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文檔簡(jiǎn)介
1、SILAC定量技術(shù)方案一樣品制備1. 細(xì)胞培養(yǎng)和蛋白提取(1) . MEM培養(yǎng)基的準(zhǔn)備(配制400 mL) 制備氨基酸儲(chǔ)液:分別在 20mL L-Arginine缺陷型MEM 培養(yǎng)基 中配置 0.30mM(50%正常濃度)的 13C6 L-Arginine hydrochloride 和 13C6, 15N4 L-Arginine hydrochloride儲(chǔ)存液(均稱(chēng)取26 mg),待充分溶解后,分別用0.22pm的無(wú)菌濾器 過(guò)濾。 分別加入20mL除菌后的氨基酸儲(chǔ)液、10%的透析胎牛血清、1%的青鏈 霉素、2mM的L-Glutamine和2mM的丙酮酸鈉并用缺陷型 MEM培養(yǎng)基定容到 40
2、0 mL,貯存于 4C。每種完全培養(yǎng)基中的氨基酸濃度見(jiàn)表 4-1:表4-1 MEM培養(yǎng)基中輕、中、重 L-Arginine的濃度Cell li nesAmi no AcidsM. W.Culture MediaAmoun t(c oncen trati on)AL-Argi nine174.2RPMI 1640241.9 mg/L (1.15mM)B13C6 L-Argi nine216.7MEM65.0 mg/L (0.3mM)Cl3C6, 15N4 L-Argi nine220.7MEM65.0 mg/L (0.3mM)(2) .細(xì)胞培養(yǎng) 將A、B、C三種細(xì)胞復(fù)蘇后,分別接種于10cm培養(yǎng)
3、皿中,在 常規(guī)RPMI 1640培養(yǎng)基(添加10%的透析胎牛血清和 1%的青鏈霉素)中培養(yǎng) HL-7702,分別使用僅含有 13C6 L-Arginine hydrochloride 和 13C6, 15N4 L-Arginine hydrochloride的MEM培養(yǎng)基培養(yǎng)B和C,經(jīng)過(guò)5-6個(gè)細(xì)胞世代的培養(yǎng)后,將細(xì) 胞數(shù)量擴(kuò)增到107-108左右(5-6盤(pán))。(3) .蛋白提取用500卩全細(xì)胞裂解液(50 mM Tris,pH 7.4; 150mM NaCl; 1%Triton-100; 1mM AEBSF; 20 卩 l/ 卩 g apro;n20 p l/ 卩 g leupeptin)2
4、. 蛋白質(zhì)含量測(cè)定(1) .采用改進(jìn)的Bradford法,將BSA分別稀釋為從0-1.40mg/ml范圍內(nèi)若干濃度,待測(cè)樣品稀釋10倍、20倍,各取20丄加80pL0.12M HCI,輕輕混勻。(2) .各管再加入3.5ml過(guò)濾的稀釋4倍的dye reage nt輕輕混勻,靜置5min后 測(cè)A595值。(3) .取A595值對(duì)BSA標(biāo)準(zhǔn)濃度作標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn),再根據(jù)待測(cè)樣品的 A595值,從 BSA標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)中確定其濃度。(4) . 同位素標(biāo)記樣品與非標(biāo)記樣品按照蛋白含量 1:1 混合。3. SDS-PAGE分離和染色(1) . 電泳條件: 4%濃縮膠, 12%分離膠 ;(2) . 2 SDIS上樣緩沖
5、液的配制:2mL Tris-HCL buffer (0.5M, pH 6.8) ; 2 mL甘 油;1mL巰基乙醇;4mL10%SDS溶液;適量水補(bǔ)足體積至10mL,混勻即得。(3) .電泳條件:4%濃縮膠,12%分離膠,先恒流10mA,運(yùn)行時(shí)間0.5h,再 于20mA運(yùn)行至溴酚藍(lán)前沿到達(dá)分離膠底部。(4) . 膠體考馬斯亮藍(lán)染色方法如下:用 10%甲醇, 7%乙酸溶液固定 30min, 然后用膠體考馬斯亮藍(lán)溶液 (0.12%G-250, 10%硫酸銨, 10%磷酸, 20%甲醇)染 色過(guò)夜,用蒸餾水或 10%甲醇水溶液脫色,清洗膠數(shù)遍即可獲得背景清晰的染色 效果。4. 膠內(nèi)酶解、肽段提取(1
6、) .用干凈的解剖刀將膠按照從高分子量到低分子量全覆蓋切成3-4mm寬度的膠條,大約切成20個(gè)條帶左右。然后將每個(gè)膠條切成 1-2mm2大小的膠塊。(2) . 100此50%乙腈/25 mmol/L碳酸氫氨浸泡膠粒,超聲10 min,棄去溶液, 重復(fù) 1-2 次至膠粒的藍(lán)色褪盡。(3) .真空離心干燥至膠粒完全脫水,加入 10-1510ng/此的胰蛋白酶 (25mmol/L碳酸氫銨溶解),4C冰箱放置30-40min,吸走多余酶液或補(bǔ)充25mM 碳酸氫銨覆蓋膠粒, 37C 保溫 18-20小時(shí)。(4) . 80-100 d 5%TFA 40 C提取1h,期間超聲兩次,取出上清。80-100 d
7、2.5%TFA/50%ACN 30 C提取1h,期間超聲兩次,合并上清,離心干燥。二 質(zhì)譜分析與數(shù)據(jù)庫(kù)檢索1. LC-LTQ-FT 分析1) .毛細(xì)管色譜系統(tǒng)在AgillentllOO系統(tǒng)上進(jìn)行,由自動(dòng)上樣器上樣,上樣體 積為30卩,1上樣流速為10卩l(xiāng)/min色譜洗脫在由二元泵系統(tǒng)上進(jìn)行,洗脫下來(lái)的組份經(jīng)過(guò)ESI離子源直接進(jìn)入質(zhì)譜,液相色譜條件為:流動(dòng)相 A : 0.1%FA-98%水 溶液;流動(dòng)相B: 0.1%FA-80%ACN溶液。洗脫條件:0-90min,流動(dòng)相比例由2%B 線(xiàn)性升至40%B; 90-105min,流動(dòng)相比例由40%B線(xiàn)性升至100%B;維持15 min 后,以100%
8、流動(dòng)相A平衡色譜柱30min。流動(dòng)相流速為300nL/min。2) . 質(zhì)譜儀為線(xiàn)性離子阱 -傅里葉變換離子回旋共振質(zhì)譜儀 (LTQ-FT , ThermoFinnigan),磁場(chǎng)強(qiáng)度為7特斯拉。霧化N2氣流速(sheath gas)12 L/min;碰撞氣為高 純氬氣;噴霧電壓(spray voltage)為3.2kV;毛細(xì)管溫度(capillary temperature)為 160C;毛細(xì)管電壓(capillary voltage)為2.8kV。分析柱為 PicoFritTM 反相柱 (BioBasic C18, 5 pm, 75 pm i.d. x 10cm, 15pm i.d.spr
9、ay tip, New Objective, Woburn, MA, USA) 。一級(jí)質(zhì)譜的數(shù)據(jù)依賴(lài)的二級(jí)質(zhì)譜掃描模式 (Data Dependent MS/MS Scan);依次選取一級(jí)質(zhì)譜中離子強(qiáng)度最強(qiáng)的 5個(gè)離子進(jìn)行CID二級(jí)串聯(lián)質(zhì)譜。采 用串聯(lián)質(zhì)譜掃描的動(dòng)態(tài)排除功能(dynamic exclusion),設(shè)置排除時(shí)間為3min。離 子自動(dòng)增益控制設(shè)置為:一級(jí)質(zhì)譜掃描為5X105個(gè)電荷,二級(jí)串聯(lián)質(zhì)譜為1X104個(gè)電荷。一級(jí)質(zhì)譜的在m/z為400處的分辨率為100000。離子傳輸毛細(xì)管溫度為 200C;從電噴霧電壓1.8KV。二級(jí)串聯(lián)質(zhì)譜母離子窗口為4Da,歸一化碰撞能量 為35%;質(zhì)譜的
10、一級(jí)全掃描質(zhì)荷比范圍是 4002000(Mass range, m/z 400-2000)。三數(shù)據(jù)庫(kù)檢索1. 應(yīng)用DTA supercharge將raw文件轉(zhuǎn)成 mgf文件(1) . DTAsupercharge軟件可以從網(wǎng)上下載,http:/ 網(wǎng)站定期 有版本更新。(2) .安裝前需要安裝 Xcalibur, Bioworks,不同版本的 DTAsupercharge對(duì) Xcalibur 的版本要求不同。安裝時(shí)若版本不符會(huì)有提示。安裝 Xcalibur 時(shí)要安裝 XDK 功 能,見(jiàn)下圖A. 還需要Microsoft .net Framework的支持(1.1或2.0,不同版本要求不同)B.
11、功能:把raw文件提出dta文件再合并成mgf文件。C. 界面如下:(3) .轉(zhuǎn)換單個(gè)raw文件:DTA processing標(biāo)簽下,選擇raw文件。然后點(diǎn)“ Con ver菜單下的 “Start Con version”(4) .批量轉(zhuǎn)換:把指定文件夾下所有的raw文件進(jìn)行轉(zhuǎn)換:automation菜單 下選擇 “set parameters for processing several raw file設(shè)定這些 raw 文件所在 的文件夾。然后點(diǎn) process raw files in folder”這樣會(huì)把指定文件夾下所有的raw文件轉(zhuǎn)換成dta和mgf文件。2. Mascot 搜庫(kù)使
12、用Mascot檢索合并好的 mgf文件。設(shè)置檢索參數(shù):(1) .所用數(shù)據(jù)庫(kù);(2) .可變修飾設(shè)置為半胱氨酸烷基化修飾(+57.0214Da),甲硫氨酸(Met)氧化(+15.99Da),13C6 L-Arginine 修飾(+6.02Da), 13C6,15N L-Arginine 修飾(+10.01Da)。 (即將SILAC同位素的修飾設(shè)置為可變修飾)(3) .最大胰酶漏切位點(diǎn)為1個(gè),一級(jí)母離子誤差20ppm,二級(jí)碎片離子誤差0.8Da。(4) .將搜庫(kù)的網(wǎng)頁(yè)結(jié)果以peptide summary的方式保存。(5) .這樣每個(gè)mgf文件就得到1個(gè)html格式的搜庫(kù)結(jié)果。四數(shù)據(jù)定量分析1. M
13、ascot檢索后的肽段定量分析是由 MSQua nt完成。2. 軟件在,網(wǎng)站定期更新,可下載最新版本。3. 軟件安裝與datasupercharge樣,需要在裝Xcalibur時(shí)安裝XDK功能,還需 要 Microsoft .net Framework 的支持。4. 軟件在使用時(shí),將raw文件與其相對(duì)應(yīng)的Mascot搜索結(jié)果html文件相關(guān)聯(lián)(associated)5. MSQua nt定量軟件的參數(shù)設(shè)置主界面示意圖如下:肽段Mascot打分卡值蛋白Mascot打分卡值SILAC標(biāo)記模式定量形式(一般用full scan定量)設(shè)置SILAC定量分析的參數(shù):主要是設(shè)置肽段 mascot打分卡值;SILAC定量 標(biāo)記同位素氨基酸模式;以及定量形式(定量形式一般米用full scan定量的 形式)。設(shè)置完定量參數(shù)后可以進(jìn)行定量分析了。6. 定量分析主界面如下:肽段定量結(jié)果txiCmx料帖* whig i id fw*rihiFife Ww保留時(shí)間及峰強(qiáng)度定量質(zhì)譜圖Frhfi rhtapK49rntDiv HRe r i| ?: w,m IE:I212311 rifiFftirMbjji.il? nMiI fin *1-1H W重構(gòu)色譜圖在定量軟件結(jié)果的基礎(chǔ)上需要作
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