常用的單克隆抗體檢測方法

1、精品文檔常用的單克隆抗體檢測方法通過雜交瘤技術制備單克隆抗體，在雜交瘤制備完成 后，需要對抗體進行一個檢測，本文介紹了幾種常用的抗體 檢測的方法（ 1）免疫酶技術免疫酶技術是將抗原抗體反應 的特異性和酶對底物顯色反應的高效催化作用有機結合而 成的免疫學技術。由于它特異性強，靈敏度高，現已廣泛用 于篩選和鑒定單抗。器材和試劑a、包被緩沖液：碳酸鹽緩沖液：取 0.2mol/L Na2CO3 8ml ， 0.2mol/L NaHCO3 17ml 混合，再加75ml蒸餾水，調PH至9.6°Tris-HCI緩沖液（PH8.0， 0.02mol/L）：取 O.1mol/L Tris 100ml，

2、O.1mol/L HCI 58.4ml 混 合，加蒸餾水至1000ml。b、洗滌緩沖液（PH7.2的PBS）:KH2PO4 0.2g , KCl 0.2g , Na2HPO4 12H2O 2.9g , NaCl 8.0g , Tween-20 0.5ml，加蒸餾水至1000ml。c、稀釋液和封閉液： 牛血清白蛋白（BSA） 0.1g，加洗滌液至100ml ;或用洗滌 液將小牛血清配成 5-10%使用。d、酶反應終止液（2mol/L H2SO4）:取蒸餾水 178.3ml，滴加濃硫酸（98%） 21.7ml。e、 底物緩沖液（PH5.0，磷酸鹽-檸檬酸緩沖液）：取0.2mol/L Na2HPO4

3、 25.7ml ,0.1ml/L 檸檬酸 24.3ml，再加 50ml 蒸餾水。 檸檬酸溶液及配成的底物緩沖液不穩(wěn)定，易形成沉淀，因此 一次不宜配制過多。f、底物使用液：OPD底物使用液（測490nm 的 0D 值）：OPD 5mg ,底物緩沖液 10ml , 3% H2O20.15ml 。 TMBS 或 TMB 底物使用液（測 450nm 的 OD 值）： TMBS 或 TMB（ 1mg/ml ）1.0ml ，底物緩沖液 10ml，1% H2O2 25ul o ABTS 底物使用液（測 410nm 的 OD 值）：ABTS 0.5mg , 底物緩沖液1ml, 3% H2O2 2ul o g、

4、抗體對照：以骨髓瘤細 胞培養(yǎng)上清作為陰性對照，以免疫鼠血清作為陽性血清。h、抗原： 可溶性抗原：盡量純化，以獲得高特異性。病毒感 染的傳代細胞或全菌抗原。淋巴細胞等懸液。i、酶標抗鼠抗體或酶標SPA或其他類似試劑。j、細胞固定液：-20 C丙酮； 或丙酮-甲醛固定液：Na2HPO4 100mg , KH2PO4 500mg，蒸 餾水150ml ,丙酮225ml,甲醛125ml;或丙酮-甲醛溶液（1;1）;或-20C甲醇。k、聚苯乙烯微孔板：40孔、96孔、或條 孔；硬板或軟板均可使用。I、酶聯免疫閱讀儀；或光鏡。 m、 吸管、加樣器及水浴箱、離心機等。可溶性抗原的酶聯免 疫吸附試驗（ELISA

5、 ） a、純化抗原用包被液稀釋至 1-20ug/ml。 b、以50-100ul/孔量加入酶標板孔中，置 4C過夜或37C吸 附2小時。c、棄去孔內的液體，同時用洗滌液洗3次，每次3-5分鐘，拍干。d、每孔加200ul封閉液4C過夜或37C封 閉2小時；該步驟對于一些抗原，可省略。e、洗滌液洗3次；此時包被板可-20C或4C保存?zhèn)溆谩、每孔加50-100ul 待檢雜交瘤細胞培養(yǎng)上清，同時設立陽性、陰性對照和空白 對照；37C孵育1-2小時；洗滌，拍干。g、加酶標第二抗體， 每孔50-100ul , 37C孵育1-2小時，洗滌，拍干。h、加底物液,每孔加新鮮配制的底物使用液50-100ul ,3

6、7C 10-30分鐘。i、以2mol/L H2SO4終止反應，在酶聯免疫閱讀儀上讀取0D值。j、結果判定：以P/N2.1，或PN+3D為陽性。若陰性對 照孔無色或接近無色，陽性對照孔明確顯色，則可直接用肉 眼觀察結果。全菌抗原的ELISASa、新鮮培養(yǎng)的細菌用蒸餾水或PBS懸浮，并調整細菌濃度至 1 X 108個/ml。必須指 出，對于人畜共患病病原體需注意安全操作，最好是滅活處 理。b、每孔中加100ul 5%戊二醛溶液（O.1mol/L NaHC03 95ml+25%戊二醛溶液5ml）, 37C作用2小時，蒸餾水洗滌 3次；加上述細菌懸液 50ul/孔；37-56 C烘干；每孔加 200u

7、l 封閉液4C過夜或37 C 2小時封閉。c、步驟b也可采用先 每孔加50ul細菌懸液，37C -56C烘干，然后用-20 C預冷的 無水甲醇室溫作用 15 分鐘，蒸餾水洗滌 3 次；每孔加 200ul 封閉液4C過夜或37 C 2小時封閉。d、洗滌液洗3次；此 時包被板可在-20C或4C保存?zhèn)溆?。e、以下步驟同上法。 用全細胞抗原的 ELISAa 、按常規(guī)方法培養(yǎng)細胞，接種病 毒，收獲感染細胞和未感染細胞，進行細胞計數，用 PBS 制 成適當濃度懸液。b、淋巴細胞懸液的制備采用新鮮外周血 加肝素抗凝后，滴加于淋巴細胞分離液之上， 1500rpm 離心 30 分鐘，吸取界面細胞洗滌二次，即為新

8、鮮淋巴細胞懸液。 該細胞懸液中若仍混有紅細胞，離心后加 0.83%的氯化銨溶 液，室溫 10 分鐘，洗滌一次即可。將該細胞懸液稀釋至適當濃度。c、每孔加100ul上述a或b的細胞懸液，使每孔含 細胞5X 104個；1500r/min 15分鐘，甩去上清；室溫干燥或 吹干后用丙酮-甲醇（1: 1） 4C固定10分鐘；可4C或-20 C 保存?zhèn)溆?。d、以下步驟同上法?？贵w捕捉ELISA試驗本法用抗 BALB/c 小鼠 Ig 的多克隆抗體捕捉待檢樣品中的McAb ，再依次加抗原、酶標多克隆抗體及底物顯色。該法是常用的ELISA中較理想的一種；其操作步驟如下：a、以適當濃度的純化抗鼠Ig抗體包被酶標板

9、，每孔加100ul, 37 C 2小時或4C過夜。b、洗滌、拍干后加待測的 McAb樣品， 37C 1-2小時。c、洗滌后加適量的抗原，37C 1-2小時。d、 洗滌后加入酶標多克隆抗體，37C 1-2小時。洗滌后加底物顯色，判定結果。ABC-ELISA試驗ABC-ELISA 是在常規(guī) ELISA 原理的基礎上，增加了生物素（ Biotin ）與親和素（Avidin ）間的放大作用。親和素有 4個亞單位組成，對生 物素有高度的親合力。 生物素很易與蛋白質共價結合。 因此， 結合了酶的親和素與結合有抗體的生物素發(fā)生反應即起到 了多極放大作用。其操作步驟如下：a、已知抗原的包被及加 待檢McAb樣

10、品，同間接ELISA試驗。b、加生物素化抗鼠 Ig抗體，每孔100ul, 37C 1小時；洗滌。c、加酶標親和素， 每孔100ul, 37C 30分鐘洗滌；加底物顯色，判定結果。 Dot-ELISA 試驗免疫斑點試驗（ Dot-ELISA ）是以硝酸纖維 素膜或醋酸纖維素膜為固相載體，進行抗原抗體反應的免疫檢測手段。該法采用不溶性底物（如 DAB ，或 4-氯萘酚或AgN03 等）,其與相應標記物（HRP、AP、膠體金）作用形 成不溶性產物，呈現斑點狀著色，從而易于判定結果。根據 所用的標記物不同，可分為 HRP 免疫斑點試驗、 AP 免疫斑 點試驗和免疫金銀斑點法等。其操作步驟大致如下：a、

11、將抗原液2-5ul點加于纖維素膜上， 室溫37C干燥。b、將纖維膜 浸入封閉液中，37C 30分鐘。c、用洗滌液洗2次，吸干后 加待檢McAb樣品，37 C 1小時；用洗滌液振蕩洗滌三次， 每次 5 分鐘，加 HRP 或 AP 或膠體金標記的抗鼠 Ig 抗體， 37C作用30分鐘。d、同法洗滌，吸干，用新配的相應底物 溶液顯色，然后水洗終止反應，觀察結果。免疫組化染色 法該法主要用于檢測針對細胞抗原成分的 McAb ，常用的方 法是間接免疫過氧化物酶試驗（ IIP ， indirect immunoperoxidase）及APAAP技術。其結果用光鏡或倒置顯 微鏡檢查。（ 2）免疫熒光技術免疫

12、熒光技術可用于多種抗原 的雜交瘤抗體檢測，如細胞性抗原（包括細菌和動物細胞） 、 感染細胞中的病毒抗原和膜抗原等。 其操作簡單、 敏感性高， 可直接觀察抗原定位等優(yōu)點，在 McAb 的篩選與鑒定上具有 重要的應用價值。器材和試劑a、供檢測抗體用的抗原制備固定細胞片或板， 活細胞懸液。 b、 PBS（ PH7.2， 0.01mol/L ） c、待檢的McAb樣品。d、冷丙酮e、FITC （異硫氰酸熒光 素）或 TRITC （四甲基異硫氰酸羅丹明熒光素）標記的抗鼠Ig抗體等f、熒光顯微鏡，磁力攪拌器，離心機，水浴箱等。間接免疫熒光法a、固定細胞片的制備：生長在蓋片上的 細胞（接種或未接種病毒） ，

13、可直接收獲蓋片，在 PBS 中洗 滌，用4C丙酮固定10分鐘，空氣干燥，置密封容器于-20C 保存?zhèn)溆茫?單細胞懸液可在蓋片上制成涂片， 固定方法同上。 細胞涂片的制備：將 10ul細菌懸液（1X 108個/ml）涂抹7 x 21mm蓋片上，自然干燥后，用-20 C丙酮固定10-15分鐘， 于-20 C保存?zhèn)溆?。b、蓋片在去離子水中濕潤后置架上滴加 10-20ul 雜交瘤上清或其他待檢樣品；設立陽性、陰性對照； 置37 C水浴孵育0.5-1小時。c、取出蓋片置PBS中用磁力 攪拌器洗滌15分鐘。d、蓋片置架上，滴加工作濃度的抗鼠 Ig的熒光抗體10-20ul , 37C孵育0.5-1小時。e、

14、同法洗滌 15分鐘；取出蓋片， 用延緩熒光碎滅的封載劑 （如緩沖甘油， 9份甘油加1份PBS）封于干凈載玻片上。f、光顯微鏡上觀 察，陽性結果可見特異性熒光（ FITC 為黃綠色熒光， TRITC 為桔紅色熒光）。g、細胞固定片的制備，也可改在培養(yǎng)板孔 中進行，其余步驟同上，在觀察結果時，將培養(yǎng)板翻轉置于 熒光顯微鏡下，判斷標準不變。細胞的膜熒光染色完整的 活細胞的細胞膜，抗體不能透過。如果細胞在4C操作，則熒光染色僅限于細胞膜。必須注意死細胞常以非特異性方式 吸附大量熒光抗體，因此試驗過程中要保證細胞的高活力?；罴毎哪晒馊旧笾虏襟E如下：a、制備活性較好的細胞懸液，調節(jié)濃度至 107個/

15、ml。b 在小試管（5X 50mm）中 加入 100ul 細胞懸液，再加入 100ul 待檢 McAb 的樣品，混 勻，4C作用30-90分鐘。c、用洗滌液（PBS 900ml，小牛血 清 50ml， 4%NaN3 50ml ）洗二次，每次加洗滌液 1-5ml， 1000r/min離心5分鐘，棄上清。加入 100ul熒光抗體，4C 作用30-90分鐘。d、同法洗滌，將細胞重新懸于20-30UI含10%甘油和 10-100ug 苯二胺 /ml 的溶液中； 滴加于載玻片上， 加蓋片封載。e、立即在熒光顯微鏡上檢查。f、細胞也可在染色后用 1 %多聚甲醛生理鹽水固定，立即檢查，或至少在 4C可保存一

16、周。（3 ）間接血凝試驗間接血凝試驗又稱被動 血凝試驗（PHA ）,是目前應用較廣的檢測方法之一。本試 驗是以包被可溶性抗原的紅細胞作為指示系統，當被檢抗體 與包被在紅細胞上的抗原產生特異性反應時，導致紅細胞呈 凝集現象?？梢?，該法具有靈敏、快速、容易操作和無需昂 貴儀器等優(yōu)點，而且經改用醛化紅細胞以后，克服原來重復 性差的缺點。器材和試劑a綿羊抗凝血，或人“ O”型抗凝血。b、緩沖液：PBS （ PH7.2）;醋酸緩沖液。c、甲醛， 丙酮醛，NaN3，抗凝劑等。d、血凝板，振蕩器等。多糖 抗原的間接血凝試驗 a、甲醛化綿羊紅細胞的制備：無菌采 集綿羊頸靜脈血 50ml ，用枸櫞酸鈉作抗凝劑；

17、 用 5倍于紅細 胞壓積的 PH7.2 PBS （Na2HPO4 12H2O 3.58g , KH2PO4 0.41g, NaCl 8.01g，蒸餾水1000ml ）充分洗滌 5次，每次1500r/min 5-10 分鐘，直至上清測定無蛋白質（用飽和硫酸 銨滴定上清， 觀察有無白色沉淀） ，再以相同緩沖液配成 25% 紅細胞懸液； 將 25%紅細胞懸液與 20%甲醛以 2.5：1 的比例 混勻，37C水浴作用2小時，每15分鐘振蕩一次，紅細胞 顏色逐漸由鮮紅色轉變?yōu)樽厣?；?PH7.2 PBS 洗滌 4 次，每 次 2000r/min 10 分鐘，再以同樣的 PBS 制成 25%紅細胞懸液；

18、其后，重復醛化一次，方法同前；最后配成20% 醛化綿羊紅細胞懸液，加甲醛至 0.3%防腐，4C保存?zhèn)溆?。b、脂多糖抗 原致敏甲醛化綿羊紅細胞的制備：取脂多糖（LPS），以0.2mol/L PH8.0 PB液，調整多糖濃度至 120ug/ml，然后100 C 水浴處理1小時；將冷卻至37C的熱處理LPS與6%醛化紅 細胞等量混合，37 C攪拌作用45分鐘；取出離心2000r/min 10 分鐘，以 0.01mol/L PH7.2 PBS 洗滌 4次；配制成 4%致敏血 球，分裝，保存于4C備用，或凍干保存。c、McAb的篩選： 取待測McAb樣品25ul,加入V型微量血凝板孔中，同時設 立陰性、陽性對照；再加入 0.5-4%致敏紅血球懸液 25ul，在 振蕩器上混勻30秒；置室溫或37 C 30-60分鐘觀察結果。 陰性對照孔應呈緊縮的圓點?？扇苄缘鞍卓乖拈g接血凝 試驗a、紅細胞醛化：采用雙醛法。采綿羊或人“O”型抗凝血，每次加 10 倍于紅細胞壓積的 PBS 洗滌 4-6 次，然后配 成 8%紅細胞懸液； 向此 8%紅細胞懸液緩慢加入等量含有3%丙酮醛和3%甲醛的PBS，于室溫緩慢攪拌17小時；其后洗 滌 3 次，配成 20% 雙醛化紅細胞懸液，加 0.1% NaN3 防腐， 4C保存?zhèn)溆?。b致敏紅細胞：取 20%雙醛化紅細胞0.1ml, 1