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生化實(shí)驗(yàn)電泳電泳技術(shù)是生物化學(xué)研究中常用的分離和分析方法,用于分離和鑒定生物大分子,例如蛋白質(zhì)和核酸。實(shí)驗(yàn)?zāi)康恼莆针娪炯夹g(shù)了解電泳的基本原理和操作流程,熟練掌握蛋白質(zhì)電泳技術(shù)。蛋白質(zhì)分離鑒定通過(guò)電泳技術(shù)分離蛋白質(zhì),分析蛋白質(zhì)的分子量、純度和亞型。生化實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)為后續(xù)生化實(shí)驗(yàn)和研究奠定基礎(chǔ),拓展生化實(shí)驗(yàn)技能。實(shí)驗(yàn)原理1電荷差異利用帶電分子在電場(chǎng)中的遷移速度不同,從而實(shí)現(xiàn)分離不同分子。2分子大小較小的分子在凝膠中遷移速度更快,而較大的分子則遷移速度較慢。3分子形狀分子形狀也會(huì)影響其遷移速度,例如球形分子遷移速度更快,而線性分子則遷移速度較慢。電泳基本概念電泳分離原理電泳利用帶電粒子在電場(chǎng)中的遷移速度不同,實(shí)現(xiàn)物質(zhì)分離的技術(shù)。電泳設(shè)備電泳裝置通常包括電源、電泳槽、凝膠、緩沖液等。電泳應(yīng)用電泳廣泛用于蛋白質(zhì)、核酸等生物大分子的分離、鑒定和定量分析。電泳儀器組成電泳儀器是進(jìn)行電泳實(shí)驗(yàn)的關(guān)鍵設(shè)備,主要包括電源、電泳槽和檢測(cè)系統(tǒng)。電源用于提供穩(wěn)定的直流電,電泳槽是進(jìn)行電泳分離的容器,檢測(cè)系統(tǒng)則用于對(duì)分離后的樣品進(jìn)行分析。樣品預(yù)處理1樣品溶解根據(jù)蛋白質(zhì)性質(zhì)選擇合適的溶解緩沖液。2樣品離心去除不溶性物質(zhì)和雜質(zhì)。3樣品定量使用BCA或Bradford法測(cè)定蛋白質(zhì)濃度。4樣品稀釋將蛋白質(zhì)濃度調(diào)整至合適范圍。樣品預(yù)處理是電泳實(shí)驗(yàn)中至關(guān)重要的步驟,它直接影響著電泳結(jié)果的準(zhǔn)確性和可靠性。樣品預(yù)處理的目的是去除樣品中的雜質(zhì),確保樣品在電泳過(guò)程中能夠正常遷移,并獲得清晰的電泳圖譜。填充樣品池準(zhǔn)備樣品池確保樣品池清潔干燥,無(wú)殘留物質(zhì)影響電泳。添加樣品緩沖液用移液器將樣品緩沖液小心地加入樣品池,避免氣泡產(chǎn)生。添加樣品使用移液器將已處理好的樣品小心地加入樣品池中,確保樣品均勻分布。注意加樣位置根據(jù)電泳類型和實(shí)驗(yàn)要求,將樣品加在預(yù)定的位置,避免影響分離效果。加樣注意事項(xiàng)加樣體積根據(jù)電泳類型和樣品濃度,選擇合適的加樣體積。過(guò)多的樣品會(huì)導(dǎo)致樣品泳道過(guò)寬,影響分離效果。過(guò)少的樣品會(huì)導(dǎo)致樣品泳道過(guò)窄,影響檢測(cè)結(jié)果。加樣速度加樣時(shí)應(yīng)緩慢地將樣品加到樣品池中,避免樣品溢出到相鄰泳道,影響電泳分離效果。電泳條件設(shè)置電壓設(shè)置根據(jù)不同電泳類型和樣品特性選擇合適的電壓,避免過(guò)高電壓導(dǎo)致樣品過(guò)快遷移或電泳液過(guò)熱。時(shí)間設(shè)置根據(jù)電泳類型、樣品遷移速度和電泳儀性能確定最佳電泳時(shí)間,確保樣品充分分離。溫度控制保持合適的電泳液溫度,防止電泳液過(guò)熱導(dǎo)致樣品降解或變性。電泳液選擇根據(jù)實(shí)驗(yàn)?zāi)康倪x擇合適濃度的電泳液,例如Tris-Glycine電泳液適用于蛋白質(zhì)分離。電泳過(guò)程監(jiān)控1溫度監(jiān)控電泳過(guò)程中,溫度會(huì)影響蛋白遷移速度。應(yīng)使用溫度計(jì)監(jiān)控溫度,確保溫度保持在最佳范圍內(nèi)。2電流監(jiān)控電泳儀一般會(huì)顯示電流值。監(jiān)控電流值可以判斷電泳是否正常進(jìn)行。電流過(guò)高或過(guò)低都可能導(dǎo)致電泳失敗。3緩沖液監(jiān)控應(yīng)定期檢查緩沖液的液面,確保緩沖液液面足夠高,避免電泳過(guò)程中緩沖液液面下降導(dǎo)致電泳失敗。電泳結(jié)果判斷條帶清晰度觀察電泳結(jié)果時(shí),條帶清晰度很重要。清晰的條帶代表蛋白質(zhì)分離良好,便于后續(xù)分析。條帶位置根據(jù)條帶位置,可以推測(cè)蛋白質(zhì)的分子量。通常,分子量較小的蛋白質(zhì)遷移距離更遠(yuǎn)。條帶數(shù)量電泳條帶數(shù)量反映了樣品中蛋白質(zhì)組成的復(fù)雜程度,可用于判斷蛋白質(zhì)是否存在降解或修飾。條帶強(qiáng)度條帶強(qiáng)度與蛋白質(zhì)濃度相關(guān),可以用來(lái)比較不同樣品中蛋白質(zhì)的含量差異。電泳圖譜分析電泳完成后,需要對(duì)電泳結(jié)果進(jìn)行分析,判斷實(shí)驗(yàn)結(jié)果是否符合預(yù)期,并得出實(shí)驗(yàn)結(jié)論。通過(guò)分析電泳圖譜,可以觀察蛋白質(zhì)的遷移率,判斷蛋白質(zhì)的大小和純度。還可以根據(jù)電泳圖譜的條帶數(shù),判斷蛋白質(zhì)的種類和數(shù)量。電泳圖譜分析需要根據(jù)實(shí)驗(yàn)?zāi)康暮驮O(shè)計(jì)選擇合適的分析方法,并對(duì)結(jié)果進(jìn)行科學(xué)的解釋。不同分子量標(biāo)準(zhǔn)曲線使用不同分子量的蛋白質(zhì)混合物作為標(biāo)準(zhǔn)品,進(jìn)行電泳,并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。標(biāo)準(zhǔn)曲線可以用于確定未知蛋白的分子量。1分子量每個(gè)標(biāo)準(zhǔn)品都有已知的分子量。2遷移距離電泳后,每個(gè)標(biāo)準(zhǔn)品會(huì)遷移到特定的距離。3繪制以分子量為橫坐標(biāo),遷移距離為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。4確定通過(guò)未知蛋白的遷移距離,利用標(biāo)準(zhǔn)曲線確定其分子量。亞型分離分析亞型分離通過(guò)電泳技術(shù)將蛋白質(zhì)混合物分離成不同的亞型,根據(jù)分子量進(jìn)行識(shí)別和區(qū)分。蛋白質(zhì)亞型不同亞型在電泳圖譜上呈現(xiàn)不同的遷移位置,可用于分析蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)、功能以及修飾狀態(tài)。免疫印跡法使用抗體識(shí)別特定亞型,通過(guò)檢測(cè)抗體與蛋白結(jié)合情況,可進(jìn)一步確認(rèn)亞型的存在和豐度。糖蛋白分析步驟糖蛋白是指蛋白質(zhì)分子中含有糖基的蛋白質(zhì),在生物體內(nèi)發(fā)揮著重要的作用。1樣品制備首先需要對(duì)樣品進(jìn)行預(yù)處理,去除雜質(zhì),提取糖蛋白2電泳分離通過(guò)SDS電泳將糖蛋白按照分子量大小進(jìn)行分離3染色顯色用考馬斯亮藍(lán)染色或銀染等方法將分離的糖蛋白顯色4糖基化分析通過(guò)糖基化分析方法確定糖蛋白的糖基化程度糖蛋白的糖基化分析方法包括凝集素親和層析、酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定(ELISA)等。親和層析原理利用蛋白質(zhì)之間的相互作用,如抗原抗體、酶底物、激素受體等,進(jìn)行分離純化。將特定配體固定在層析柱上,形成親和介質(zhì),用于特異性捕獲目標(biāo)蛋白。通過(guò)改變洗脫液的條件,例如增加鹽濃度或改變pH值,使目標(biāo)蛋白從親和介質(zhì)上解離下來(lái),從而實(shí)現(xiàn)純化。親和層析方法操作簡(jiǎn)便,分離效率高,廣泛應(yīng)用于生物制藥、診斷試劑等領(lǐng)域。免疫親和層析抗體與抗原的特異性結(jié)合免疫親和層析利用抗體和抗原之間的特異性結(jié)合來(lái)分離和純化蛋白質(zhì)。抗體與目標(biāo)蛋白質(zhì)結(jié)合,而其他蛋白質(zhì)被洗脫掉。最后,通過(guò)洗脫液將目標(biāo)蛋白質(zhì)從抗體上分離出來(lái)。應(yīng)用于多種領(lǐng)域免疫親和層析廣泛應(yīng)用于生物化學(xué)、醫(yī)學(xué)、制藥等領(lǐng)域,可以用來(lái)分離純化抗體、酶、激素、細(xì)胞因子等生物分子。層析柱裝填步驟準(zhǔn)備工作確保層析柱已徹底清洗,并確保層析柱底部已關(guān)閉,且過(guò)濾裝置已安裝到位,并做好樣品收集工作準(zhǔn)備。裝填介質(zhì)將層析介質(zhì)緩慢倒入層析柱中,并輕輕敲打柱壁,確保介質(zhì)均勻分布,避免氣泡產(chǎn)生。平衡層析柱用平衡緩沖液洗滌層析柱,并確保層析介質(zhì)被完全平衡,通常需要至少5個(gè)柱體積的緩沖液洗滌。確認(rèn)平衡通過(guò)測(cè)試緩沖液的pH值或電導(dǎo)率確認(rèn)層析柱已平衡,可以確保層析柱在后續(xù)實(shí)驗(yàn)中正常運(yùn)行。層析樣品上樣1準(zhǔn)備樣品確保樣品已充分溶解并過(guò)濾去除雜質(zhì)。2連接層析柱將層析柱連接到泵和檢測(cè)器,并確保連接牢固。3上樣使用注射器或泵將樣品緩慢注入層析柱。4清洗層析柱用適量洗脫液沖洗層析柱,以去除殘留的樣品。上樣時(shí)應(yīng)注意,樣品體積要適宜,不要超過(guò)層析柱的容量。上樣速度要緩慢,避免樣品在柱中形成氣泡。層析條件設(shè)置1流速流速影響分離效果,過(guò)快會(huì)導(dǎo)致分離不完全,過(guò)慢則延長(zhǎng)實(shí)驗(yàn)時(shí)間。2洗脫液選擇合適的洗脫液濃度和梯度,使目標(biāo)蛋白有效洗脫,避免其他雜蛋白干擾。3溫度溫度影響蛋白穩(wěn)定性和活性,需根據(jù)目標(biāo)蛋白特性選擇合適的溫度。4時(shí)間根據(jù)層析柱大小和流速,設(shè)定合適的時(shí)間,確保目標(biāo)蛋白完全洗脫。層析過(guò)程監(jiān)控1溶液流速使用恒流泵控制流速2收集餾分定期收集并標(biāo)記不同餾分3紫外監(jiān)測(cè)實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)洗脫液的紫外吸收4峰值分析分析洗脫曲線,確定目標(biāo)蛋白位置層析過(guò)程監(jiān)控是保證實(shí)驗(yàn)結(jié)果準(zhǔn)確性的關(guān)鍵環(huán)節(jié),通過(guò)實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè),可以及時(shí)調(diào)整操作,保證目標(biāo)蛋白的有效分離和收集。層析結(jié)果分析峰值位置根據(jù)峰值位置確定目標(biāo)蛋白的洗脫體積,并根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線確定目標(biāo)蛋白的分子量。峰面積峰面積反映了目標(biāo)蛋白的含量,可以用來(lái)計(jì)算目標(biāo)蛋白的純度和回收率。峰形狀峰形狀可以反映目標(biāo)蛋白的純度,尖銳的峰形代表純度高,而寬闊的峰形則可能存在其他雜蛋白。峰分離根據(jù)不同峰之間的分離程度,可以判斷目標(biāo)蛋白是否被完全分離,以及是否需要進(jìn)一步純化。蛋白質(zhì)含量測(cè)定方法比色法比色法是利用蛋白質(zhì)與某些試劑反應(yīng)產(chǎn)生有色物質(zhì),通過(guò)比色計(jì)或分光光度計(jì)測(cè)定其顏色深淺來(lái)確定蛋白質(zhì)含量。凱氏定氮法凱氏定氮法是利用蛋白質(zhì)中氮含量穩(wěn)定的特點(diǎn),通過(guò)測(cè)定樣品中的氮含量來(lái)推算蛋白質(zhì)含量。紫外吸收法紫外吸收法利用蛋白質(zhì)在特定波長(zhǎng)下具有最大吸收的特點(diǎn),通過(guò)測(cè)定樣品在特定波長(zhǎng)下的吸光度來(lái)確定蛋白質(zhì)含量。Bradford法原理染料結(jié)合原理Bradford法利用CoomassieBrilliantBlueG-250染料與蛋白質(zhì)結(jié)合的原理,在酸性條件下,該染料與蛋白質(zhì)結(jié)合后,其最大吸收波長(zhǎng)從465nm發(fā)生顯著變化,顏色也從棕褐色變?yōu)樗{(lán)色,在一定范圍內(nèi),溶液的顏色深淺與蛋白質(zhì)濃度成正比。標(biāo)準(zhǔn)曲線通過(guò)測(cè)定已知濃度蛋白質(zhì)溶液的吸光度值,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,可根據(jù)未知樣品的吸光度值,從標(biāo)準(zhǔn)曲線上查得其蛋白質(zhì)濃度。試劑盒市場(chǎng)上有現(xiàn)成的Bradford試劑盒,可直接用于蛋白質(zhì)含量測(cè)定,操作簡(jiǎn)單、準(zhǔn)確性高,適用于多種類型的蛋白質(zhì)樣品。Bradford法操作步驟1準(zhǔn)備工作準(zhǔn)備Bradford試劑、標(biāo)準(zhǔn)蛋白溶液、待測(cè)樣品、比色皿和分光光度計(jì)。2標(biāo)準(zhǔn)曲線制作用標(biāo)準(zhǔn)蛋白溶液配制一系列已知濃度的蛋白質(zhì)溶液,并加入Bradford試劑顯色后,使用分光光度計(jì)測(cè)定其吸光度,以吸光度值對(duì)對(duì)應(yīng)蛋白質(zhì)濃度繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。3待測(cè)樣品測(cè)定將待測(cè)樣品加入Bradford試劑顯色后,使用分光光度計(jì)測(cè)定其吸光度,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線查得相應(yīng)的蛋白質(zhì)濃度。標(biāo)準(zhǔn)曲線制作1配置標(biāo)準(zhǔn)品溶液根據(jù)蛋白標(biāo)準(zhǔn)品濃度,稀釋成一系列已知濃度的標(biāo)準(zhǔn)品溶液。2加入標(biāo)準(zhǔn)品和試劑分別取相同體積的標(biāo)準(zhǔn)品溶液和Bradford試劑,進(jìn)行反應(yīng)。3測(cè)定吸光度利用分光光度計(jì),在595nm波長(zhǎng)下測(cè)定各標(biāo)準(zhǔn)品溶液的吸光度。4繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線將標(biāo)準(zhǔn)品濃度作為橫坐標(biāo),吸光度作為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。標(biāo)準(zhǔn)曲線是將已知濃度的蛋白溶液的吸光度值與對(duì)應(yīng)濃度繪制的曲線圖。通過(guò)標(biāo)準(zhǔn)曲線,可以根據(jù)未知樣品的吸光度值來(lái)推算其蛋白質(zhì)濃度。未知樣品測(cè)定稀釋樣品根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線范圍,將未知樣品進(jìn)行適當(dāng)稀釋,確保樣品濃度在標(biāo)準(zhǔn)曲線范圍內(nèi)。上樣測(cè)試將稀釋后的未知樣品加入比色杯中,并用Bradford試劑進(jìn)行反應(yīng),測(cè)定其吸光度值。讀取數(shù)據(jù)利用分光光度計(jì)測(cè)量反應(yīng)液的吸光度值,并記錄數(shù)據(jù)。確定濃度根據(jù)測(cè)得的吸光度值,在標(biāo)準(zhǔn)曲線上找到對(duì)應(yīng)的蛋白質(zhì)濃度。計(jì)算結(jié)果將測(cè)得的蛋白質(zhì)濃度乘以樣品稀釋倍數(shù),得到未知樣品中蛋白質(zhì)的實(shí)際濃度。結(jié)果計(jì)算與分析數(shù)據(jù)記錄仔細(xì)記錄實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù),包括樣品名稱、濃度、電泳條件等。電泳結(jié)果分析根據(jù)電泳圖譜,分析蛋白質(zhì)大小、遷移率、純度等信息。統(tǒng)計(jì)分析運(yùn)用統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,得出實(shí)驗(yàn)結(jié)論并評(píng)估其可靠性。注意事項(xiàng)與問(wèn)題解答實(shí)驗(yàn)過(guò)程中,需要注意以下事項(xiàng):注意操作規(guī)范,避免污染,防止樣本損失。仔細(xì)觀察電泳過(guò)程,及時(shí)發(fā)現(xiàn)問(wèn)題并處理。電泳結(jié)束后,及時(shí)分析結(jié)果,并進(jìn)行相應(yīng)的記錄和整理。在電泳過(guò)程中,如果出現(xiàn)以下問(wèn)題,可以參考以下解決方案:1.電泳條帶模糊不清可能原因:樣本濃度過(guò)高,電泳時(shí)間過(guò)長(zhǎng),電泳溫度過(guò)高,電泳緩沖液濃度過(guò)低等。解決方案:降低樣本濃度,縮短電泳時(shí)間,降低電泳溫度,提高電泳緩沖液濃度等。2.電泳條帶跑偏可能原因:加樣不均,電泳緩沖液濃度不一致,電泳槽漏電等。解決方案:重新加樣,更換電泳緩沖液,檢查電泳槽等。實(shí)驗(yàn)總結(jié)實(shí)驗(yàn)結(jié)果總結(jié)實(shí)驗(yàn)過(guò)程中觀察到的現(xiàn)象,包括電泳帶的位置、大小、清晰度等,并進(jìn)行分析解釋。分析實(shí)驗(yàn)結(jié)果,驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)?zāi)康?/p>

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