標(biāo)準(zhǔn)解讀

《GB 4789.2-2022 食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品微生物學(xué)檢驗(yàn) 菌落總數(shù)測定》相較于《GB 4789.2-2016 食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品微生物學(xué)檢驗(yàn) 菌落總數(shù)測定》,在內(nèi)容上進(jìn)行了部分調(diào)整和補(bǔ)充,主要變化包括:

  • 在術(shù)語定義方面,《GB 4789.2-2022》對(duì)“菌落”、“菌落形成單位(CFU)”等關(guān)鍵概念給出了更加明確的定義,有助于統(tǒng)一理解和應(yīng)用。
  • 對(duì)于樣品處理方法,《GB 4789.2-2022》增加了不同類型食品的具體預(yù)處理指導(dǎo),比如液體食品、固體食品以及半固態(tài)食品如何取樣與稀釋,使得操作更具針對(duì)性。
  • 新標(biāo)準(zhǔn)細(xì)化了培養(yǎng)基的選擇依據(jù),并且推薦使用經(jīng)過驗(yàn)證的商品化預(yù)制平板作為替代選項(xiàng)之一,這不僅提高了實(shí)驗(yàn)效率,也保證了結(jié)果的一致性。
  • 在計(jì)數(shù)規(guī)則上,《GB 4789.2-2022》明確了當(dāng)平板上的菌落數(shù)目過多或過少時(shí)應(yīng)采取的操作步驟,確保數(shù)據(jù)的有效性和準(zhǔn)確性。
  • 報(bào)告方式也有更新,《GB 4789.2-2022》規(guī)定了更為詳細(xì)的報(bào)告格式要求,包括但不限于樣品信息、檢測條件、結(jié)果表達(dá)形式等內(nèi)容,增強(qiáng)了報(bào)告的專業(yè)性和規(guī)范性。

這些調(diào)整旨在提高檢測過程中的標(biāo)準(zhǔn)化水平,增強(qiáng)不同實(shí)驗(yàn)室之間結(jié)果的可比性。


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  • 2022-06-30 頒布
  • 2022-12-30 實(shí)施
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文檔簡介

中 華 人 民 共 和 國 國 家 標(biāo) 準(zhǔn)

犌犅4789.2—202

食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)

食品微生物學(xué)檢驗(yàn) 菌落總數(shù)測定

2020630發(fā)布 2021230實(shí)施

發(fā)布

中華人民共和國國家衛(wèi)生健康委員會(huì)國 家 市 場 監(jiān) 督 管 理 總 局

犌犅4789.2—202

前 言

本標(biāo)準(zhǔn)代替GB4789.2—2016《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品微生物學(xué)檢驗(yàn) 菌落總數(shù)測定》。本標(biāo)準(zhǔn)與GB4789.2—2016相比,主要變化如下:

——增加了附錄B;

——修改了設(shè)備和材料;

——修改了培養(yǎng)基和試劑;

——修改了檢驗(yàn)程序;

——修改了操作步驟;

——修改了附錄A。

1范圍

食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)

食品微生物學(xué)檢驗(yàn) 菌落總數(shù)測定

本標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定了食品中菌落總數(shù)(Aerobicplatecount)的測定方法。本標(biāo)準(zhǔn)適用于食品中菌落總數(shù)的測定。

2術(shù)語和定義

2.1

菌落總數(shù)犪犲狉狅犫犻犮狆犾犪狋犲犮狅狌狀狋

食品檢樣經(jīng)過處理,在一定條件下(如培養(yǎng)基、培養(yǎng)溫度和培養(yǎng)時(shí)間等)培養(yǎng)后,所得每g(mL)檢樣中形成的微生物菌落總數(shù)。

3設(shè)備和材料

除微生物實(shí)驗(yàn)室常規(guī)滅菌及培養(yǎng)設(shè)備外,其他設(shè)備和材料如下:

a)恒溫培養(yǎng)箱:36℃±1℃,30℃±1℃。

b)冰箱:2℃~5℃。

c)恒溫裝置:48℃±2℃。d)天平:感量為0.1g。e)均質(zhì)器。

f)振蕩器。

g)無菌吸管:1mL(具0.01mL刻度)、10mL(具0.1mL刻度)或微量移液器及吸頭。

h)無菌錐形瓶:容量250mL、50mL。i)無菌培養(yǎng)皿:直徑90mm。

j)pH計(jì)或pH比色管或精密pH試紙。

k)放大鏡或/和菌落計(jì)數(shù)器。

4培養(yǎng)基和試劑

4.1平板計(jì)數(shù)瓊脂培養(yǎng)基:見A.1。

4.2菌落總數(shù)測試片:應(yīng)符合GB4789.28中平板計(jì)數(shù)瓊脂培養(yǎng)基質(zhì)量控制要求,且主要營養(yǎng)成分與平板計(jì)數(shù)瓊脂培養(yǎng)基配方一致。

4.3無菌磷酸鹽緩沖液:見A.2。

4.4無菌生理鹽水:見A.3。

5檢驗(yàn)程序

菌落總數(shù)的檢驗(yàn)程序見圖1。

圖1菌落總數(shù)的檢驗(yàn)程序

6操作步驟

6.1樣品的稀釋

6.1.1固體和半固體樣品:稱取25g樣品置于盛有25mL無菌磷酸鹽緩沖液或無菌生理鹽水的無菌均質(zhì)杯內(nèi),800r/min~1000r/min均質(zhì)1min~2min,或放入盛有25mL稀釋液的無菌均質(zhì)袋中,用拍擊式均質(zhì)器拍打1min~2min,制成1∶10的樣品勻液。

6.1.2液體樣品:以無菌吸管吸?。玻担恚虡悠分糜谑⒂校玻担恚虩o菌磷酸鹽緩沖液或無菌生理鹽水的無菌錐形瓶(瓶內(nèi)可預(yù)置適當(dāng)數(shù)量的無菌玻璃珠)中,充分混勻,或放入盛有25mL稀釋液的無菌均質(zhì)袋中,用拍擊式均質(zhì)器拍打1min~2min,制成1∶10的樣品勻液。當(dāng)結(jié)果要求為每g樣品中菌落總數(shù)時(shí),按6.1.1操作。

6.1.3用1mL無菌吸管或微量移液器吸?。薄茫保皹悠穭蛞海保恚蹋毓鼙诰徛⒂谑⒂校梗恚滔♂屢旱臒o菌試管中(注意吸管或吸頭尖端不要觸及稀釋液面),在振蕩器上振蕩混勻,制成1∶10的樣品勻液。

6.1.4按6.1.3操作,制備10倍系列稀釋樣品勻液。每遞增稀釋一次,換用1次1mL無菌吸管或吸頭。

6.1.5根據(jù)對(duì)樣品污染狀況的估計(jì),選擇1個(gè)~3個(gè)適宜稀釋度的樣品勻液(液體樣品可包括原液),吸?。保恚虡悠穭蛞河跓o菌培養(yǎng)皿內(nèi),每個(gè)稀釋度做兩個(gè)培養(yǎng)皿。同時(shí),分別吸?。保恚炭瞻紫♂屢杭尤雰蓚€(gè)無菌培養(yǎng)皿內(nèi)作空白對(duì)照。

6.1.6及時(shí)將15mL~20mL冷卻至46℃~50℃的平板計(jì)數(shù)瓊脂培養(yǎng)基(可放置于48℃±2℃恒溫裝置中保溫)傾注培養(yǎng)皿,并轉(zhuǎn)動(dòng)培養(yǎng)皿使其混合均勻。

6.2培養(yǎng)

6.2.1水平放置待瓊脂凝固后,將平板翻轉(zhuǎn),36℃±1℃培養(yǎng)48h±2h。水產(chǎn)品30℃±1℃培養(yǎng)72h±3h。如果樣品中可能含有在瓊脂培養(yǎng)基表面蔓延生長的菌落,可在凝固后的瓊脂培養(yǎng)基表面覆蓋一薄層平板計(jì)數(shù)瓊脂培養(yǎng)基(約4mL),凝固后翻轉(zhuǎn)平板,進(jìn)行培養(yǎng)。

6.2.2如使用菌落總數(shù)測試片,應(yīng)按照測試片所提供的相關(guān)技術(shù)規(guī)程操作。

6.3菌落計(jì)數(shù)

6.3.1可用肉眼觀察,必要時(shí)用放大鏡或菌落計(jì)數(shù)器,記錄稀釋倍數(shù)和相應(yīng)的菌落數(shù)量。菌落計(jì)數(shù)以菌落形成單位(colonyformingunit,CFU)表示。

6.3.2選取菌落數(shù)在30CFU~30CFU之間、無蔓延菌落生長的平板計(jì)數(shù)菌落總數(shù)。低于30CFU的平板記錄具體菌落數(shù),大于30CFU的可記錄為多不可計(jì)。

6.3.3其中一個(gè)平板有較大片狀菌落生長時(shí),則不宜采用,而應(yīng)以無較大片狀菌落生長的平板作為該

稀釋度的菌落數(shù);若片狀菌落不到平板的一半,而其余一半中菌落分布又很均勻,可計(jì)算半個(gè)平板后乘以2,代表一個(gè)平板菌落數(shù)。

6.3.4當(dāng)平板上出現(xiàn)菌落間無明顯界線的鏈狀生長時(shí),則將每條單鏈作為一個(gè)菌落計(jì)數(shù)。

7結(jié)果與報(bào)告

7.1菌落總數(shù)的計(jì)算方法

7.1.1若只有一個(gè)稀釋度平板上的菌落數(shù)在適宜計(jì)數(shù)范圍內(nèi),計(jì)算兩個(gè)平板菌落數(shù)的平均值,再將平均值乘以相應(yīng)稀釋倍數(shù),作為每g(mL)樣品中菌落總數(shù)結(jié)果,示例見B.1。

7.1.2若有兩個(gè)連續(xù)稀釋度的平板菌落數(shù)在適宜計(jì)數(shù)范圍內(nèi)時(shí),按式(1)計(jì)算,示例見B.2。

犖=(狀

∑犆 )

…………(1)

式中:

犖 ——樣品中菌落數(shù);

1+0.1狀2犱

∑犆——平板(含適宜范圍菌落數(shù)的平板)菌落數(shù)之和;

狀1——第一稀釋度(低稀釋倍數(shù))平板個(gè)數(shù);狀2——第二稀釋度(高稀釋倍數(shù))平板個(gè)數(shù);犱——稀釋因子(第一稀釋度)。

7.1.3若所有稀釋度的平板上菌落數(shù)均大于30CFU,則對(duì)稀釋度最高的平板進(jìn)行計(jì)數(shù),其他平板可記錄為多不可計(jì),結(jié)果按平均菌落數(shù)乘以最高稀釋倍數(shù)計(jì)算,示例見B.3。

7.1.4若所有稀釋度的平板菌落數(shù)均小于30CFU,則應(yīng)按稀釋度最低的平均菌落數(shù)乘以稀釋倍數(shù)計(jì)算,示例見B.4。

7.1.5若所有稀釋度(包括液體樣品原液)平板均無菌落生長,則以小于1乘以最低稀釋倍數(shù)計(jì)算,示例見B.5。

7.1.6若所有稀釋度的平板菌落數(shù)均不在30CFU~30CFU之間,其中一部分小于30CFU或大于

30CFU時(shí),則以最接近30CFU或30CFU的平均菌落數(shù)乘以稀釋倍數(shù)計(jì)算,示例見B.6。

7.2菌落總數(shù)的報(bào)告

7.2.1菌落總數(shù)小于10CFU時(shí),按“四舍五入”原則修約,以整數(shù)報(bào)告。

7.2.2菌落總數(shù)大于或等于10CFU時(shí),第三位數(shù)字采用“四舍五入”原則修約后,采用兩位有效數(shù)字,后面用0代替位數(shù);也可用10的指數(shù)形式來表示,按“四舍五入”原則修約后,采用兩位有效數(shù)字。7.2.3若空白對(duì)照上有菌落生長,則此次檢驗(yàn)結(jié)果無效。

7.2.4稱重取樣以CFU/g為單位報(bào)告,體積取樣以CFU/mL為單位報(bào)告。

附 錄犃

培養(yǎng)基和試劑

犃.1平板計(jì)數(shù)瓊脂(狆犾犪狋犲犮狅狌狀狋犪犵犲狉,犘犆犃)培養(yǎng)基

犃.1.1成分

胰蛋白胨(主要營養(yǎng)成分) 5.0g

酵母浸膏(主要營養(yǎng)成分) 2.5g

葡萄糖(主要營養(yǎng)成分) 1.0g

瓊脂 15.0g

蒸餾水 100mL

犃.1.2制法

將上述成分加于蒸餾水中,煮沸溶解,調(diào)節(jié)pH至7.0±0.2。分裝于適宜容器,121℃高壓滅菌15min。

犃.2無菌磷酸鹽緩沖液

犃.2.1成分

磷酸二氫鉀(KH2PO4) 34.0g

蒸餾水 50mL

犃.2.2制法

貯存液:稱?。常矗埃绲牧姿岫溻浫苡冢担埃恚陶麴s水中,用大約175mL的1mol/L氫氧化鈉溶液調(diào)節(jié)pH至7.2,用蒸餾水稀釋至100mL后貯存于冰箱。

稀釋液:取貯存液1.25mL,用蒸餾水稀釋至100mL,分裝于適宜容器中,121℃高壓滅菌

15min。

犃.3無菌生理鹽水

犃.3.1成分

氯化鈉 8.5g

蒸餾水 100mL

犃.3.2制法

稱取8.5g氯化鈉溶于100mL蒸餾水中,121℃高壓滅菌15min。

附 錄犅

示 例

犅.1示例1

稀釋度

1∶10

1∶10

1∶100

計(jì)算結(jié)果

菌落數(shù)/CFU

多不可計(jì),多不可計(jì)

124,138

1,14

1310

上述數(shù)據(jù)按7.2.2數(shù)字修約后,表示為1300或1.3×104。

犅.2示例2

稀釋度

1∶10(第一稀釋度)

1∶100(第二稀釋度)

計(jì)算結(jié)果

菌落數(shù)/CFU

232,24

3,35

24727

上述數(shù)據(jù)按7.2.2數(shù)字修約后,表示為2500或2.5×104。

犅.3示例3

稀釋度

1∶10

1∶10

1∶100

計(jì)算結(jié)果

菌落數(shù)/CFU

多不可計(jì),多不可計(jì)

多不可計(jì),多不可計(jì)

42,420

43100

上述數(shù)據(jù)按7.2.2數(shù)字修約后,表示為43000或4.3×105。

犅.4示例4

稀釋度

1∶10

1∶10

1∶100

計(jì)算結(jié)果

菌落數(shù)/CFU

14,15

1,0

0,0

145

上述數(shù)據(jù)按7.

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