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文檔簡(jiǎn)介

1、免疫細(xì)胞研究 western blotWestern Blot 常見(jiàn)問(wèn)題及處理總結(jié)阿木1、western blot 的優(yōu)點(diǎn)答: 靈敏,可達(dá) ng級(jí),用 Ecl 顯色法理 論上可達(dá) pg 級(jí)。方便,特異性高。2、為什么我的細(xì)胞提取液中沒(méi)有目標(biāo)蛋白?答:原因有很多 : a) 你的細(xì)胞中不表達(dá)這 種蛋白質(zhì),換一種細(xì)胞; b) 你的細(xì)胞中的 蛋白質(zhì)被降解掉了,你必需加入 PMSF , 抑制蛋白酶活性; c) 你的抗體不能識(shí)別目 標(biāo)蛋白,多看看說(shuō)明,看是否有問(wèn)題。3、我的細(xì)胞提取液有的有沉淀,有的很清亮,為什么呢?答: a) 有沉淀可能因?yàn)槟愕牡鞍讻](méi)有變 性完全,可以適當(dāng)提高 SDS 濃度,同時(shí) 將樣品

2、煮沸時(shí)間延長(zhǎng), b) 也不排除你的 抗原濃度過(guò)高,這時(shí)再加入適量上樣緩沖 液即可。4、我做的蛋白質(zhì)分子量很小( 10KD ),請(qǐng)問(wèn)怎么做 WB ?答:可以選擇 0.2 m的l 膜,同時(shí)縮短轉(zhuǎn)移 時(shí)間。也可以將兩張膜疊在一起, 再轉(zhuǎn)移。其他按步驟即可。5、我的目的帶很弱,怎么加強(qiáng)?答:可以加大抗原上樣量。 這是最主要的。 同時(shí)也可以將一抗稀釋比例降低。6、膠片背景很臟,有什么解決方法?答:減少抗原上樣量,降低一抗?jié)舛龋淖円豢狗跤龝r(shí)間,提高牛奶濃度7、目標(biāo)帶是空白,周?chē)斜尘埃菫槭裁??答:你的一抗?jié)舛容^高,二抗上 HRP 催 化活力太強(qiáng),同時(shí)你的顯色底物處于一個(gè) 臨界點(diǎn),反應(yīng)時(shí)間不長(zhǎng),將周?chē)?/p>

3、物催化 完,形成了空白即 “反亮現(xiàn)象 ”。將一抗和 二抗?jié)舛冉档?,或更換新底物。、我的膠片是一片空白,是怎么回事?答:如果能夠排除下面的幾個(gè)問(wèn)題那么問(wèn)題多半出現(xiàn)在一抗和抗原制備上。a) 二抗的 HRP 活性太強(qiáng),將底物消耗光;b) ECM 底物中 H2O2 ,不穩(wěn)定,失活;c) ECL 底物沒(méi)覆蓋到相應(yīng)位置; d) 二抗失活。9、我在顯影液中顯影 1 分鐘和 5 分鐘后 ,底片漆黑一片 ,是什么原因呢 ?答:a) 可能是紅燈造成的 , 膠片本來(lái)就被 曝光了,可以在完全黑暗的情況下操作 . 看是否有改善 .;b) 顯影時(shí)間過(guò)長(zhǎng)。10、DAB 好還是 ECM 好?答:DAB 有毒,但是比較靈敏,是

4、 HRP 最敏感的底物; ECM 結(jié)果容易控制,但被催化時(shí)靈敏度差一點(diǎn),但如果達(dá)到閥值,就特別靈敏,可以檢測(cè) pg 級(jí)抗原。要看你實(shí)驗(yàn)的情況。11、抗原檢測(cè)出的分子量比資料上的大,是怎么回事?答: a)抗原形成了二聚體。增多巰基乙醇 量,煮沸變性時(shí)間延長(zhǎng), 可以打開(kāi)二聚體 b)蛋白本身的修飾如:糖基化,磷酸化等12、蛋白轉(zhuǎn)移不到膜上,但膠上有,同時(shí) Marker 轉(zhuǎn)上去了,為什么?答:可能是: a)樣品濃度過(guò)低; b)轉(zhuǎn)移時(shí)間不夠,。13、磷酸化抗體的檢測(cè)樣本制備時(shí)是否一 定要加 NaF 等?答: NaF 是一種廣譜磷酸化酶的抑制劑, 一般最好加。但是不加也可以,大部分時(shí) 候是不用加的。14、

5、要驗(yàn)證某個(gè)細(xì)胞上有無(wú)該蛋白的存在,需要做免疫組化和 western blot 試驗(yàn)嗎?做這兩個(gè)試驗(yàn)時(shí)的一抗和二抗可以共用嗎?答: 免疫組化可以用來(lái)進(jìn)行定位,但 是不能精確定量,而且有時(shí)會(huì)有假陽(yáng)性,不易與背景區(qū)分; Western blot 可以特異 性檢測(cè)某個(gè)蛋白質(zhì)分子,進(jìn)行定量,但是 不能定位。 兩種實(shí)驗(yàn)的一抗有時(shí)候不能通用,公司的產(chǎn)品說(shuō)明一般都會(huì)說(shuō)明可以進(jìn)行什么實(shí)驗(yàn),在免疫組化時(shí),是否適合石蠟切片或者冰凍切片。15、做 Western Blot 時(shí),提取蛋白后凍存(未加蛋白酶抑制劑) ,用的博士德的一抗,開(kāi)始還有點(diǎn)痕跡,現(xiàn)在越來(lái)越差,上樣量已加到 120g,換了個(gè) santa cloz 的

6、一抗仍不行。是什么原因?蛋白酶抑制劑單加 PMSF 行嗎?答:懷疑是樣品問(wèn)題,可能是: 1,樣品 不能反復(fù)凍融; 2,樣品未加蛋白酶抑制 劑。同時(shí),建議檢查 Western Blot 過(guò)程, 提高一抗?jié)舛?。?duì)于加蛋白酶抑制劑來(lái) 說(shuō),一般加 PMSF 就可以了, 最好能多加幾中種蛋白酶抑制劑16、細(xì)胞水平要做 western blot ,多少細(xì)胞提的蛋白夠做 western blot ?答:一般 5106 就足夠了17、同一樣品能同時(shí)提 RNA 又提蛋白么?這樣對(duì) western blot 有無(wú)影響?答:能,沒(méi)有問(wèn)題同一蛋白樣品能同時(shí)進(jìn)行兩種因子的Western Blot 檢測(cè)嗎?答:當(dāng)然可以,

7、有的甚至可以同時(shí)測(cè)幾十種樣品。19、如果目標(biāo)蛋白是膜蛋白或是胞漿蛋白,操作需要注意什么?答:如果是膜蛋白和胞漿蛋白,所用的去 垢劑要溫和得多,這時(shí)最好加上 NaF 去抑 制磷酸化酶的活性。20、我的樣品的蛋白含量很低,每微升不 到 1 微克,但是在轉(zhuǎn)膜時(shí)經(jīng)常會(huì)發(fā)現(xiàn)只有 一部分蛋白轉(zhuǎn)到了膜上,就是在轉(zhuǎn)膜后染 膠發(fā)現(xiàn)有的孔所有的蛋白條帶都在,只是 顏色變淡了,有什么辦法可以解決?答:你可以加大上樣量,沒(méi)有問(wèn)題,還有轉(zhuǎn)移時(shí)你可以用減少電流延長(zhǎng)時(shí)間,加20甲醇。21、想分離的蛋白是分子量 200kd 的, SDS電泳的分離膠濃度多大合 適?積層膠的濃度又該用多少?這么大 分子量的蛋白容易作 Weste

8、rn Blot 嗎?答:200kd 的蛋白不好做, 分離膠用 7,積層膠 3.5。22、如果上樣量超載,要用什么方法來(lái)增加上樣量?答:可以濃縮樣品,也可以根據(jù)你的目標(biāo) 分子量透析掉一部分小分子蛋白。一般 地,超載 30是不會(huì)有問(wèn)題的。 如果已經(jīng) 超了不少了,而且小分子量的也要,可以 考慮加大膠的厚度,可以試試 1.5mm 的。23、蛋白變性后可以存放多久?答:0,一兩年沒(méi)有問(wèn)題。最關(guān)鍵兩條:不要被蛋白酶水解掉;不要被細(xì)菌消化掉 (也是被酶水解了 )24、我所測(cè)定的蛋白分子量是 105KD ,按理說(shuō)分離膠應(yīng)當(dāng)采用 7.5% ,但資料卻要求分離膠和濃縮膠均采用 11的配方, 不知為何?答:上述提到

9、的兩種凝膠均可以使用,因 為 105KD 的蛋白在上述兩種膠的線性分 辨范圍內(nèi),但需注意條帶位置。25、二抗是生物素化的抗體,三抗是親和 素生物素體系,不知采用這樣的方案后, 封閉液是否要作調(diào)整,能否再用 5的脫 脂奶粉呢?好像有資料說(shuō)脫脂奶粉會(huì)影 響親和素生物素的生成,是嗎? 解答:不能使用脫脂奶粉,因?yàn)槊撝谭?中含生物素,用代替應(yīng)該好一點(diǎn)26、問(wèn)一般一次上樣的蛋白總量是多少,跟目的蛋白的表達(dá)量有關(guān)系嗎?答: Western Blot 一般上樣 30100 微克 不等,結(jié)果跟目的蛋白的豐度、上樣量、 一二抗的量和孵育時(shí)間都有關(guān)系,也與顯 色時(shí)間長(zhǎng)短有關(guān)。開(kāi)始摸條件時(shí),為了拿 到陽(yáng)性結(jié)果,各

10、個(gè)步驟都可以量多一點(diǎn)時(shí)間長(zhǎng)一點(diǎn),當(dāng)然背景也就出來(lái)了。要拿到 好的結(jié)果,如果抗體好的話比較容易,抗 體不好的話就需要反復(fù)地試了,當(dāng)然有的 不適合 Western Blot 的怎樣做也不行。27、做組織樣品的 western 的時(shí)候,怎樣處理樣品?答:必須進(jìn)行研磨、勻漿、超聲處理,蛋 白質(zhì)溶解度會(huì)更好,離心要充分,膜蛋白 需用更劇 烈的方法抽提,低豐度膜蛋白 可能還要分步抽提 (超速離心 )。還有一點(diǎn) 就是組織中的蛋白酶活性更強(qiáng),需要注意 抑制蛋白酶的活性(加入) 。28、問(wèn)大分子量蛋白200KD ,在做 western要注意什么呢?答:做 200kd 蛋白的 Western Blot 時(shí)要注 意

11、,分離膠最好選擇 7% 的;剝膠時(shí)要小 心;轉(zhuǎn)移時(shí)間需要相應(yīng)延長(zhǎng);要做分子量參照(否則出現(xiàn)雜帶不知道如何分析)29、有什么方法可以提高上樣量?答: a)可以濃縮樣品;增大上樣體積來(lái)增 大上樣量; b)用 5 倍的上樣緩沖液來(lái)稀釋30、蛋白的上樣量有沒(méi)有什么具體的要求?答:上樣量要根據(jù)實(shí)驗(yàn)的要求來(lái)定, 如果要求是定量和半定量的 Western Blot則上樣量要均等,如果只是要定性,則沒(méi)有太大的關(guān)系, 盡量多上就行了, 但是不要超載.31、一抗,二抗的比例是否重要?答:比較重要, 調(diào)整好一抗, 二抗的比例, 可以去掉部分非特異的本底。32、要做磷酸化某因子 Western Blot ,其 二抗有

12、何要求?答:對(duì)二抗無(wú)要求,要看你實(shí)驗(yàn)條件來(lái)選 擇,一般推薦用 HRP 標(biāo)記的二抗。33、免疫組化和 Western Blot 可以用同一種抗體嗎?答:免疫組化時(shí)抗體識(shí)別的是未經(jīng)變性處 理的抗原決定簇(又稱表位) ,有些表位 是線性的,而有的屬于構(gòu)象型;線性表位 不受蛋白變性的影響,天然蛋白和煮后的 蛋白都含有;構(gòu)象型表位由于受蛋白空間 結(jié)構(gòu)限制,煮后變性會(huì)消失。如果你所用 的抗體識(shí)別的是蛋白上連續(xù)的幾個(gè)氨基 酸,也就是線性表位,那么這種抗體可同 時(shí)用于免疫組化和 Western ,而如果抗體 識(shí)別構(gòu)象形表位,則只能用于免疫組化。34、Western Blot 中抗體的可以重復(fù)應(yīng)用嗎?答:抗體工

13、作溶液一般不主張儲(chǔ)存反復(fù)使 用,但是如抗體比較珍貴,可反復(fù)使用 2 3次。稀釋后應(yīng)在 23天內(nèi)使用, 4度 保存,避免反復(fù)凍融。35、在做 Western Blot 時(shí), PVDF 膜用甲醇浸泡的目的?答: PVDF 膜用甲醇泡的目的是為了活化 PVDF 膜上面的正電基團(tuán),使它更容易跟 帶負(fù)電的蛋白質(zhì)結(jié)合,做小分子的蛋白轉(zhuǎn) 移時(shí)多加甲醇也是這個(gè)目的。36、檢測(cè)同一抗體的磷酸化和非磷酸化的 抗原可以在同一張膜上嗎?答:可以。37、轉(zhuǎn)膜后經(jīng)麗春紅染色的條帶,為什么 大蛋白分子的一端的轉(zhuǎn)膜好象不是很好, 為什么? 答:這是正常的,大分子的蛋白轉(zhuǎn)移的慢,你延長(zhǎng)轉(zhuǎn)移時(shí)間和電流,大分子一端就會(huì)好的多,但是

14、小分子的就有可能會(huì)變淡。38、做 Western Blot 時(shí),同樣的抗體免疫組化能做出,而 Western Blot 卻不能? 答:這多半是抗體的問(wèn)題,要看抗體的說(shuō) 明,是否能做 Western Blot 和免疫組化39、如果是 68 轉(zhuǎn)印膜,要加多少一抗?答:一抗的稀釋度是有說(shuō)明的,根據(jù)你的 一抗看看就知道了,但是那么大的膜孵育 體積一般最少為 3 5ml 。40、上下槽緩沖液有何要求,怎樣才能達(dá)到最佳效果答:無(wú)特殊要求。但我們一般是上槽放新 鮮的緩沖液,下槽可以是重復(fù)使用過(guò)一兩 次的緩沖液41、跑電泳的時(shí)候配的膠總是 “縮”是什么 原因呢?是有的成分不對(duì)嗎?答:沒(méi)什么問(wèn)題,就是你膠里的水

15、分被蒸 發(fā)了。過(guò)夜時(shí)拿保鮮膜包起來(lái),在里面加 點(diǎn)水保持濕度就可以了;也可能母液(30%聚丙酰胺)有問(wèn)題,你可以重新配 制一份觀察;能夠替換的試劑,盡量換一 下,選用好的試劑。42、蛋白質(zhì)的分子量跨度很大,如要分離 小 21KD ,中至 66KD ,大至 170KD ,可 以一次做好嗎? 答:這么廣的分布不好轉(zhuǎn)移,一般建議:21kd 和 66kd 可以一起轉(zhuǎn), 12SDS, 濕轉(zhuǎn) 120mA , 45-60min就可以了, 可以根據(jù)你實(shí)驗(yàn)室的經(jīng)驗(yàn)調(diào)節(jié); 170kd 用 7%SDSPAGE,200mA90-120min。43、不能很好地將大分子量蛋白轉(zhuǎn)移到膜 上, 轉(zhuǎn)移效率低怎么樣解決?答:可以考

16、慮: 轉(zhuǎn)移緩沖液中加入 20%甲 醇(是指終濃度),因?yàn)榧状伎山档偷鞍?質(zhì)洗脫效率,但可增加蛋白質(zhì)和 NC 膜的 結(jié)合能力,甲醇可以防止凝膠變形,甲醇 對(duì)高分子量蛋白質(zhì)可延長(zhǎng)轉(zhuǎn)移時(shí)間;轉(zhuǎn)移 緩沖液加入終濃度 0.1%SDS,也是為了增 加轉(zhuǎn)移效率;用優(yōu)質(zhì)的轉(zhuǎn)移膜,或使用小 孔徑的 NC 膜( 0.2微米) .44、我用的是可視 marker ,但是電泳總 跑不全 8 條帶,請(qǐng)問(wèn)什么原因?怎樣改 善?膠用過(guò) 8,10,12,都是這樣marker 是新買(mǎi)的。答:一般來(lái)說(shuō),是小分子量 Marker 跑走 了,增加膠濃度或減少電泳時(shí)間試試看。當(dāng)然梯度膠也是不錯(cuò)的選擇。45、是否 Western Blo

17、t 實(shí)驗(yàn)半定量一定要加 ACTIN 內(nèi)參?答:對(duì)于發(fā)表文章的實(shí)驗(yàn)最好加內(nèi)參,實(shí)驗(yàn)嚴(yán)謹(jǐn)。46、核內(nèi)抗原 Western Blot 內(nèi)參選擇什么合適?答:可以選用組蛋白,組蛋白在細(xì)胞核中 的表達(dá)是很穩(wěn)定的,有很多都可以當(dāng)成內(nèi) 參,在網(wǎng)上查查就可以選出你要的內(nèi)參。47、做半定量 Western Blot ,內(nèi)參 -actin , GAPDH 哪個(gè)好?答:選用 beta-actin 就可以48、想問(wèn)一下細(xì)胞裂解液選擇蛋白酶抑制劑時(shí)有什么原則嗎?受不受組織來(lái)源的影響?胞膜和胞漿有區(qū)別嗎?答:一般來(lái)說(shuō)提取時(shí)加入廣譜的蛋白酶抑 制劑就可以了,操作時(shí)保持低溫。除非有 文獻(xiàn)特別指明用特殊的方法,一般來(lái)說(shuō)都 沒(méi)有

18、區(qū)別。49、轉(zhuǎn)膜后的脫脂奶粉封閉液是 5% 的TBST 脫脂奶粉 ”,其中 TBST 最后那個(gè) T是 Tween 嗎,濃度多大?答:是 Tween,配方如下 :Tris-BufferedSaline Tween-20 (TBST), NaClg,Trisbase:2.42g 加水00ml 溶解 , 加500-1000ul 的 Tween-20, 用 HCl 調(diào)節(jié)pH 至 7.4, 加水定容至 1L.50、封閉,一抗,二抗時(shí)的溫度有沒(méi)有什么規(guī)定呢,比如在室溫里做,或者要在 4度下?答:均可在室溫進(jìn)行,如果時(shí)間不夠,一抗孵育可以先在室溫進(jìn)行一個(gè)小時(shí),然后4 度過(guò)夜。51、請(qǐng)問(wèn)一下 PVDF 膜和硝酸膜結(jié)合蛋白的原理是什么?答:一般而言,硝酸纖維素膜是通過(guò)疏水作用來(lái)和蛋白質(zhì)相聯(lián),這樣的話,反復(fù)洗幾次后,蛋白容易掉下來(lái),結(jié)果較差。PVDF 膜主要通過(guò)它膜上的正電荷和蛋白 接合,同時(shí)也有疏水作用,但相對(duì)較弱。 這樣的話, PVDF 膜和蛋白接合較牢,不 易脫落,結(jié)果較好。52、怎樣

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