蛋白質(zhì)含量測定法(共11頁)

1、 PAGE PAGE 2實驗(shyn)一 蛋白質(zhì)含量測定法實驗(shyn)目的掌握(zhngw)考馬斯亮藍法（Bradford法）測定蛋白質(zhì)含量的方法掌握紫外吸收法測定蛋白質(zhì)含量的方法一考馬斯亮藍法（Bradford法）實驗原理器材與試劑器材722型和753型可見光分光光度計漩渦混合器試管16支試劑標準蛋白質(zhì)溶液，用牛血清清蛋白（BSA），配制成1.03mg/ml和0.103mg/ml?？捡R斯亮藍G-250染料試劑：稱100mg考馬斯亮藍，溶于50ml 95%的乙醇后，再加入120ml 85% 的磷酸，用水稀釋至1升。實驗方法標準方法取10支試管，分別編號后按 表1-1 劑量依次加入標準蛋白

2、（或未知蛋白）、去離子水和考馬斯亮藍染料。每支試管加完后，立即在漩渦混合器上混合。加完染料20min后，使用722分光光度計（靈敏度4），塑料比色皿，在595nm處測量吸光度A595。用標準蛋白濃度（mg/ml）為橫坐標，用A595為縱坐標，進行直線擬合，得到標準曲線。根據(jù)測得的未知樣品的A595，查表即可求得未知樣品的蛋白質(zhì)含量。微量法取10支試管，分別編號后按 表1-3 劑量依次加入稀釋的標準蛋白（或未知蛋白）、去離子水和考馬斯亮藍染料。其他步驟同上，不過使用753分光光度計（狹縫4）。SDS干擾實驗取5支試管，分別編號后按表1-5劑量依次加入標準蛋白、SDS、去離子水和考馬斯亮藍染料。每

3、支試管加完后，立即在漩渦混合器上混合。加完染料20min后，使用753分光光度計（狹縫4），塑料比色皿，在595nm處測量吸光度A595。 PAGE 14實驗(shyn)數(shù)據(jù)與結果分析標準方法(fngf)的數(shù)據(jù)和圖表1 考馬斯亮藍標準(biozhn)法實驗表格管號12345678910標準蛋白質(zhì)（1.03mg/ml）00.010.020.040.060.080.10未知蛋白質(zhì)（約0.5mg/ml）0.040.080.10蒸餾水0.10.090.080.060.040.0200.060.020考馬斯亮藍G-250試劑3.03.03.03.03.03.03.03.03.03.0對應的吸光度A595

4、0.2000.3110.3620.4830.6240.7520.8450.3870.5010.572根據(jù)表1，以A595為縱坐標，標準蛋白質(zhì)量/（g）為橫坐標，作圖1。圖1 考馬斯亮藍標準法根據(jù)線性擬合(n h)公式y(tǒng)=6.1884x+0.2287計算所測溶液的蛋白質(zhì)的含量分別是8號管0.637mg/ml，9號管0.5547 mg/ml，10號管0.550 mg/ml。因為8號管測出結果誤差(wch)太大，取9和10管的平均值，所以，未知溶液的蛋白質(zhì)含量為0.5524 mg/ml。微量法的數(shù)據(jù)(shj)和圖表2 考馬斯亮藍微量法實驗表格管號12345678910標準蛋白質(zhì)（0.103mg/ml

5、）00.10.20.40.60.81.0未知蛋白質(zhì)（約0.5mg/ml）0.40.81.0蒸餾水1.00.90.80.60.40.200.60.20考馬斯亮藍G-250試劑3.03.03.03.03.03.03.03.03.03.0對應的吸光度A59500.0880.1840.2920.4110.5420.6310.1710.2890.362根據(jù)表2，以A595為縱坐標，標準蛋白質(zhì)量/（g）為橫坐標，作圖2。圖2 考馬斯亮藍微量法根據(jù)(gnj)線性擬合公式y(tǒng)=6.0579x+0.0305計算稀釋10倍后的未知溶液(rngy)的蛋白質(zhì)含量分別是8號管0.05798 mg/ml，9號管0.0533

6、4 mg/ml，10號管0.05472 mg/ml。取平均值再乘10倍，得未知溶液的蛋白質(zhì)含量為0.5534 mg/ml。SDS干擾(gnro)數(shù)據(jù)和圖表3 考馬斯亮藍SDS干擾實驗表格管號123456標準蛋白質(zhì)（1.03mg/ml）0.10.10.10.10.10.1SDS (1mg/ml)00.10.20.40.60.8蒸餾水0.90.80.70.50.30.1考馬斯亮藍G-250試劑3.03.03.03.03.03.0對應的吸光度A5950.4230.3360.2750.2000.2130.198根據(jù)表3，以A595為縱坐標，SDS濃度為橫坐標，作圖3。圖3 考馬斯亮藍SDS干擾實驗由上

7、圖可以看出，十二(sh r)烷基硫酸鈉(SDS)對考馬斯亮藍法測蛋白質(zhì)含量有干擾，同是0.103mg/ml的標準(biozhn)蛋白與3.0ml考馬斯亮藍，但隨著SDS濃度的增加，其混合液的595nm處的吸收峰逐漸降低(jingd)，而后有一小段回升，最后趨于漸近線。二紫外吸收法實驗原理280nm的光吸收法：蛋白質(zhì)分子中，酪氨酸、苯丙氨酸和色氨酸在280nm處有最大吸收。215nm與225nm的吸收差法：蛋白質(zhì)因為含量低而不能使用280nm的光吸收測定時，可用215nm與225nm吸收值之差，通過標準曲線法來測定蛋白質(zhì)稀溶液的濃度。肽鍵測定法：蛋白質(zhì)溶液在238處的光吸收強弱，與肽鍵的多少成正

8、比。可以測238nm處吸收值，通過標準曲線法來測定蛋白質(zhì)稀溶液的濃度。器材與試劑（一） 器材1SPECORD200分光光度計2漩渦混合器3試管12支（二） 試劑標準蛋白質(zhì)溶液，用牛血清清蛋白（BSA），配制成1.03mg/ml。 實驗數(shù)據(jù)與結果分析（一）紫外280nm吸收法數(shù)據(jù)和圖表4 紫外280nm光吸收法管號123456BSA (1.03mg/ml)體積01.02.03.04.05.0H2O5.04.03.02.01.00BSA濃度（mg/ml）00.2060.4120.6180.8241.03A28000.1580.2700.3790.5140.645根據(jù)表4，以A280為縱坐標，SBA

9、濃度為橫坐標，作圖4。圖4 紫外280nm光吸收法根據(jù)直線(zhxin)擬和方程y=0.6105x+0.0132求解(qi ji)當標準蛋白（牛血清清蛋白）與文獻(wnxin)值6.3比較接近。紫外215nm與225nm的吸收差法的數(shù)據(jù)和圖表5 紫外215nm與225nm的吸收差法管號123456未知BSA (1.03mg/ml)體積00.10.20.30.40.5H2O5.04.94.84.74.64.5BSA濃度(g/ml)020.641.261.882.4103A21500.2870.4590.7941.0901.4010.574A22500.1650.2640.4390.6210.80

10、30.286吸收差00.1220.1950.3550.4690.5980.288根據(jù)表5，以吸收差為縱坐標，蛋白質(zhì)濃度為橫坐標，作圖5。圖5 215nm與225nm吸收(xshu)差法把未知蛋白質(zhì)溶液(rngy)稀釋10倍后測得的吸收差0.288帶入上圖直線(zhxin)擬和方程y=0.0058x-0.0095得稀釋10倍后的蛋白質(zhì)濃度為51.83g/ml，則原未知濃度溶液的蛋白質(zhì)含量為0.518mg/ml。（三） 肽鍵測定法數(shù)據(jù)和圖表6 肽鍵吸收法管號123456未知BSA (1.03mg/ml)體積00.51.01.52.02.5H2O5.04.54.03.53.02.5BSA濃度 (g/

11、ml)0103206309412515A28000.1900.3010.5410.7350.9210.441根據(jù)表6，以A238為縱坐標，蛋白質(zhì)濃度為橫坐標，作圖4。圖6 肽鍵(ti jin)測定法把未知蛋白質(zhì)溶液(rngy)稀釋1倍后測得238nm的吸收值為0.441，帶入上圖直線(zhxin)擬和方程y=0.0018x-0.0125得稀釋1倍后的蛋白質(zhì)濃度為251.94g/ml，則原未知濃度溶液的蛋白質(zhì)含量為0.503mg/ml。結論： 考馬斯亮藍標準法測得未知溶液中蛋白質(zhì)含量為0.5524mg/ml, 用微量法測得未知溶液中蛋白質(zhì)含量為0.5534mg/ml，最終結果相差不大，但是標準法

12、所測的三個數(shù)據(jù)明顯比微量法測得數(shù)據(jù)標準偏差大，這說明微量法比標準法實驗穩(wěn)定性高，準確性高。 干擾考馬斯亮藍方法的物質(zhì)中，我們主要對SDS的干擾情況作了分析：總體上，當溶液中存在一定量的SDS后所測得的吸光度比正常值相對減小。但是隨著SDS濃度的增加，吸光度的減小量沒有呈現(xiàn)出很明顯的規(guī)律。從SDS與蛋白質(zhì)的作用機理來看，SDS可以斷開分子內(nèi)和分子間的氫鍵，破壞蛋白質(zhì)的二級和三級結構。SDS和蛋白質(zhì)結合后使蛋白質(zhì)-SDS復合物上帶有大量的負電荷，平均每兩個氨基酸結合一個SDS分子，這時各種蛋白質(zhì)分子本身的電荷完全被SDS掩蓋。由于SDS 的存在，阻礙了染料與堿性氨基酸和芳香族氨基酸的結合，使得吸光

13、度減小。由于SDS與染料分子對蛋白質(zhì)的競爭結合，使得顯色減弱，吸光度值降低，因此在曲線前段呈下降趨勢；但由于SDS破壞氫鍵，使得蛋白質(zhì)的空間結構更加伸展，一些原來包裹在結構中的堿性氨基酸和芳香族氨基酸暴露出來，所以會有少量的吸光度回升；但最終SDS與蛋白質(zhì)的結合達到所處溶液條件下的“飽和”時，過量的SDS就不起作用了，曲線是最后為平緩段。 要去除(q ch)SDS的干擾，可以利用它與K+結合生成沉淀的性質(zhì)(xngzh)將其去除。K+對考馬斯亮藍方法不產(chǎn)生(chnshng)干擾。 紫外280nm吸收法中，從文獻中查得牛血清清蛋白的。實驗得出相對誤差為：紫外吸收差法和肽鍵測定法所測的未知溶液蛋白含

14、量分別為0.518mg/ml 和0.503mg/ml，與考馬斯亮藍法的結果有差距，這與兩個方法用蛋白質(zhì)分子中不同的物質(zhì)的測量值近似代替蛋白質(zhì)含量有關?？捡R斯亮藍染料主要與蛋白質(zhì)中的堿性氨基酸（特別是精氨酸）和芳香族氨基酸殘基相結合，測吸收峰；而紫外吸收法是測酪氨酸、苯丙氨酸和色氨酸殘基的苯環(huán)含有的共軛雙鍵。 思考與討論1.用考馬斯亮藍法G-250測定蛋白質(zhì)含量有何特點，操作過程中應注意什么？答：Bradford 法的優(yōu)點是（1）靈敏度高，其最低蛋白質(zhì)檢測量可達1g。這是因為蛋白質(zhì)與染料結合后產(chǎn)生的顏色變化很大，蛋白質(zhì)-染料復合物有更高的消光系數(shù)，因而光吸收值隨蛋白質(zhì)濃度的變化很大。（2）測定快

15、速、簡便、只需要加一種試劑。完成一個樣品的測定，只需要5min左右，顏色在5min至20min之間穩(wěn)定性也很好。（3）干擾物質(zhì)相對其它方法少。缺點是（1）由于各種蛋白質(zhì)中的精氨酸和芳香族氨基酸的含量不同，因此Bradford法用于不同蛋白質(zhì)測定時有較大的偏差。（2）仍有些物質(zhì)干擾此法測定：去污劑、Triton X-100、十二烷基硫酸鈉（SDS）和0.1mol/L的NaOH。（3）標準曲線也有輕微的非線性。 操作注意事項：不可使用石英比色皿，可用塑料或者玻璃比色皿，使用后立即用少量95%的乙醇蕩洗，以洗去染色。塑料比色皿決不可以用乙醇或丙酮長時間浸泡。2.考馬斯亮藍G-250和R-250各有何

16、特點，在電泳染色方面有何異同？（詳見講義參考文獻12.）答：考馬斯亮藍G-250和R-250的結構式不同，配方不同，染色方法也適合于不同性質(zhì)的蛋白?？捡R斯亮藍R-250即三苯基甲烷（triphenylmethane）。每個分子含有兩個-SO3H，偏酸性，與蛋白質(zhì)的堿性集團結合。在一定pH時，染料蛋白復合物可以被完全解聚。與不同蛋白結合呈現(xiàn)基本相同的顏色，并且在比較寬的范圍內(nèi)(15-20g)，掃描峰的面積與蛋白量有線性關系。通常用先固定，再進行染色和脫色的方法?？捡R斯亮藍G-250即二甲花青亮藍（Xylene Cyanine Brillian Blue）其染色方法經(jīng)常是對蛋白質(zhì)同時進行固定和染色

17、。這種方法的特點是快而簡便，有時甚至不需脫色。但靈敏度略遜于R-250。同時考馬斯亮藍G-250對小肽染色效果很好。3.試述幾種(j zhn)主要干擾物質(zhì)對考馬斯亮藍G-250蛋白測定法測定結果的影響(yngxing)及其作用機理。答：SDS的存在會使相同條件下的吸光度值減小，其作用機理為：斷開分子內(nèi)和分子間的氫鍵，破壞蛋白質(zhì)的二級和三級結構。SDS和蛋白質(zhì)結合后使蛋白質(zhì)-SDS復合物上帶有大量的負電荷，平均每兩個氨基酸結合一個SDS分子，這時各種蛋白質(zhì)分子本身的電荷完全被SDS掩蓋。由于SDS與染料分子與蛋白質(zhì)的競爭結合，會使顯色減弱(jinru)，所以吸光度值減小。Tris，乙酸，2-巰基

18、乙醇，蔗糖，甘油，EDTA及微量的去污劑如TritonX-100，玻璃去污劑有少量顏色干擾，用適當?shù)木彌_液對照很容易除掉。4.試求紫外吸收法的靈敏度（即濃度每變化0.1mg/ml時相應吸光度值的變化量）。答：未知蛋白濃度c（mg/ml）與吸光度A280的關系如下：所以，靈敏度為：。同理，肽鍵測定法的靈敏度為：；吸收差法的靈敏度（）為：。5.解釋百分吸光系數(shù)，說明其在生化實驗中的應用，并試述為何不同蛋白質(zhì)的百分吸光系數(shù)會有很大差別？答：蛋白質(zhì)溶液濃度為，光徑為1cm，在波長下測得的吸光度值稱為這種蛋白質(zhì)的百分吸光系數(shù)（或比吸收系數(shù)）。記為：。在生化實驗中，可以只進行相同波長、相同光徑下樣品蛋白質(zhì)的吸光度測量，通過公式：，計算未知蛋白濃度。由于吸收紫外光是蛋白質(zhì)分子中共軛雙鍵的特性，而不同蛋白質(zhì)中所含有的酪氨酸、苯丙氨酸和色氨酸殘基的量不同（這些氨基酸中含有苯環(huán)，是共軛雙鍵的來源），所以，不同蛋白質(zhì)的百分吸光系數(shù)不同。6.說明各種蛋白質(zhì)含量測定法中哪幾種可以測出蛋白質(zhì)的絕對含量，哪幾種只能測定其相對含量，為什么？答