:受試物最少應(yīng)設(shè)三個(gè)劑量,以便觀(guān)察劑量反應(yīng)關(guān)系,同時(shí)設(shè)陽(yáng)性對(duì)照、陰性對(duì)照和溶劑對(duì)照。陰性對(duì)照可反應(yīng)菌株的自發(fā)回變情況,溶劑對(duì)照可排除溶劑引起突變的可能性。同一樣品必須做加S-9混合液和不加S-9混合液的試驗(yàn)。試驗(yàn)時(shí),每份樣品(包括對(duì)照)均應(yīng)做三個(gè)平行樣,至少應(yīng)做2次重復(fù)試驗(yàn),方可正式報(bào)告結(jié)果鼠傷寒沙門(mén)氏菌/哺乳動(dòng)物微粒體酶試驗(yàn)(Ames試驗(yàn))培養(yǎng)基:S-9液取材:選用200g左右、健康雄性Sprague-Dawley系大鼠或150g左右、健康雄性Wister大鼠。營(yíng)養(yǎng)肉湯培養(yǎng)基(增菌用):含牛肉膏、蛋白胨Vogel-Bonner氏液:含多種無(wú)機(jī)鹽底層瓊脂(供細(xì)菌生長(zhǎng)):含V-B液、葡萄糖頂層瓊脂(致突變?cè)囼?yàn)):含生物素、組氨酸鼠傷寒沙門(mén)氏菌/哺乳動(dòng)物微粒體酶試驗(yàn)(Ames試驗(yàn))營(yíng)養(yǎng)瓊脂(鑒定菌株特性)氨芐青霉素平皿(鑒定R因子):含V-B液、葡萄糖、生物素、組氨酸、氨芐青霉素組氨酸/生物素平皿(鑒定His):含V-B液、葡萄糖、生物素、組氨酸Master平板(短期保存菌種):含V-B液、葡萄糖、生物素、組氨酸、氨芐青霉素鼠傷寒沙門(mén)氏菌/哺乳動(dòng)物微粒體酶試驗(yàn)(Ames試驗(yàn))試驗(yàn)方法:紙片點(diǎn)試法:定性試驗(yàn)結(jié)果評(píng)價(jià):如果僅在平板上出現(xiàn)少量的散的菌落認(rèn)為是陰性致突變物。如果浸有受試物的紙片周?chē)L(zhǎng)出較多密集的回變菌落與空白對(duì)照有明顯區(qū)別者,可判定該受試物為陽(yáng)性致突變物紙片周?chē)刈兙鋽?shù)<20,為“-”紙片周?chē)刈兙鋽?shù)<100,為“+”紙片周?chē)刈兙鋽?shù)<200,為“++”紙片周?chē)刈兙鋽?shù)<500,為“+++”紙片周?chē)刈兙鋽?shù)>500,為“++++”鼠傷寒沙門(mén)氏菌/哺乳動(dòng)物微粒體酶試驗(yàn)(Ames試驗(yàn))平皿滲入法:定量試驗(yàn)結(jié)果評(píng)價(jià):陽(yáng)性結(jié)果的判斷:滲入試驗(yàn)必須同時(shí)獲得下列結(jié)果,才能確定測(cè)試物為陽(yáng)性致突變物背景菌落生長(zhǎng)良好測(cè)試皿回變菌落數(shù)比對(duì)照皿回變菌落數(shù)增加2倍以上有劑量反應(yīng)關(guān)系試驗(yàn)結(jié)果有重現(xiàn)性鼠傷寒沙門(mén)氏菌/哺乳動(dòng)物微粒體酶試驗(yàn)(Ames試驗(yàn))陰性結(jié)果的判斷:滲入試驗(yàn)必須同時(shí)獲得下列結(jié)果,才能確定測(cè)試物為陰性致突變物對(duì)于純化學(xué)受試物,當(dāng)試驗(yàn)濃度達(dá)500μg/皿(或?qū)y(cè)試菌株最大無(wú)抑制用劑量)仍未見(jiàn)陽(yáng)性結(jié)果者,±S-9試驗(yàn)結(jié)果陰性不同菌株試驗(yàn)結(jié)果均為陰性重復(fù)檢驗(yàn)也均為陰性鼠傷寒沙門(mén)氏菌/哺乳動(dòng)物微粒體酶試驗(yàn)(Ames試驗(yàn))注意事項(xiàng)無(wú)菌操作。本試驗(yàn)全部操作必須嚴(yán)格無(wú)菌,所使用的溶液、培養(yǎng)基、器材等必須經(jīng)過(guò)滅菌,以防其它細(xì)菌或霉菌污染測(cè)試菌株的菌液必須是新培養(yǎng)的新鮮菌液,每ml活菌數(shù)不得少于2×108個(gè)。菌株在使用前應(yīng)進(jìn)行鑒定試驗(yàn)中所用的陽(yáng)性對(duì)照物對(duì)人體有害,操作時(shí),應(yīng)加強(qiáng)個(gè)人防護(hù)應(yīng)有良好的、具通風(fēng)換氣設(shè)備的實(shí)驗(yàn)室鼠傷寒沙門(mén)氏菌/哺乳動(dòng)物微粒體酶試驗(yàn)(Ames試驗(yàn))注意事項(xiàng)一切帶有測(cè)試菌的器皿,用后立即高壓滅菌,若來(lái)不及滅菌則放在加蓋容器內(nèi),嚴(yán)防任何小動(dòng)物特別是老鼠接觸所用有機(jī)溶液必須重新蒸餾。低溫蒸餾必須用水浴及專(zhuān)用蒸餾器,并在通風(fēng)柜內(nèi)進(jìn)行,嚴(yán)防明火接觸,以免發(fā)生火災(zāi)使用的蒸餾水必須是重蒸水。配試劑及培養(yǎng)基要用新蒸的蒸餾水,保證一切溶劑無(wú)致突變物污染。所有器皿最后也應(yīng)用新蒸出的蒸餾水洗凈發(fā)光細(xì)菌試驗(yàn)原理:發(fā)光細(xì)菌的自發(fā)暗變異株與致突變物接觸后,可恢復(fù)一定強(qiáng)度的發(fā)光能力。應(yīng)用與評(píng)價(jià):與Ames試驗(yàn)檢測(cè)遺傳毒性物質(zhì)所反應(yīng)的遺傳毒性水平具有較好的一致性;美國(guó)Microbics公司標(biāo)準(zhǔn)化方法“Mutatox”發(fā)光細(xì)菌試驗(yàn)方法:步驟:菌株復(fù)蘇→增菌→分裝→20℃振蕩24h→開(kāi)始測(cè)定發(fā)光強(qiáng)度(每隔3~4h)結(jié)果判定:待測(cè)樣品管發(fā)光強(qiáng)度是對(duì)照管3倍為陽(yáng)性結(jié)果;樣品管5個(gè)平行系列中陽(yáng)性結(jié)果≥3,待測(cè)物具致突變性;不足3個(gè)為可疑;無(wú)陽(yáng)性結(jié)果可認(rèn)為不具有致突變性其他基因突變?cè)囼?yàn)營(yíng)養(yǎng)缺陷型菌株回復(fù)突變?cè)囼?yàn):類(lèi)似于Ames試驗(yàn)細(xì)菌的正向突變?cè)囼?yàn):正向突變比回復(fù)突變的DNA有更多位點(diǎn)可以發(fā)生突變,可以檢測(cè)更為廣泛的化合物粗糙脈孢菌的正向突變?cè)囼?yàn):真核真菌,用于檢測(cè)基因的正向和回復(fù)突變構(gòu)巢曲霉的突變?cè)囼?yàn):第二節(jié)DNA損傷修復(fù)試驗(yàn)SOS顯色試驗(yàn)SOS修復(fù):“易錯(cuò)性DNA修復(fù)”,靠這種修復(fù)形成的DNA聚合酶由于識(shí)別堿基的精確性低,易造成復(fù)制的差錯(cuò),進(jìn)而引起突變?cè)恚褐峦蛔円蛩刈饔糜贒NA產(chǎn)生的某些損傷可誘導(dǎo)細(xì)菌SOS修復(fù)系統(tǒng)的反應(yīng),通過(guò)檢測(cè)SOS修復(fù)的能力來(lái)查明理化因素是否具有致突變、致癌的特性;可用特定菌株分解特定物質(zhì)產(chǎn)生色素來(lái)反應(yīng)其中酶的合成水平∮β-半乳糖苷酶分解Xgal(5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-半乳糖苷)和β-ONPG(鄰硝基苯-β-D-半乳糖苷),分別產(chǎn)生藍(lán)色不溶性色素和黃色可溶性色素SOS顯色試驗(yàn)方法:檢測(cè)細(xì)菌細(xì)胞原發(fā)直接的SOS反應(yīng),即用產(chǎn)色底物來(lái)監(jiān)測(cè)大腸桿菌SOS修復(fù)反應(yīng);紙片法定性,液體法定量應(yīng)用與評(píng)價(jià):與Ames的敏感性、準(zhǔn)確性相當(dāng),且操作簡(jiǎn)單、快速、經(jīng)濟(jì)、方便、不受測(cè)試菌株存活數(shù)的影響;可將二者互為補(bǔ)充共同作為研究遺傳毒物的初篩試驗(yàn)聚合酶缺陷型菌株試驗(yàn)原理:多數(shù)致癌物質(zhì)可與DNA結(jié)合使之發(fā)生一定的改變和損傷,而微生物具有修復(fù)DNA的功能;將同一受試物作用于具有修復(fù)能力的野生型菌株和缺乏修復(fù)能力的變異株,則微生物的生長(zhǎng)可能出現(xiàn)差異;聚合酶缺陷型菌株DNA受損后即不能修復(fù),細(xì)菌無(wú)法生存聚合酶缺陷型菌株試驗(yàn)菌株:E.coli
P3478(polA-)和E.coli
W3110(polA+)方法:點(diǎn)試法比較抑菌圈或劃線(xiàn)接種帶應(yīng)用與評(píng)價(jià):只對(duì)具有直接致突變作用的烷化物較為敏感對(duì)需要代謝活化的化合物如芳香胺、多環(huán)烴等不敏感,加肝勻漿活化系統(tǒng)亦效果不佳在液體培養(yǎng)基中測(cè)定對(duì)某些原致癌物檢出率有所提高重組缺陷型菌株試驗(yàn)原理:利用檢驗(yàn)重組修復(fù)能力來(lái)判斷致突變性菌株:枯草芽孢桿菌重組缺陷型菌株-Bac.subtilis
M45(recA-)和對(duì)照菌株Bac.subtilis
H17(recA+)方法:點(diǎn)試法比較抑菌圈或劃線(xiàn)接種帶應(yīng)用與評(píng)價(jià):在無(wú)代謝活化條件下比Ames敏感在有代謝活化條件下檢出率比Ames低溶源性細(xì)菌試驗(yàn)原理:溶源性細(xì)菌細(xì)胞受到某些誘變劑作用時(shí),產(chǎn)生SOS修復(fù),使菌體內(nèi)原噬菌體活躍起來(lái),在菌體內(nèi)大量繁殖,使細(xì)菌發(fā)生裂解而釋放;在固體培養(yǎng)基上裂解非溶源性細(xì)菌形成噬菌斑菌株:溶源性E.coli
K12(λ)和非溶源性E.coli
K12(S)方法:將兩種菌液按一定比例同時(shí)接種于一個(gè)平板,放入受試物過(guò)夜培養(yǎng)觀(guān)察應(yīng)用與評(píng)價(jià):可用于測(cè)定復(fù)雜混合物的潛在遺傳毒性第三節(jié)DNA重組試驗(yàn)釀酒酵母的有絲分裂基因轉(zhuǎn)變可測(cè)定致突變物質(zhì)所致的缺陷型等位基因的轉(zhuǎn)變異點(diǎn)等位基因二倍體的酵母菌株在其同一基因座位有兩個(gè)不同的缺陷型等位基因,其存在導(dǎo)致一定的營(yíng)養(yǎng)要求在致突變物損傷DNA,導(dǎo)致整個(gè)基因組的有絲分裂重組增強(qiáng),基因轉(zhuǎn)變隨之發(fā)生,一個(gè)突變型整段轉(zhuǎn)移取代另一突變型等位基因中有缺陷的核苷酸順序,將其中一個(gè)基因恢復(fù)成野生型等位基因第四節(jié)微生物致突變?cè)囼?yàn)與致癌物的確定ICPEMC于1983年提出致突變?cè)囼?yàn)的遺傳學(xué)終點(diǎn)分為5類(lèi)DNA完整性的改變DNA重排或交換DNA堿基序列改變?nèi)旧w完整性改變?nèi)旧w分離改變目前沒(méi)有一種致突變?cè)囼?yàn)?zāi)芎w所有的遺傳學(xué)終點(diǎn)。ICPEMC認(rèn)為需選用一組試驗(yàn)配套進(jìn)行檢測(cè),包括5種遺傳學(xué)終點(diǎn)。如選用Ames試驗(yàn)、微核試驗(yàn)、枯草桿菌DNA修復(fù)試驗(yàn)和外周血淋巴細(xì)胞姊妹染色單體互換(SCE)試驗(yàn)4個(gè)項(xiàng)目即可滿(mǎn)足要求第十九章微生物監(jiān)測(cè)技術(shù)的新發(fā)展第一節(jié)分子生物學(xué)技術(shù)在環(huán)境微生物監(jiān)測(cè)中的應(yīng)用第二節(jié)微生物傳感器在環(huán)境監(jiān)測(cè)中的應(yīng)用第一節(jié)分子生物學(xué)技術(shù)在環(huán)境微生物監(jiān)測(cè)中的應(yīng)用分子生物學(xué)技術(shù)與環(huán)境微生物的分類(lèi)、鑒定、監(jiān)測(cè)傳統(tǒng)方法難以及時(shí)動(dòng)態(tài)監(jiān)測(cè),實(shí)驗(yàn)室培養(yǎng)使其偏離原生境,甚至改變可能基因組合多聚酶鏈反應(yīng)核酸雜交技術(shù)核酸多態(tài)性技術(shù)rRNA、rDNA序列分析基因芯片技術(shù)微生物醌指紋法多聚酶鏈反應(yīng)(PCR)試驗(yàn)原理:模擬天然DNA復(fù)制過(guò)程,在體外擴(kuò)增特異性DNA片段基本要素:模板、引物、原料、DNA聚合酶應(yīng)用:快速、靈敏、簡(jiǎn)便、特異產(chǎn)物可用凝膠電泳定性定量,也可進(jìn)行克隆、轉(zhuǎn)化或測(cè)序目前用于環(huán)境細(xì)菌、毒素、病毒及其他微生物的檢測(cè)多聚酶鏈反應(yīng)(PCR)試驗(yàn)方法模板DNA變性:90~95℃模板DNA分子與引物結(jié)合:45~72℃引物的延伸:72℃上述變性-復(fù)性-延伸稱(chēng)為一個(gè)PCR循環(huán),DNA擴(kuò)增量呈指數(shù)上升實(shí)際反應(yīng)中因引物量減少、原料及酶濃度改變、終產(chǎn)物反饋抑制等原因不能達(dá)到理論值多聚酶鏈反應(yīng)(PCR)核酸雜交技術(shù)探針:是能與特定核苷酸序列互補(bǔ)、已經(jīng)標(biāo)記的DNA(或RNA
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