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文檔簡(jiǎn)介
1、從組織器官分離細(xì)胞一、非酶分離細(xì)胞方法(一) 機(jī)械分離法 適用于較柔軟的組織,如腦、肝、脾、淋巴結(jié)、 胸腺、胚胎組織、腫瘤組織等。1. 組織研磨法:操作方法:(1) 取消毒的碟皿(直徑58cm或略大),放入少許Hanks液或PBS;(2) 將采取的小塊組織先用PBS漂洗去組織表面的血污,剪成撕去附帶的其它組織,如脂肪或多余的纖維、包膜等,切成5mm左右大小的小塊,放入碟皿內(nèi) Hanks液或PBS中;(3) 用鋒利手術(shù)刀或眼科剪將組織剪切成 1mm左右的碎組織塊;(4) 將碎組織及Hanks液或PBS置于較松的組織研磨勻漿器內(nèi), 用手緩慢研磨(可反復(fù)幾次),形成散在細(xì)胞的勻漿。(5) 將組織勻漿
2、經(jīng)40目或100目不銹鋼網(wǎng)過濾去除纖維組織、血 管及較大的凝塊。過濾時(shí)可用 Hanks液或PBS沖中洗;(6) 將過濾的細(xì)胞勻漿懸液直立靜置片刻使較大的組織塊及紅細(xì)胞先沉淀,取上部細(xì)胞懸液,以Hanks液或PBS洗滌,離心,收集細(xì) 胞;(7) 計(jì)算活細(xì)胞率,計(jì)數(shù)細(xì)胞,制備成所需濃度的細(xì)胞懸液。注意:組織研磨勻漿器不能太緊,研磨時(shí)應(yīng)緩慢,否則易使細(xì)胞 損傷、破碎、或增高死亡細(xì)胞率。2. 不銹鋼網(wǎng)擠壓法:操作方法:(1) 將切取的組織塊以PBS漂洗去表面血污,切成510mm啲組 織塊;(2) 在消毒碟皿內(nèi)放少許 Hanks液或PBS把40目100目的不 銹鋼網(wǎng)放入Hanks液或PBS中,將組織塊置
3、網(wǎng)上,用消毒注射器芯或 試管的底端輕輕壓擠組織,使其穿過網(wǎng)眼入Hanks液或PBS中。同時(shí), 用Hanks液或PBS沖洗網(wǎng)上的組織。最后,將網(wǎng)上剩余的纖維包膜或 血管等棄去 ;(3) 收集Hanks液或PBS液中的細(xì)胞懸液顯微鏡檢查,如仍有較 多的小組織塊,可用更細(xì)的不銹鋼網(wǎng)(20卩m)重復(fù)壓擠1次;(4) 收集Hanks液或PBS細(xì)胞懸液。1000r/min離心片刻使殘留 較大組織碎塊及紅細(xì)胞沉淀,吸取未沉淀的細(xì)胞懸液。再以Hanks液 或PBS洗滌,離心,收集1次;(5) 計(jì)數(shù)活細(xì)胞率及計(jì)算細(xì)胞數(shù),制備所需濃度的細(xì)胞懸液。 注意:如經(jīng) 1 次壓擠尚有較多的碎組織塊,也可用消毒注射器,帶 6
4、 號(hào)注射針頭, 將細(xì)胞及碎組織從注射器內(nèi)經(jīng)針頭壓出, 使細(xì)胞再 次分散。3. 吹打分離法: 此法只適用于很松軟的組織, 如從腦組織分離膠 質(zhì)細(xì)胞。操作方法:(1) 取小塊腦組織,剝離腦膜,血管等纖維組織后,用 Hanks 液 漂洗 2 次;(2) 在消毒碟皿中放約2 3倍于腦組織的Hanks液,將腦組織置 Hanks液中,用滴管吸取Hanks液反復(fù)吹打腦組織使成懸液;(3) 將組織懸液經(jīng) 40 目尼龍網(wǎng)過濾后,移入試管中直立靜放 510 分鐘,較大的組織碎塊及紅細(xì)胞下沉,脂肪及碎細(xì)胞片等漂浮在 液體上部。吸取中間部分的細(xì)胞懸液,并如此反復(fù)23次;(4) 取少許細(xì)胞懸液顯微鏡檢查, 如已制成較多
5、的散在細(xì)胞懸液, 可計(jì)數(shù)活細(xì)胞率。計(jì)數(shù)細(xì)胞用Hanks液或適當(dāng)?shù)呐囵B(yǎng)液制備成所需濃 度的細(xì)胞懸液。(二) EDTA分離法 EDTA(ethyle nediami netetraaceticacid) , 是一種螯合劑(chelatingagent),能與組織內(nèi)的Ca2+ Mg2離子螯 合而使細(xì)胞分離。EDTA常用PBS等配成0.02%的工作液。其作用溫和,在一般情況 下對(duì)細(xì)胞損傷較小, 但分離效果并不很高。 可用于分離一些胚胎組織 或肝臟灌流,不過較少單獨(dú)使用,常和其它一些酶 (如 0.25%胰蛋白 酶)混合使用(以1 : 1或2 : 1混合);但不要與膠原酶混合使用,因這 種酶依賴Ca2+和
6、Mg2+與EDTA昆合后可使膠原酶的消化作用嚴(yán)重障 礙或失效。 與胰蛋白酶混合可用于分離培養(yǎng)細(xì)胞進(jìn)行傳代培養(yǎng)。 其方 法是將培養(yǎng)細(xì)胞的培養(yǎng)液吸去后,加入 0.02%EDTA< 0.25%胰蛋白酶 的混合液,以蓋滿細(xì)胞為度,處理 310分鐘,注意不能消化過度使 細(xì)胞收縮脫落。吸出消化液,立即用Hanks液洗滌23次以洗去EDTA 最后加入培養(yǎng)液,用滴管吹打使細(xì)胞脫落形成細(xì)胞懸液。使用EDTA應(yīng)注意分離時(shí)間不能過長。因其對(duì)細(xì)胞的線粒體可有 損傷,而且細(xì)胞長時(shí)間處于無 Ca2+環(huán)境下(被EDTA螯合)則可使細(xì)胞 內(nèi)K+降低;同時(shí)呼吸減弱也可造成細(xì)胞損害。(三) 其他非酶分離細(xì)胞方法甘氨酸(gl
7、ycine)也可用于分離細(xì)胞,如用含1mol/L甘氨酸與2mol/LEDTA的混合液分離海膽胚胎。雙 糖(disaccharides),如高張蔗糖、乳糖、麥芽糖等(常用0.5mol/L) 可分離細(xì)胞間的縫隙連接或緊密連接等。0.5%KOH勺稀堿溶液(pH9.3 左右)也可用于胚胎組織的分離。但如將pH恢復(fù)正常,則分散的細(xì)胞 又可再聚合。二、酶分離細(xì)胞技術(shù)可用于分離細(xì)胞的酶很多。蛋白水解酶類有胰蛋白酶(trypsin)、 膠原酶(collagenases)、彈性蛋白酶(elastase)、鏈霉蛋白酶 (pronase)、溶菌酶(lysozyme)、木瓜蛋白酶(papain)等。其它酶類 有透明質(zhì)
8、酸酶(hyaluronidase),脫氧核糖核酸酶(deoxyribo nuclease)等。這些酶各有優(yōu)缺點(diǎn),對(duì)細(xì)胞的損傷也各不 相同,所以對(duì)使用何種酶應(yīng)按實(shí)驗(yàn)要求加以選擇。比較常用的有胰蛋 白酶、膠原酶、鏈霉蛋白酶、透明質(zhì)酸酶等。胰蛋白酶適于消化間質(zhì)較少的組織,如胚胎組織、羊膜、上皮、 肝、腎等;對(duì)纖維性組織的消化能力較差。Ca2+ Mg2+寸其活性有抑 制作用,故配制時(shí)應(yīng)不含Ca2+或 Mg2+或與EDTA配伍使用。胰蛋白 酶的工作濃度為0.01%0.5%,常配成0.25%的工作液。室溫及37C 下消化比較恰當(dāng),4C時(shí)仍有緩慢的消化作用。最適工作 pH為89 左右。消化時(shí)間最短(如胚胎組
9、織)為2030分鐘,一般為3060分 鐘,低溫或低濃度時(shí)也可延長至 1218小時(shí)(過夜)。膠原酶適用于消化分離纖維組織,對(duì)上皮、肝、胰、腎及一些癌 組織的細(xì)胞分離也比較適用。它有很多類型,Sigma廠的產(chǎn)品有1V、忸、幻等型,分別適用于分離肝細(xì)胞、胰島、脂肪細(xì)胞或一 般纖維組織,應(yīng)按實(shí)驗(yàn)要求,按產(chǎn)品說明書選用。膠原酶與胰蛋白酶 不同,它必須在Ca2+及 Mg2+存在的條件下,才能較好地活化。常用 的濃度為100200U/ml(按說明書配制。一般產(chǎn)品>125U/mg,故 工作濃度常用0.05%0.1%,高純度膠原酶可為>1200U/mg或 10003000U/mg)。
10、該酶的作用緩慢,常需較長的消化時(shí)間。鏈霉蛋白酶為非特異性具有廣譜性質(zhì)的中性蛋白酶, 適于分離消 化道的粘膜上皮細(xì)胞及肝臟的 Kupffer細(xì)胞。其消化速度比胰蛋白酶 快。分離的消化道上皮存活率可高達(dá) 96%r右,較其它酶優(yōu)越。透明質(zhì)酸酶對(duì)間質(zhì)中含多量透明質(zhì)酸的組織比較適用,對(duì)熱穩(wěn) 定,工作pH較寬,常可與其它酶配合使用以增加消化分離細(xì)胞的效 果。(一)胰蛋白酶消化分離細(xì)胞方法操作方法:1. 在消毒碟皿中將組織剪切成 35mm左右的碎組織塊;2. 在小燒杯內(nèi)放入3050倍的0.25%胰蛋白酶,加入剪切碎的組織,在37C水浴或溫箱中消化3060分鐘,每隔5分鐘左右搖蕩1次( 用電磁攪拌器拌攪亦可
11、);3. 將消化的組織離心 1000r/min10 分鐘,吸去上清液,以 Hanks 液漂洗 2 3 分鐘,再離心,去上清,重復(fù) 3 次以盡量洗去胰蛋白酶 ;4. 用100卩m尼龍網(wǎng)或不銹鋼網(wǎng)過濾,去除未消化分離的碎組織 塊、纖維等 ;5. 再以 Hanks 液漂洗,收集細(xì)胞懸液 ;6. 計(jì)數(shù)活細(xì)胞百分率,計(jì)數(shù)細(xì)胞數(shù),用含 4%J、牛血清的PBS或 Hanks液制備所需濃度的細(xì)胞懸液(加小牛血清不僅可以作為穩(wěn)定劑, 抑制分散的細(xì)胞凝聚 ; 也可作為酶抑制劑,抑制與細(xì)胞表面結(jié)合的胰 蛋白酶的消化作用 )。( 二) 膠原酶消化分離細(xì)胞方法操作方法:1. 將切取的組織先用Hanks液或PBS洗凈粘附的血污。在碟皿內(nèi) 剪切成35mm3卒組織塊;2. 在小培養(yǎng)瓶內(nèi)加 45ml 培養(yǎng)液,放入數(shù)小塊組織碎塊,加入 等量 0.1%的膠原酶 (終濃度約為 100U/ml 或 0.05%), pH6.5;3.37 C溫箱內(nèi)消化448小時(shí)(不需搖蕩)。如消化緩
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