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內(nèi)容植物原生質(zhì)體分離,植物原生質(zhì)體培養(yǎng),植物細(xì)胞融合。要求了解原生質(zhì)分離、純化、活力測(cè)定及其影響因素,掌握植原生質(zhì)體培養(yǎng)的方法、步驟和影響因素;理解植物細(xì)胞融合的原理及方法。第七章原生質(zhì)體培養(yǎng)
植物細(xì)胞中除去細(xì)胞壁的裸露的有生活力的部分。除了沒(méi)有細(xì)胞壁外,具有細(xì)胞的一切特征。原生質(zhì)體包括▲細(xì)胞質(zhì)膜▲膜內(nèi)細(xì)胞質(zhì)▲其他具有生命活性的細(xì)胞器,如細(xì)胞核、線(xiàn)粒體和高爾基體等。原生質(zhì)體(protoplast)原生質(zhì)體培養(yǎng)意義是植物細(xì)胞工程的核心技術(shù)。
1.除去了細(xì)胞壁,為植物細(xì)胞之間的融合掃平了障礙,實(shí)現(xiàn)體細(xì)胞雜交,為制造新雜種開(kāi)辟了道路。
(克服遠(yuǎn)緣雜交不親和性)2.原生質(zhì)體是各種遺傳操作的理想受體,從而可以進(jìn)行品種的遺傳改良??蓴z入外源DNA,細(xì)胞器、細(xì)菌或病毒顆粒,為高等植物的遺傳飾變打下基礎(chǔ)。3.獲得細(xì)胞無(wú)性系和選育突變體的優(yōu)良起始材料。一、原生質(zhì)體的分離(一)材料來(lái)源植物的莖、葉、胚、子葉、下胚軸等器官組織以及愈傷組織和懸浮培養(yǎng)細(xì)胞均可作為原生質(zhì)體分離的材料。
目前較多采用葉片分離原生質(zhì)體,但分裂旺盛的、再分化能力強(qiáng)的愈傷組織或懸浮細(xì)胞系,尤其是胚性愈傷組織或胚性懸浮細(xì)胞系是最理想的原生質(zhì)體分離材料。
第一節(jié)原生質(zhì)體的分離與純化材料預(yù)處理意義▲提高原生質(zhì)體的分裂頻率;▲逐步提高植物材料的滲透壓,以適應(yīng)培養(yǎng)基中的高滲環(huán)境。方法◆暗處理豌豆枝條取下后,分離原生質(zhì)體前,先在黑暗中(一定濕度)放1-2d,提高原生質(zhì)體存活率高,并能繼續(xù)分裂;◆預(yù)培養(yǎng)羽衣甘藍(lán)先去葉下表皮,再在誘導(dǎo)愈傷組織的培養(yǎng)基中預(yù)培養(yǎng)7d,再去壁,原生質(zhì)體高度液泡化,葉綠體也解體;◆低溫處理龍膽試管苗的葉片只有用4℃低溫處理后,分離得到的原生質(zhì)體才能分裂。(在很多情況下材料不必經(jīng)過(guò)專(zhuān)門(mén)的預(yù)處理)1.
機(jī)械法Klercker于1892年最早進(jìn)行分離高等植物原生質(zhì)體的研究。其方法是把細(xì)胞置于一種高滲的糖溶液中,使細(xì)胞發(fā)生質(zhì)壁分離,原生質(zhì)體收縮成球形,然后用利刃切割,發(fā)生質(zhì)壁分離的細(xì)胞壁被切去后釋放出原生質(zhì)體。缺點(diǎn)◆原生質(zhì)體的產(chǎn)量低;◆方法繁瑣費(fèi)力;◆對(duì)分生細(xì)胞和其它液泡化程度不高的細(xì)胞不適用。未得到廣泛應(yīng)用。優(yōu)點(diǎn)
能夠排除外加酶對(duì)離體原生質(zhì)體的結(jié)構(gòu)和代謝活性的有害影響。(二)原生質(zhì)體分離方法2.
酶分離法1960年,Cocking首先利用纖維素酶處理番茄根尖,分離得到收率高、活力強(qiáng)、完整性好的原生質(zhì)體。1968年,纖維素酶和離析酶商品化生產(chǎn)后,大量進(jìn)行植物原生質(zhì)體的研究?,F(xiàn)在果膠酶處理→單細(xì)胞--纖維素酶處理→原生質(zhì)體分離原生質(zhì)體最有效方法。細(xì)胞壁的組成纖維素
半纖維素
果膠質(zhì)少量蛋白質(zhì)25-50%53%5%纖維素酶半纖維素酶果膠酶酶的種類(lèi)及特點(diǎn)◆
纖維素酶主要含有纖維素酶C,作用于天然的和結(jié)晶的纖維素,具有分解天然纖維素的作用,還含纖維素酶CX,作用于定形的纖維素,可分解短鏈纖維素,另含有纖維素二糖酶、木聚糖酶、萄聚糖酶、果膠酶、脂肪酶、磷脂酶、核酸酶、溶菌酶等,總體作用是降解纖維素,得到裸露的原生質(zhì)體。
◆半纖維素酶降解半纖維素為單糖或單糖衍生物?!?/p>
果膠酶使細(xì)胞間的果膠質(zhì)降解,把細(xì)胞從組織內(nèi)分離出來(lái)。此外,還有蝸牛酶(主要用于花粉母細(xì)胞和四分體細(xì)胞)等。原生質(zhì)體酶分離法◆兩步分離法用果膠酶離析植物組織,收集細(xì)胞;經(jīng)洗滌后用纖維素酶解離細(xì)胞壁,然后獲得原生質(zhì)體。日本產(chǎn)的Onozuka纖維素酶常和果膠酶結(jié)合使用?!粢徊椒蛛x法一定量的纖維素酶和果膠酶組成混合酶液,對(duì)材料進(jìn)行一次性處理。上海植物生理研究所生產(chǎn)的ZA3-867纖維酶是多種酶的復(fù)合物,含有纖維素酶,果膠酶,半纖維素酶等,分離細(xì)胞壁的效果較好。酶液的配制◆酶的配比和濃度果膠酶/纖維素酶純度高,但濃度不宜太高;木本植物加入半纖維素酶。如果溶液中的滲透壓和細(xì)胞內(nèi)的滲透壓不同,原生質(zhì)體有可能漲破或收縮,因此在酶液、洗液和培養(yǎng)液中滲透壓
應(yīng)大致和原生質(zhì)體內(nèi)的相同,或者比細(xì)胞內(nèi)滲透壓略大些。
較高水平的滲透劑可以阻止原生質(zhì)體的破裂和出芽,但同時(shí)也可能抑制原生質(zhì)體的分裂。①糖溶液系統(tǒng)包括甘露醇、山梨醇、蔗糖和葡萄糖等,濃度約在0.40-0.80mol/L??纱龠M(jìn)分離的原生質(zhì)體再生細(xì)胞壁并繼續(xù)分裂;②鹽溶液系統(tǒng)包括KCl、MgSO4和KH2PO4等。
此外,酶溶液里還可加入適量的葡聚糖硫酸鉀,提高原生質(zhì)體的穩(wěn)定性;使RNA酶不活化;并使離子穩(wěn)定?!魸B透穩(wěn)定劑◆pH酶溶液的pH值對(duì)原生質(zhì)體的產(chǎn)量和生活力影響很大。用菜豆葉片作培養(yǎng)材料時(shí)發(fā)現(xiàn)原始pH值為5.0時(shí),原生質(zhì)體產(chǎn)生得很快,但損壞較嚴(yán)重,并且培養(yǎng)后大量破裂。當(dāng)pH值提高到6.0時(shí),最初原生質(zhì)體卻產(chǎn)生少,但與pH值為5.0時(shí)處理同樣時(shí)間后相比,原生質(zhì)體數(shù)量顯著增加。原始pH值提高到7.0時(shí),生活的原生質(zhì)體數(shù)量進(jìn)一步增加,損傷的原生質(zhì)體也少得多。
分離葉肉原生質(zhì)體的完整流程表面滅菌的葉片①撕去下表皮酶溶液及滲壓穩(wěn)定劑(葉段漂浮其上)②抽真空、振蕩保溫8hr原生質(zhì)體沉于培養(yǎng)皿底吸掉酶液原生質(zhì)體懸浮于清洗液中
⑤離心2次,第2次離心前重新懸浮于高蔗糖清洗液中原生質(zhì)體(上層)⑥重新懸浮于培養(yǎng)基中取少量樣品用血球板計(jì)數(shù)以適當(dāng)?shù)闹舶迕芏戎匦聭腋∮谂囵B(yǎng)基中③④(一)原生質(zhì)體的純化1.
沉降法(過(guò)濾離心法)-應(yīng)用最廣利用比重原理,低速離心使原生質(zhì)體沉于底部。
過(guò)濾酶處理混合液,30-40μm微孔濾膜,
低速離心,150g以下,3-5min,棄上清,用液體培養(yǎng)基或甘露醇溶液懸浮洗滌,重復(fù)2-3次,
1-2ml液體培養(yǎng)基懸浮原生質(zhì)體,備用。優(yōu)點(diǎn):操作方便;損失少。缺點(diǎn):純度不高二、原生質(zhì)體的純化與活力測(cè)定2.
漂浮法利用比重大于原生質(zhì)體的高滲蔗糖溶液,離心后
原生質(zhì)體位于蔗糖溶液和原生質(zhì)體懸浮培養(yǎng)基的界面上,
殘?jiān)樾汲恋焦艿住?/p>
先加蔗糖溶液(20%左右),
酶處理混合液置于其上,
離心,150g,5min
用液體培養(yǎng)基或甘露醇溶液懸浮洗滌2-3次,1-2ml液體培養(yǎng)基懸浮原生質(zhì)體,備用。優(yōu)點(diǎn):純度高缺點(diǎn):收率低。3.
界面法采用2種或2種以上密度不同的溶液,離心后使完整的原生質(zhì)體處在兩液相的界面。最早Hughes(1978)兩液相下層:450mM/L蔗糖上層:450mM/L甘露醇Piwowarczyk(1978)改進(jìn)了上述方法兩液相下層:培養(yǎng)基,含500mM/L蔗糖中層:培養(yǎng)基,含140mM/L蔗糖,360mM/L山梨醇上層:含原生質(zhì)體酶液,含300mM/L山梨醇和100mM/LCaCl2現(xiàn)在用不同連續(xù)梯度Ficoll(聚蔗糖)溶液,上面為酶-原生質(zhì)體混合液,經(jīng)離心(150g,5min),不同比重的原生質(zhì)體漂浮在不同濃度梯度的界面上。優(yōu)點(diǎn):收獲的原生質(zhì)體大小均勻一致。缺點(diǎn):收率低。純化后的葉肉原生質(zhì)體(二)原生質(zhì)體活力的測(cè)定1.以胞質(zhì)環(huán)流作為進(jìn)行活躍代謝的指標(biāo),
但對(duì)在細(xì)胞周?chē)鷶y有大量葉綠體的葉肉細(xì)胞原生質(zhì)體來(lái)說(shuō),這種方法的作用不大;2.以氧的攝入量作指標(biāo),攝入量可通過(guò)一個(gè)能指示呼吸代謝強(qiáng)度的氧電極進(jìn)行測(cè)定。3.以光合活性作指標(biāo)。4.以完整的質(zhì)膜排斥伊凡藍(lán)的能力作指標(biāo)。5.以熒光素雙醋酸酯(FDA)的染色能力為指標(biāo)。一、供體植物的選擇
供體組織的生理狀態(tài)很重要。一般情況下,在可控光、溫、濕的環(huán)境條件下能得到重復(fù)的結(jié)果,
即在無(wú)菌條件下生長(zhǎng)的幼苗制備原生質(zhì)體較好。第二節(jié)原生質(zhì)體培養(yǎng)1.基本培養(yǎng)基
MS和B5,或其衍生的培養(yǎng)基。
CaCl2促進(jìn)細(xì)胞分裂。鈣可增強(qiáng)原生質(zhì)體穩(wěn)定性,提高分裂頻率,明顯改變細(xì)胞質(zhì)內(nèi)外的離子交換。
NH4NO3降低細(xì)胞分裂頻率。2.生長(zhǎng)調(diào)節(jié)物質(zhì)生長(zhǎng)素/細(xì)胞分裂素類(lèi)。針對(duì)不同的研究對(duì)象,培養(yǎng)基中生長(zhǎng)素和細(xì)胞分裂素的水平要做適當(dāng)調(diào)整。二、原生質(zhì)體培養(yǎng)基3.滲壓劑在沒(méi)有再生出一個(gè)堅(jiān)韌的細(xì)胞壁之前,原生質(zhì)必須有培養(yǎng)基滲透壓的保護(hù)。高滲溶液,培養(yǎng)時(shí)一般逐步過(guò)渡。通常的滲透劑是甘露醇和山梨醇。
MS+NAA2.0ppm+BA0.5ppm+3%蔗糖+9%甘露醇
4.pH:5.6-6.0培養(yǎng)基用醋酸纖維微孔濾膜過(guò)濾滅菌。新分離出來(lái)的原生質(zhì)體應(yīng)在散射光或黑暗中培養(yǎng)。
培養(yǎng)溫度一般在25-30℃下。三、培養(yǎng)條件
1.液體淺層培養(yǎng)
原生質(zhì)體懸浮在液體培養(yǎng)基(約2×105/ml密度)
—將原生質(zhì)體懸浮液移到直徑為6cm的培養(yǎng)皿中(2-3mm為宜)
—5-10天后開(kāi)始原生質(zhì)體分裂
優(yōu)點(diǎn)▲通氣好;▲原生質(zhì)體代謝物易擴(kuò)散,防止有害物質(zhì)積累過(guò)多造成毒害;▲轉(zhuǎn)移添加新鮮培養(yǎng)基方便,便于觀(guān)察和照相;▲操作簡(jiǎn)單;▲可微量培養(yǎng),細(xì)胞植板率高。缺點(diǎn):原生質(zhì)體沉淀,分布不均;細(xì)胞團(tuán)聚集多,難成單細(xì)胞株系。四、培養(yǎng)方法
原生質(zhì)體(密度為4×105/ml)與等量體積瓊脂糖培養(yǎng)基均勻混合
—置于6cm培養(yǎng)皿(2-3mm),
—暗培養(yǎng)
—5-7天原生質(zhì)體開(kāi)始分裂。
優(yōu)點(diǎn)
原生質(zhì)體分布均勻,利于分裂,容易獲得單胞株系;
可定位觀(guān)察。
缺點(diǎn)
原生質(zhì)體易受熱傷害,易破碎;
原生質(zhì)體始終處于高滲透壓脅迫下生長(zhǎng)發(fā)育緩慢,植板率低。
2.
固體/平板培養(yǎng)原生質(zhì)體采用平板培養(yǎng)方法包埋在培養(yǎng)皿底層;
上面再加入相同成分的液體培養(yǎng)基,
暗培養(yǎng)。
需更換新鮮液體培養(yǎng)基。
優(yōu)點(diǎn)
原生質(zhì)體分布均勻,有利于分裂,易獲單細(xì)胞株系;
能除去抑制分裂的有害物質(zhì),細(xì)胞植板率高。
缺點(diǎn)
原生質(zhì)體易受熱傷害,易破碎。
3.
(固、液)雙層培養(yǎng)五、低密度培養(yǎng)與細(xì)胞培養(yǎng)相似,原生質(zhì)體初始植板密度對(duì)植板效率有顯著的影響。原生質(zhì)體培養(yǎng)的一般密度為104-105。高密度下,個(gè)別原生質(zhì)體形成的細(xì)胞團(tuán)在相當(dāng)早時(shí)就交織在一起,如果原生質(zhì)體群體在遺傳上是異質(zhì)的,就會(huì)形成嵌合體組織。在體細(xì)胞雜交和誘發(fā)突變的研究中,最好能獲得個(gè)別細(xì)胞的無(wú)性系。需要低密度(100-500)原生質(zhì)體培養(yǎng)。1.
培養(yǎng)基KM8pKao&Michayluk(1975)Vicia
hajastana(一種蠶豆)單細(xì)胞再生出壁,并分裂形成愈傷;在苜蓿、豌豆和Vicia中培養(yǎng)中,低密度下(小于100)分裂的更快;培養(yǎng)馬鈴薯原生質(zhì)體及馬鈴薯/番茄原生質(zhì)體融合產(chǎn)物獲得成功。黑暗或近于黑暗(50lx)培養(yǎng)。2.培養(yǎng)方法1)飼養(yǎng)細(xì)胞層法
用X射線(xiàn)或紫外線(xiàn)照射細(xì)胞(106),抑制細(xì)胞分裂,但不破壞細(xì)胞代謝,
將其清洗,
植板在軟瓊脂培養(yǎng)基上,此平板稱(chēng)飼喂層,
然后將未照射處理的原生質(zhì)體鋪在飼喂層上。
特點(diǎn)
以一種植物細(xì)胞制成的平板,支持另一種植物原生質(zhì)體的生長(zhǎng)。
飼喂層沒(méi)有種的特異性。煙草原生質(zhì)體植板密度低于104時(shí),一般不能分裂,用此方法,植板密度可低至10-100。2種類(lèi)型的活躍代謝和正在分裂的原生質(zhì)體
混合在液體培養(yǎng)基中一起培養(yǎng)。
用于某些物種原生質(zhì)體或雜種細(xì)胞的培養(yǎng)。
條件
2個(gè)物種原生質(zhì)體間能發(fā)生有效的互饋;
其產(chǎn)生的愈傷組織形態(tài)上能彼此區(qū)分。2)共培養(yǎng)法3)Cuprak微滴法高國(guó)楠(1977)及Gleba(1978)設(shè)計(jì)特別培養(yǎng)皿培養(yǎng)單個(gè)原生質(zhì)體及其再生的細(xì)胞。兩室大的內(nèi)室:很多小穴,加入原生質(zhì)體懸浮液(0.25-0.5μl);小的外室:注入無(wú)菌水,保持培養(yǎng)皿內(nèi)濕度??蛇M(jìn)行單個(gè)原生質(zhì)體培養(yǎng)。六、細(xì)胞壁的形成培養(yǎng)2-4天,原生質(zhì)體失去其特有的球型外觀(guān),這是再生新壁的象征。研究認(rèn)為,旋花科植物原生質(zhì)體只有在外源供應(yīng)一種易于代謝的碳源(蔗糖)時(shí),細(xì)胞壁才能再生。培養(yǎng)基中若存在電解質(zhì)滲透壓調(diào)節(jié)劑時(shí)會(huì)抑制壁的再生。壁的形成與細(xì)胞分裂有直接關(guān)系,凡是不能再生壁的原生質(zhì)體就不能進(jìn)行正常的有絲分裂。愈傷組織形成后,轉(zhuǎn)入不含滲透壓調(diào)節(jié)劑的培養(yǎng)劑中,其培養(yǎng)及植株再生與一般組織培養(yǎng)方法相同。原生質(zhì)體培養(yǎng)的程序
一、原生質(zhì)體融合意義
原生質(zhì)體融合也稱(chēng)體細(xì)胞雜交,
即,分離下來(lái)的不同親本雜交的原生質(zhì)體,
在人工控制下互相融合成一體。
自然條件下,原生質(zhì)體自然融合頻率極低,
必須加以一定的方法誘導(dǎo),才能促進(jìn)原生質(zhì)體的融合。第三節(jié)原生質(zhì)體融合原生質(zhì)體融合◆打破了種間界限(生殖隔離),使基因交流擴(kuò)大范圍;◆克服有性雜交特別是遠(yuǎn)緣雜交的不親和性;◆擴(kuò)大了遺傳變異及種質(zhì)資源的范圍。原生質(zhì)體融合的意義甘薯原生質(zhì)體融合植株1.
化學(xué)法融合1)無(wú)機(jī)鹽誘導(dǎo)融合1909年,Kuster證實(shí),低滲NaNO3處理可誘導(dǎo)發(fā)生質(zhì)壁分離表皮細(xì)胞2個(gè)原生質(zhì)體融合。缺點(diǎn)異核體形成頻率不高,尤其是對(duì)于高度液泡化的葉肉原生質(zhì)體。二、原生質(zhì)體融合方法Carlson等(1972)獲得第一個(gè)體細(xì)胞雜種2)高pH-高鈣離子誘導(dǎo)融合Keller和Melcher(1973年)強(qiáng)堿性的高濃度鈣離子(pH,10.5;鈣離子,50mmol/L)37℃處理30min,兩個(gè)品系煙草葉肉原生質(zhì)體很容易融合。1977年,獲得煙草種間和種內(nèi)體細(xì)胞雜種。對(duì)矮牽牛效果也很好,但對(duì)有些物種,高pH可能有毒。高國(guó)楠等(1974)提出,現(xiàn)被廣泛采用。
滴150μl混合雙親的原生質(zhì)體懸浮液于載體玻片上,形成一層薄層;
吸取PEG融合誘導(dǎo)液(28-58%,分子量1500-6000)450μl,
使其逐漸與原生質(zhì)體接觸,促使原生質(zhì)體相粘連;
培養(yǎng)基進(jìn)行清洗。
高Ca2+-高pH溶液清洗,
可提高原生質(zhì)體融合頻率。3)聚乙二醇(PEG)誘導(dǎo)融合優(yōu)點(diǎn)
▲采用聚乙二醇作為融合劑時(shí),
異核體形成的頻率很高,可重復(fù)性很強(qiáng);
▲對(duì)大多數(shù)細(xì)胞類(lèi)型來(lái)說(shuō)毒性很低;洋蔥煙草將原生質(zhì)體懸浮液離心,去上清,用電擊液(10%甘露醇,0.1mmol/L醋酸鈣,0.5mmol/L醋酸鎂)懸浮,置于融合小室;
在電融合儀的交變電場(chǎng)作用下,原生質(zhì)體彼此靠近,緊密接觸,在兩極間排成串珠狀。給予瞬間的高強(qiáng)度電脈沖,質(zhì)膜發(fā)生可逆性電激穿,導(dǎo)致融合。電融合法的優(yōu)點(diǎn)(與化學(xué)融合法相比)▲簡(jiǎn)單、迅速、效率高;▲經(jīng)融合處理后沒(méi)有中毒反應(yīng);▲需要特殊設(shè)備,不常采用。2.
物理法融合(電融合技術(shù))德國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院培育枝頭上開(kāi)花、結(jié)出鮮紅的番茄,而地下塊莖卻是馬鈴薯。番茄馬鈴薯德國(guó)漢堡大學(xué)把牛肉細(xì)胞和番茄細(xì)胞融合成雜交種細(xì)胞,繁殖出一種雜交新品種。▲內(nèi)含牛肉動(dòng)物蛋白和番茄植物蛋白各半;▲蛋白質(zhì)總量為普通番茄的40倍;▲所結(jié)出的果實(shí)
兼有牛肉味和番茄味,營(yíng)養(yǎng)也較全面。牛肉番茄◆對(duì)稱(chēng)融合完整原生質(zhì)體融合,產(chǎn)生核-核、胞質(zhì)-胞質(zhì)重組的對(duì)稱(chēng)雜種。常因分裂不同步使一方的染色體全部或部分丟失?!舨粚?duì)稱(chēng)融合使一方的細(xì)胞核失活(胞質(zhì)體)或同時(shí)也使另一方的胞質(zhì)失活(核質(zhì)體),產(chǎn)生不對(duì)稱(chēng)雜種?!粑⒃|(zhì)體融合只有一條或幾條染色體的微核與原生質(zhì)體融合。原生質(zhì)體融合類(lèi)型◆胞壁再生比原生質(zhì)體培養(yǎng)稍滯后?!艉巳诤袭惡梭w、同核體及多核體的混合群體。異核體雙核分裂同步——子細(xì)胞含雙親的遺傳物質(zhì);
不同步——一方染色體丟失;◆細(xì)胞增殖有的在條件適合時(shí)繼續(xù)分裂形成細(xì)胞團(tuán)或愈傷組織;有的中途停止分裂、死亡。融合體的培養(yǎng)和發(fā)育經(jīng)過(guò)融合處理后的原生質(zhì)體群體內(nèi)包含未融合的2種親本原生質(zhì)體,同核體、異核體、各種其他核-質(zhì)組合。異核體是未來(lái)雜種的潛在來(lái)源,約占0.5-10%,但其在生長(zhǎng)和分化兩個(gè)方面均無(wú)競(jìng)爭(zhēng)優(yōu)勢(shì)可言,有效鑒定和選擇雜種細(xì)胞,是體細(xì)胞雜交成功的關(guān)鍵。三、雜種細(xì)胞的篩選與鑒定1.根據(jù)物理特性直觀(guān)選擇1)根據(jù)可見(jiàn)標(biāo)志選擇如根據(jù)親本原生質(zhì)體含有的色素,對(duì)融合產(chǎn)物進(jìn)行鑒定,在其可辨特征消失之前,將其從混合群體中分離出來(lái)單獨(dú)培養(yǎng)。主要用于非綠色原生質(zhì)體
與含有葉綠體的原生質(zhì)體的融合。用不同熒光染料標(biāo)記2種原生質(zhì)體,雜種存在2種熒光染料。在酶解時(shí),染料
0.5mg/L,加到酶混合液中。異硫氰酸熒光素(綠)堿性蕊香紅熒光素(紅)2)根據(jù)熒光標(biāo)記選擇用發(fā)不同熒光的熒光染料標(biāo)記3)低密度植板選擇把原生質(zhì)體以低密度植板在瓊脂培養(yǎng)基上,以便追蹤個(gè)別的雜種細(xì)胞及它們的后代。1)激素自主性互補(bǔ)選擇2個(gè)親本原生質(zhì)體生長(zhǎng),需要生長(zhǎng)激素,雜種自身能產(chǎn)生生長(zhǎng)激素。無(wú)激素培養(yǎng)基篩選。Carson篩選出粉藍(lán)煙草和
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