綠色熒光蛋白(GFP)基因的克隆和表達

1、綠色熒光蛋白(GFP)基因的克隆和表達背景知識綠色熒光蛋白（green fluorescent protein，GFP）是一類存在于包括水母、水螅和珊瑚等腔腸動物體內(nèi)的生物發(fā)光蛋白。當受到紫外或藍光激發(fā)時，GFP 發(fā)射綠色熒光。它產(chǎn)生熒光無需底物或輔因子發(fā)色團是其蛋白質(zhì)一級序列固有的。GFP 由3 個外顯子組成，長2.6kb；GFP 是由238 個氨基酸所組成的單體蛋白,相對分子質(zhì)量為27. 0kMr，其蛋白性質(zhì)十分穩(wěn)定，能耐受60處理。1996 年GFP 的晶體結(jié)構(gòu)被解出，蛋白質(zhì)中央是一個圓柱形水桶樣結(jié)構(gòu)，長420 nm，寬240 nm，由11 個圍繞中心螺旋的反平行折疊組成，熒光基團的形成

2、就是從這個螺旋開始的，桶的頂部由3 個短的垂直片段覆蓋，底部由一個短的垂直片段覆蓋，對熒光活性很重要的生色團則位于大空腔內(nèi)。發(fā)色團是由其蛋白質(zhì)內(nèi)部第65-67位的Ser-Tyr-Gly自身環(huán)化和氧化形成.1996 年GFP 的晶體結(jié)構(gòu)被解出，蛋白質(zhì)中央是一個圓柱形水桶樣結(jié)構(gòu)，長420 nm，寬240 nm，由11 個圍繞中心螺旋的反平行折疊組成，熒光基團的形成就是從這個螺旋開始的,桶的頂部由3 個短的垂直片段覆蓋，底部由一個短的垂直片段覆蓋，對熒光活性很重要的生色團則位于大空腔內(nèi)。實驗一 質(zhì)粒DNA的分離與純化一、實驗目的掌握一種最常用的質(zhì)粒DNA提取方法：堿裂解法。該法用于從小量培養(yǎng)物中抽提

3、質(zhì)粒DNA，比較方便、省時，提取的質(zhì)粒DNA質(zhì)量較高，可用于DNA的酶切、PCR甚至測序。二、基本原理質(zhì)粒是一類在細菌細胞內(nèi)發(fā)現(xiàn)的獨立于染色體外，能夠自主復制的穩(wěn)定的遺傳單位。迄今為止，從細菌中分離得到的質(zhì)粒都是環(huán)型雙鏈DNA分子，分子量范圍從1kb到200kb。質(zhì)粒DNA可持續(xù)穩(wěn)定地處于染色體外的游離狀態(tài)，但在一定條件下又會可逆地整合到寄主染色體上，隨著染色體的復制而復制，并通過細胞分裂傳遞到后代。在大多數(shù)情況下質(zhì)粒DNA復制中的酶體系和細菌染色體復制時所用的酶是相同的。有些質(zhì)粒復制受宿主細胞復制作用的嚴格限制，因此每個細胞中只含一個或幾個拷貝，稱為嚴謹型質(zhì)粒，有的質(zhì)粒的復制受宿主細胞的控制

4、不嚴，稱為松弛型質(zhì)粒，它們在每個細胞中的數(shù)目可達10-200個拷貝。當宿主細胞的蛋白質(zhì)合成受到抑制時（例如經(jīng)氯霉素處理），細菌染色體雖不再增加，但松弛型質(zhì)粒DNA可繼續(xù)被復制，以至每個細胞內(nèi)的拷貝數(shù)可以增至一千到幾千。質(zhì)粒具有一定的生物功能，它們往往帶有一些抗藥標記，當質(zhì)粒DNA用人為的方法轉(zhuǎn)化進細菌時，轉(zhuǎn)化后的細菌會表現(xiàn)出質(zhì)粒基因所具有的新的生物表現(xiàn)型，例如，把一個含有抗藥基因的質(zhì)粒轉(zhuǎn)入細菌后，原來無抗藥性的細菌則表現(xiàn)出抗藥的新表型。借助轉(zhuǎn)化菌獲得的新表型特征，可證實質(zhì)粒已轉(zhuǎn)入宿主細菌中，這樣就可以作為轉(zhuǎn)化菌的選擇性標記。質(zhì)粒作為基因克隆載體分子的重要的條件是獲得批量的純化的質(zhì)粒DNA分子。

5、目前已有許多方法可用于質(zhì)粒DNA的提取，它們都包括三個基本的步驟：細菌的生長和質(zhì)粒的擴增；菌體的收集裂解，質(zhì)粒DNA的分離；質(zhì)粒DNA的純化。1、 細菌的生長和質(zhì)粒的擴增從瓊脂培養(yǎng)基平板上挑取一個單菌落，接種到含適當抗生素的液體培養(yǎng)基中培養(yǎng)。對于松弛型質(zhì)粒（如pUC系列）來說，只要將培養(yǎng)物放到標準的LB或2YT培養(yǎng)基中生長到對數(shù)晚期，就可以大量提取質(zhì)粒，而不必選擇性地擴增質(zhì)粒DNA。但對于嚴謹型質(zhì)粒（如pBR322）來說，則需在得到部分生長的細菌培養(yǎng)物中加入氯霉素繼續(xù)培養(yǎng)若干小時，以便對質(zhì)粒進行選擇性擴增。2、菌體的收集、裂解和質(zhì)粒DNA的分離質(zhì)粒分離的基本原理是利用宿主菌（一般是大腸桿菌菌株

6、）DNA與質(zhì)粒DNA之間的兩種主要性質(zhì)差異：（1）大腸桿菌的染色體較一般的載體質(zhì)粒DNA大得多。（2）從細胞中提取得到的大腸桿菌DNA主體是變性的線性分子，而大多數(shù)質(zhì)粒DNA是共價閉合的環(huán)狀分子。這里主要介紹堿裂解法的基本原理：在細菌懸浮液中加入SDS（十二烷基硫酸鈉）和NaOH使菌體裂解（有時需要先使用溶菌酶水解細胞壁）。此處理可破壞堿基配對，故可使細菌的線狀染色體DNA變性，但閉環(huán)質(zhì)粒DNA鏈由于處于拓撲纏繞狀態(tài)而不能彼此分開。當條件恢復正常時（如加入酸性的NaAc或Kac中和堿性NaOH），質(zhì)粒DNA鏈迅速得到準確配對，重新恢復成天然的超螺旋分子。通過離心，可以使染色體DNA與變性蛋白質(zhì)

7、、RNA分子一起沉淀下來，而質(zhì)粒超螺旋分子仍滯留于上清中。3、質(zhì)粒DNA的提純對于小量制備的質(zhì)粒DNA，經(jīng)過苯酚抽提、RNA酶消化和酒精沉淀等簡單步驟除去殘余蛋白質(zhì)及RNA，達到純化的目的。質(zhì)粒DNA分子具有三種構(gòu)型：共價閉合環(huán)形DNA（cccDNA，SC構(gòu)型）、開環(huán)DNA（OC構(gòu)型）和線性分子（L構(gòu)型）。在細菌體內(nèi)，質(zhì)粒DNA是以負超螺旋構(gòu)型存在的。在瓊脂糖凝膠電泳中不同構(gòu)型的同一種質(zhì)粒DNA，盡管分子量相同，但具有不同的電泳遷移率。其中走在最前沿的是SC DNA，其后依次是L DNA和OC DNA。三、實驗材料、儀器及試劑1. 在含有pEGFPN3質(zhì)粒的DH5平板上菌落上挑取菌種，置于含有

8、5mL LB培養(yǎng)基的試管中。搖晃過夜。 在含有pET-28a質(zhì)粒的平板上挑取單菌落于另外一個試管中，同樣搖蕩培養(yǎng)過夜。2、使用儀器 恒溫培養(yǎng)箱，超凈臺，恒溫搖床，制冰機，臺式離心機，小型混合器，冰箱四、實驗步驟1. 取1.5ml DH5培養(yǎng)液倒入1.5mL eppendorf 管中, 13000rpm離心1min。2. 重復1。3. 棄上清,將管倒置于衛(wèi)生紙上數(shù)分鐘,使液體流盡。 4. 菌體沉淀重懸浮于100L溶液中(需劇烈振蕩),室溫下放置10min。 5. 加入新配制的溶液200l, 蓋緊管口，快速溫和顛倒eppendorf 管5次,以混勻內(nèi)容物(千萬不要振蕩),冰浴5min。 6. 加入

9、150L預冷的溶液,蓋緊管口，并倒置離心管，溫和振蕩3次,使沉淀混勻,冰浴中15分鐘,13000rpm離心5min。 7. 上清液移入干凈eppendorf 管中,加入等體積的氯仿/異戊醇(24：1),振蕩混勻, 13000rpm離心2min。 8. 將水相移入干凈eppendorf 管中,加入等體積的氯仿/異戊醇(24：1)振蕩混勻, 13000rpm離心2min。 9. 將水相移入干凈eppendorf 管中,加入2 倍體積的無水乙醇,振蕩混勻后，置于室溫下2min，然后13000rpm離心5min。 10. 棄上清,將管口敞開倒置于衛(wèi)生紙上使所有液體流出,加入1mL 70乙醇洗沉淀一次,

10、 振蕩混勻后，13000rpm離心5min。 11. 吸除上清液,將管倒置于衛(wèi)生紙上使液體流盡,室溫干燥。 12. 將沉淀溶于30L TE緩沖液(pH8.0，含20g/mL RNaseA)中，保存在-20冰箱中。 13. 按照同樣的流程和方法將pET-28a的質(zhì)粒也提出來，保存在-20冰箱中。五、實驗結(jié)果實驗二 質(zhì)粒DNA濃度的測定一、實驗目的學習利用核酸蛋白測定儀測算核酸的濃度和純度。二、基本原理核酸分子在260nm下有最大吸光值，因此可以通過260nm下核酸的吸光值計算核酸濃度（mg/ml），并通過測定與280nm和230nm的比值，估算DNA的純度。三、實驗材料與儀器1、實驗材料pEGF

11、PN3和pET-28a DNA2.使用儀器Eppendorf核酸蛋白測定儀，移液槍四、實驗步驟1. 按下Eppendorf核酸蛋白測定儀dsDNA，比色皿中加入100l ddH2O，blank空白對照。2. 取一0.5ml離心管，吸取質(zhì)粒DNA 5l，然后再加入95l ddH2O，混勻。3. 將100l的溶液轉(zhuǎn)移到比色皿中，注意不要出現(xiàn)氣泡。4. 按下sample，記錄260nm下DNA的濃度（mg/ml）。并同時記錄OD260nm/280nm，OD260nm/230nm的比值，估測DNA的純度。5. 計算質(zhì)粒DNA母液的濃度=OD260nm下的濃度×20（mg/ml），DNA的純度

12、：OD260nm/280nm=1.8±0.1(如果低于1.7，說明樣品中蛋白質(zhì)去除的不完全，或樣品中有苯酚的污染；如果高于1.9，說明樣品中RNA去除的不完全。) OD260nm/230nm 2.0實驗三 瓊脂糖凝膠電泳一、實驗目的學習掌握一種最常用的分離、鑒定、純化DNA片段的比較方便、省時的技術(shù)：瓊脂糖凝膠電泳的基本原理和操作方法。二、基本原理影響DNA在瓊脂糖凝膠中遷移速率的因素主要有：（1）DNA分子的大小 雙鏈DNA分子在凝膠基質(zhì)中遷移的速率與其堿基對數(shù)的常用對數(shù)成反比。分子越大，遷移的越慢，因為摩擦阻力越大，也因為大分子通過凝膠孔徑的效率低于較小的分子。（2）瓊脂糖濃度

13、給定大小的線狀DNA片段在不同濃度的瓊脂糖凝膠中遷移速率不同。在DNA電泳遷移速率的對數(shù)和凝膠濃度之間存在線性相關(guān)。（3）DNA的構(gòu)象 超螺旋環(huán)狀（型）、切口環(huán)狀（型）和線狀（型）DNA在瓊脂糖凝膠中以不同速率遷移。其相對遷移速率主要取決于瓊脂糖凝膠的濃度和類型，其次是電流強度、緩沖液離子強度和型超螺旋絞緊的程度或密度。一些條件下，型DNA比型遷移得快；在另一些條件下，順序可能相反。（4）所用的電壓 低電壓時，DNA片段遷移率與所用的電壓成正比。電場強度升高時，高分子量片段的遷移率遂不成比例的增加。所以，當電壓增大時瓊脂糖凝膠分離的有效范圍反而減小。要獲得大于2kb DNA片段的良好分辨率，所

14、用電壓不應(yīng)高于5-8V/cm。（5）電泳緩沖液 DNA的泳動受電泳緩沖液的組成和離子強度的影響。缺乏離子則電導率降低，DNA或者不動或者遷移很慢。高離子強度時（如10×buffer），電導率升高，使得應(yīng)用適中的電壓也會產(chǎn)生大量的熱能，最嚴重時凝膠會熔化，DNA變性。三、實驗材料、儀器及試劑1、實驗材料質(zhì)粒DNA2、使用儀器核酸電泳儀，小型混合器，冰箱，藍盾可見光透射儀四、實驗步驟1、 1%瓊脂糖凝膠的配制（1）加20ml 1×TBE緩沖液于三角瓶中，（2）精確稱取0.2g瓊脂糖加到三角瓶中，于微波爐中加熱至完全熔化，（3）冷卻至60左右，（4）輕緩倒入封好兩端和加上梳子的電

15、泳膠板中，靜置冷卻30分鐘以上，（5）將膠板除去封膠帶，放入電泳緩沖液（TBE）中，使電泳緩沖液剛好沒過凝膠約1mm，輕輕拔除梳子，（6）取5l質(zhì)粒DNA及2l GeneFinder混勻上樣（7）50-100v約電泳0.5-1小時（8）藍盾可見光透射儀觀察結(jié)果。五、實驗結(jié)果實驗四 酶切及連接1. 實驗目的學習使用限制型內(nèi)切酶進行DNA酶切的原理和方法。2. 實驗原理迄今已發(fā)現(xiàn)了3000多種限制性內(nèi)切酶。傳統(tǒng)上將限制性內(nèi)切酶按照亞基組成、酶切位置、識別位點、輔助因子等因素劃分為三大類。II型酶在其識別位點之中或臨近的確定位點特異地切開DNA鏈。它們產(chǎn)生確定的限制片段，因此是三類限制性內(nèi)切酶中唯一

16、用于DNA分析和克隆的一類。5-GAATTC-33-CTTAAG-5II型限制性內(nèi)切酶中最普遍的是象EcoR I、Hind III、BamHI和Not I這樣在識別序列中進行切割的酶。這一類酶是構(gòu)成商業(yè)化酶的主要部分。大部分這類酶都以同二聚體的形式結(jié)合到DNA上，因而識別的是對稱序列；但有極少的酶作為單聚體結(jié)合到DNA上，識別非對稱序列。一些酶識別連續(xù)的序列（如EcoR I識別GAATTC；Hind III識別AAGCTT;BamHI識別GGATCC; Not I識別GCGGCCGC）；而另一些識別不連續(xù)的序列（如Bgl I識別GCCNNNNNGGC）。限制性內(nèi)切酶酶切DNA后形成兩種類型的末

17、端：(i)兩條鏈斷裂的位置是交錯地，產(chǎn)生粘性末端，如EcoR I酶切后產(chǎn)生末端；(ii)兩條鏈的斷裂位置處在一個對稱結(jié)構(gòu)5-GGCC-33-CCGG-5。的中心，產(chǎn)生平末端，如HaeIII酶切后產(chǎn)生 DNA連接酶能夠催化在兩條DNA鏈之間形成磷酸二酯鍵，這種酶需要在一條DNA鏈的3-末端具有一個游離的羥基（-OH），和在另一條DNA鏈的5-末端具有一個磷酸基團（-P）。ligase53533. 實驗材料、儀器及試劑3.1 實驗材料 pEGFPN3和pET-28a DNA3.2 儀器準備水浴鍋、移液器、電泳槽、電泳儀、振蕩器、制冰機、藍盾可見光透射儀、凝膠成像儀3.3 試劑BamH I(10U/

18、L) (TaKaRa公司); Not I(10U/L) (TaKaRa公司),T4 ligase4. 操作步驟4.1 酶切按如下雙酶切體系（30L）混合 ：反應(yīng)物（L）pEGFP-N3 pET-28a 質(zhì)粒 1818 BamH I 2 2 Not I 2 2 10×buffer K 3 3 0.1%BSA緩沖液 3 3 1. 離心10s，混勻。2. 37水浴酶切3-4h。3. 配制1.0%（M/V）普通瓊脂糖凝膠30ml。4. 適當放置冷卻，45左右倒于電泳膠板上，插好梳子。5. 待凝膠凝固好以后，撥下梳子。6. 酶切樣品中加入5µl溴酚藍-GeneFinder混合液混勻，

19、上樣。7. 1×TBE Buffer，80V(3-4V/cm)下電泳30min。8. 熒光激發(fā)器觀察質(zhì)粒DNA條帶的酶切情況，并照像。4.2 回收酶切產(chǎn)物（采用天為時代DNA回收試劑盒進行回收） 1) 配30mL 1進口瓊脂糖凝膠，盡量長一些（用粗梳子），對酶切產(chǎn)物進行電泳分離； 2) 將酶切產(chǎn)物全部加入加樣孔中 3) 跑膠，觀察結(jié)果，并且拍照。 4) 用干凈的刀片將需要的DNA條帶從凝膠上切下來，稱取重量。 5) 以0.1g凝膠對應(yīng)300L的體積加入PN。 6) 50水浴放置10min，期間不斷溫和上下翻動離心管至膠完全融解。 7) 將上一步得到的溶液加入到一個吸附柱中，吸附柱再放

20、入收集管，13000rpm離心60s，棄掉廢液。8) 加入800L漂洗液PW，13000rpm離心60s，棄掉廢液。9) 加入500L漂洗液PW，13000rpm離心60s，棄掉廢液。 10) 將離心吸附柱放回收集管，13000rpm離心2min。 11) 取出吸附柱，放入一個干凈的離心管中，在吸附膜的中間位置加入適量洗脫緩沖液EB 30L，洗脫緩沖液先在65水浴預熱，室溫放置2min，13000rpm離心1min，然后將離心的溶液重新加回離心吸附柱中，13000rpm離心1min。 12) 置于20保存。 4.3 連接按照連接體系進行，16連接過夜。 反應(yīng)物 體積/L 回收純化的pET-28

21、a質(zhì)粒 5gfp基因片段 12 T4連接酶 1 緩沖液（10×） 2 實驗五 大腸桿菌感受態(tài)細胞的制備及轉(zhuǎn)化一、實驗目的了解和掌握大腸桿菌感受態(tài)細胞的制備方法的原理和操作要點，以及質(zhì)粒DNA轉(zhuǎn)化大腸桿菌細胞的原理和方法。二、基本原理外源DNA只有轉(zhuǎn)化到大腸桿菌細胞內(nèi)才能得到擴增。感受態(tài)指細菌細胞具有的能夠接受外源DNA的一種特殊生理狀態(tài)。大腸桿菌的感受態(tài)可用CaCl2處理而誘導產(chǎn)生：將正在生長的大腸桿菌細胞在0下加入到低滲的CaCl2溶液中，便會使細胞膜的透性發(fā)生改變，此時的細胞即呈現(xiàn)為感受態(tài)。這一方法可以用于批量制備感受態(tài)細胞，其轉(zhuǎn)化效率可達到5×106-2×1

22、07個轉(zhuǎn)化克隆子/g超螺旋質(zhì)粒DNA。制備好的大腸桿菌感受態(tài)細胞可在-70凍存。在0下外源DNA可吸附到感受態(tài)細胞表面，短時間的熱刺激（42，90s）誘導細胞吸收DNA。 轉(zhuǎn)化了質(zhì)粒DNA的大腸桿菌隨后在培養(yǎng)基中37培養(yǎng)1hr，可使質(zhì)粒DNA中編碼抗生素抗性的基因得以表達，因此，轉(zhuǎn)化了質(zhì)粒DNA的大腸桿菌細胞可在含有相應(yīng)抗生素的培養(yǎng)基上生長，而沒有轉(zhuǎn)化的細胞則無法生長。三. 實驗材料、儀器1. 實驗材料DH5，BL21，pET-28a重組質(zhì)粒DNA2. 使用儀器水浴鍋，高壓滅菌鍋、移液器、超凈工作臺、離心機、振蕩培養(yǎng)箱，制冰機四、操作步驟1. LB（Luria-Bertain）液體和固體培養(yǎng)基

23、的配制（參考附錄）氨芐青霉素和卡那霉素等抗生素不抗熱，如果培養(yǎng)基溫度過高，容易導致抗生素失效，應(yīng)使培養(yǎng)基降溫至60左右后，再加入抗生素。但也不應(yīng)使培養(yǎng)基的溫度過低，否則容易出現(xiàn)氣泡。75mm直徑的培養(yǎng)皿約需15ml培養(yǎng)基。2感受態(tài)細胞的制備 (CaCl2法) （1） 挑一大腸桿菌單菌落放入3ml LB液體培養(yǎng)基（含Kan+），37培養(yǎng)過夜。（2） 活化大腸桿菌：取3ml新鮮的LB液體培養(yǎng)基加入50-150l的過夜菌，培養(yǎng)2-3個小時。（3） 將昨夜搖出來的DH5或BL21培養(yǎng)液轉(zhuǎn)入離心管中,冰上放置10min,然后于4下4000rpm離心5min。 （4） 棄去上清,用預冷的0.1mol/L

24、的CaCl2溶液600L輕輕懸浮細胞,冰上放置20min, 4下4000rpm離心5min。 （5） 棄去上清,加入300L預冷的0.1mol/L的CaCl2 溶液,輕輕懸浮細胞,冰上放置5min,即成感受態(tài)細胞懸液，可-80長期保存。3. 轉(zhuǎn)化涂板 （1）取2個無菌離心管，分別加入100L DH5感受態(tài)細胞懸液，第1管加5l無菌水，第2管加入質(zhì)粒DNA溶液5l,輕輕搖勻,冰上放置30min。（2）42水浴中熱激90s,熱激后迅速置于冰上冷卻5min。 （3）分別向管中加入100L LB液體培養(yǎng)基,混勻后在37振蕩培養(yǎng)30min。 （4）從管1中取50L涂布于含抗生素和不含抗生素的平板上,從管

25、2中取50L和100L涂布于含抗生素的平板上。正面向上放置約10分鐘,待菌液完全被培養(yǎng)基吸收后倒置培養(yǎng)皿,37培養(yǎng)20小時。Kan-Kan+Kan+Kan+管1 管1 管2 管250L 50L 50L 100L實驗六 重組質(zhì)粒DNA的鑒定（雙酶切法和菌落PCR法）一、實驗目的掌握雙酶切法鑒定重組質(zhì)粒DNA的基本原理和操作步驟，以及菌落PCR法鑒定重組質(zhì)粒DNA的基本原理。了解菌落PCR法鑒定菌落及保存的操作方法。二、基本原理重組質(zhì)粒DNA是利用限制性內(nèi)切酶（如BamH I和Not I）分別酶切基因片段和質(zhì)粒后，利用基因片段和質(zhì)粒DNA一端帶有相同的粘性末端連接起來的重組質(zhì)粒，如果再利用相同的限

26、制性內(nèi)切酶識別重組基因片段兩側(cè)的酶切位點，通過酶切下的重組片段的大小與連接的基因片段大小是否相同判斷質(zhì)粒DNA是否為重組質(zhì)粒。單菌落或提取的質(zhì)粒DNA也可以通過PCR方法鑒定正確克隆。聚合酶鏈式反應(yīng)（Polymerase Chain Reaction，簡稱PCR）是體外酶促合成特異DNA片段的一種方法。典型的PCR由高溫變性、低溫退火和適溫延伸等三步反應(yīng)組成一個循環(huán)周期，通過多次循環(huán)反應(yīng)，使目的DNA得以迅速擴增。其主要步驟是：將待擴增的DNA置于高溫下使之解鏈，人工合成的兩個寡核苷酸引物在低溫下分別在目的片段兩側(cè)與DNA兩條鏈互補結(jié)合；DNA聚合酶在72將單核苷酸從引物的3端開始摻入，沿模板

27、從53方向延伸，合成DNA的新互補鏈。具體地說，PCR反應(yīng)系統(tǒng)有寡核苷酸引物，反應(yīng)緩沖液，熱穩(wěn)定DNA聚合酶（Taq酶），脫氧核苷三磷酸底物和靶序列（即模板）等五部分組成，缺一不可。PCR技術(shù)能在試管中建立反應(yīng)，經(jīng)數(shù)小時之后，就能將極微量的某一特定的目的DNA片段擴增106倍以上，而無需經(jīng)過煩瑣的基因克隆程序便可獲得足夠數(shù)量的精確的DNA拷貝。它操作簡單，易于掌握，結(jié)果也較為可靠，為基因的分析和研究提供了一種強有力的手段，對整個生命科學的研究與發(fā)展都有深遠的影響。因此，PCR技術(shù)產(chǎn)生的時間雖不長，卻以驚人的速度廣泛地應(yīng)用于分子生物學的各個領(lǐng)域。它可用于基因的分離、克隆和核苷酸序列分析、突變體和

28、重組體的構(gòu)建、基因表達調(diào)控的研究、基因多態(tài)性的分析、遺傳病和傳染病的診斷、腫瘤機制的探索及法醫(yī)鑒定等諸多方面。三、實驗材料、儀器及試劑1. 實驗材料pET-28a重組質(zhì)粒DNA或菌落2. 使用儀器PCR儀，掌中寶離心機，冰箱，小型混合器，電泳槽和電泳儀，1.5ml離心管，移液器及吸頭，藍盾可見光透射儀，恒溫培養(yǎng)箱3. 試劑BamH I(10U/L) (TaKaRa公司); Not I(10U/L) (TaKaRa公司)四、實驗步驟1. 雙酶切法（1） 隨機挑取2個單菌落，接種，37振蕩培養(yǎng)過夜。（2） 質(zhì)粒DNA的提?。▔A裂解法）。（3） 雙酶切鑒定體系(10l)。反應(yīng)物(l) 管1 管2 質(zhì)

29、粒DNA 22 BamH I 0.5 0.5 Xho I 0.5 0.5 10×buffer K 1 1 ddH2O/l 6 6 （4） 室溫酶切2.5-3h。（5） 配制1.0%（M/V）普通瓊脂糖凝膠20ml。（6） 酶切樣品中加入5µl溴酚藍-GeneFinder混合液混勻，上樣。（7） 1×TBE Buffer，80V(3-4V/cm)下電泳30min。（8） 熒光激發(fā)器觀察質(zhì)粒DNA條帶的酶切情況，并照像。并確定最終的陽性克隆2. 菌落PCR法（1） 挑取菌落隨機挑取5個菌落。首先使用無菌槍頭挑取菌落，在已準備好的含有卡那抗菌素，分好區(qū)的固體培養(yǎng)基中輕劃

30、一下（為保菌種），然后將余下菌置于eppendorf管中（作為PCR反應(yīng)模板）。（2） PCR反應(yīng)體系（20l）反應(yīng)物 體積/ dNTP（10mM）2 左引物0.5 右引物0.5 Taq酶（5U/L）0.5 MgCl2(25mM)1.210×Buffer 2 ddH2O13.3 （3） PCR循環(huán)： 95 5min予變性（95 60s；58 60s；72 90s）30cycles 72 10min延伸（4） PCR產(chǎn)物的檢測PCR產(chǎn)物加入5l溴酚藍-GeneFinder混合液，分別按編號加入DNA瓊脂糖凝膠電泳的加樣孔，使用1%瓊脂糖電泳分離。（5） 用熒光激發(fā)器看結(jié)果，確定陽性克隆

31、的位置。五、實驗結(jié)果實驗七 GFP蛋白的誘導表達一、實驗目的掌握用IPTG誘導GFP基因表達的基本原理及基本操作步驟。二、實驗原理IPTG（異丙基硫代-L半乳糖苷）是一種常見的誘導基因表達的誘導劑，結(jié)構(gòu)類似乳糖。GFP基因連接到pET-28a的多克隆位點（MCS），GFP基因的表達受其上游T7啟動子和操縱基因O位點以及結(jié)合到這些順式作用元件的蛋白因子的控制。LacI基因編碼調(diào)節(jié)蛋白，可以四聚體的形式結(jié)合到操縱基因O位點上，關(guān)閉GFP基因的表達。IPTG可與四聚體調(diào)節(jié)蛋白結(jié)合，從而改變調(diào)節(jié)蛋白的構(gòu)象，使調(diào)節(jié)蛋白不再與O位點結(jié)合。接著BL21編碼的T7 RNA聚合酶結(jié)合到T7啟動子位點，從而啟動G

32、FP基因的表達。三、實驗材料和儀器1.實驗材料BL21，pET-28a重組質(zhì)粒DNA2.使用儀器離心機，冰箱，小型混合器，移液器，恒溫培養(yǎng)箱，手持式紫外燈，超凈工作臺。四、實驗步驟1. 取陽性克隆質(zhì)粒DNA轉(zhuǎn)化BL21；2. 在含有Kan的固體培養(yǎng)基上，37培養(yǎng)20h；3. 挑取單菌落，37振蕩培養(yǎng)過夜；4. 取4支無菌帶蓋試管，加入新鮮LB液體培養(yǎng)基（含有Kan）5ml，按1：20稀釋比例加入過夜菌，37培養(yǎng)至生長期,約2-3小時。5. 加入IPTG（1：1000）至終濃度1mmol/L，分別誘導0h，1h，2h，4h。 6. 分別取1.5ml，10000rpm離心5min，去除上清，收集沉

33、淀，再重復一次收集沉淀。7. 分別取IPTG誘導培養(yǎng)液20l涂布在含Kan的固體培養(yǎng)基上，37培養(yǎng)20小時。8. 觀察蛋白表達用紫外線照射菌體沉淀及培養(yǎng)平板，可以看到綠色熒光。分別對均勻涂布的平板以及表達蛋白的樣品管照相，保存照片。實驗八 兔肝RNA的制備及測定1. 實驗目的（1） 學習從兔肝中提取RNA的原理和方法。（2） 通過紫外吸收法測定RNA的含量。（3） 利用瓊脂糖凝膠電泳檢測RNA的完整性。2. 實驗原理細胞內(nèi)大部份RNA均與蛋白質(zhì)結(jié)合在一起，并且多以核蛋白的形式存在。因此，分離制備RNA時，首先遇到的是必須使RNA與蛋白解離，并除去蛋白質(zhì)。一般1克動物組織約含有1毫克RNA，植物

34、材料含量低些。其中大部分為rRNA（絕大部分約18S和28S），15% tRNA，只有1-5%左右為mRNA。動物組織中以肝臟器官RNA含量較為豐富。經(jīng)組織勻漿用苯酚處理并離心后RNA溶于上層被酚飽和的水相中，DNA和蛋白質(zhì)則留在酚層中，向水層中加入乙醇或異丙醇后，RNA即以白色絮狀沉淀析出。此法能較好的除去DNA和蛋白質(zhì)，且提取的的RNA具有生物活性。本實驗就是將兔肝組織，在酚與十二烷基肌酸鈉的存在下，RNA與蛋白質(zhì)分離使蛋白質(zhì)變性凝固。RNA溶解在水相中，用乙醇或異丙醇使RNA從水相中沉淀，達到分離。RNA分子是不穩(wěn)定的，極易被降解破壞。主要原因在于：一是由于RNA 2-OH的存在，RNA

35、分子可自發(fā)水解，特別在強堿性條件下很容易通過2-OH形成2，3磷酸二酯，而后進一步水解成2-核苷酸和3-核苷酸。二是源于核酸酶的廣泛存在與高穩(wěn)定性。RNA酶為極小的單肽鏈蛋白（約120aa），具有4個二硫鍵。100處理20分鐘不能滅活RNA酶，高壓滅菌的條件也不會使之變性。自然界中存在著大量污染的RNA酶，且細胞在破碎時細胞內(nèi)的核酸酶也會同時將細胞中放出的RNA破壞。由于RNase具有極強的穩(wěn)定性，所以在提取時盡量創(chuàng)造一個無RNA酶污染的環(huán)境。在有關(guān)RNA操作的實驗中需要注意以下問題：一、必須采取強烈的處理條件如強變性劑、有機溶劑或180高溫來抑制外源RNA酶的活性。這些強變性劑和有機溶劑包括

36、DEPC（焦碳酸二乙酯）、氯仿均可以使RNA酶失活。0.1%DEPC 37浸泡12小時能強烈地抑制RNA酶的活性，DEPC在高溫時分解為二氧化碳和乙醇，所以可以通過高壓滅菌將DEPC去除。玻璃器皿使用前必須于180烘烤8小時以上。塑料制品可用氯仿沖洗。二是對于內(nèi)源RNA酶的滅活可以通過向提取液中加入鹽酸胍、異硫氰酸胍或有機溶劑苯酚/氯仿等來解決。異硫氰酸根和胍離子都是很強的蛋白質(zhì)變性劑，使得RNase分子肽鍵伸展，失去有序的高級結(jié)構(gòu)，而失去活性。三、由于RNA極不穩(wěn)定性，通常需要在低溫下快速操作，盡量減少RNA的降解。四、操作時要保持空氣清潔，盡量減少空氣流動，如條件允許，可在超凈工作臺上進行

37、。五、實驗中RNA酶最主要的污染源是操作人員的手，因此在準備實驗材料和溶液及進行其它與RNA實驗有關(guān)的操作時，都應(yīng)戴一次性手套，接觸不干凈的玻璃器皿和物品以后，手套就可能沾染上RNA酶，因此要勤換手套。3. 實驗材料、儀器及試劑3.1 實驗材料 取新鮮兔肝臟組織0.2g，30min內(nèi)速冷凍保存于液氮或-70冰箱待用。3.2 儀器準備試劑瓶、組織勻漿器、移液器、離心機、電泳槽、電泳儀、振蕩器、制冰機、紫外分光光度計、烘箱、凝膠成像儀3.3 溶液的配制凡是水溶性液體均用1ml/L DEPC水配制。有2mol/L pH4.0乙酸鈉, 100g/LSLS(十二烷基肌氨酸鈉)，1mol/L Sodium

38、 Citrate(檸檬酸鈉)，CSB液( 42mmol/ L Sodium Citrate pH4.0 ,10g/L SLS ,0.2mmol/L-巰基乙醇)，變性液D(取CSB33ml,加25g 異硫氰酸胍充分溶解，4保存)，700ml/L 乙醇(用DEPC處理的水配制)，酸性飽和酚：250ml飽和重蒸酚68溶解，加入8-羥基喹啉至終濃度為1g/L 溶解混勻，此時溶液呈黃色，加入等體積50mmol/L pH4.0的乙酸鈉抽提，重復數(shù)次,直至上層水相pH大于3.8)。4. 操作步驟4.1 操作程序 取0.2g 組織，置入預冷的組織勻漿器中，在冰浴中勻漿，充分研碎組織。 加入變性液D 0.4ml

39、，冰上勻漿至液體粘稠，無小組織塊。 加入40l 2M NaAc pH4.0，混勻。 加入酸性飽和酚0.4ml，80l氯仿:異戊醇，渦旋20sec，呈現(xiàn)均勻的渾濁態(tài)，冰上放置15min。 將組織勻漿倒入處理過的1.5ml 的Ep管中，4離心，12000/rpm，5min。 取上層水相，加入等體積酚：氯仿：異戊醇（25：24：1）抽提1次。 再取上層水相，加入等體積氯仿、異戊醇（24：1）抽提1次。 4離心，取上層水相，加等體積預冷異丙醇，-20放置20min30min。 4離心，收集沉淀，70%乙醇洗滌3次，室溫干澡20min。 用20l DEPC處理過的水溶解沉淀，取少量鑒定。4.2 RNA質(zhì)量的鑒定RNA產(chǎn)率和純度的鑒定：用紫外分光光度計分別測波長230nm、260nm、280nm的OD值，按RNA 的濃度(g/L) = OD260×核酸稀釋倍數(shù)×40/1000，并計算OD260/OD230、OD260/OD280的比值以估測RNA的純度。4.3 RNA完整性的鑒定 1) 配制1.5%（M/V）普通瓊脂糖凝膠