RNA干擾載體的構(gòu)建的實驗流程

RNA干擾載體的構(gòu)建的實驗流程RNA干擾載體主要用來研究基因表達調(diào)控,NA干擾技術(shù)已已被廣泛用于基因結(jié)構(gòu)功能研究和傳染性疾病及基因治療領(lǐng)域，進行RNA干擾實驗首先是構(gòu)建RNA干擾載體，本文以pRI系列載體為例論述了干擾載體的構(gòu)建的實驗流程。產(chǎn)品技術(shù)背景pRI系列載體是基于III類rna聚合酶啟動子：人類H1啟動子的專用于哺乳動物細胞RNA干擾的載體。H1啟動子在哺乳動物細胞內(nèi)合成類似siRNA分子的小分子RNA。由于H1啟動子有精確的轉(zhuǎn)錄起始位點和終止信號，H1啟動子轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物精確生成人工設(shè)計的shRNA，shRNA經(jīng)過RISC剪切后形成有2個U突出末端的成熟siRNA。由于H1啟動子對轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物長度的嚴(yán)格限制，基本上杜絕了非特異性干擾片段的產(chǎn)生，將載體轉(zhuǎn)染細胞后對其它基因的影響降到最低。pRI系列載體已經(jīng)成功用于多種哺乳動物細胞進行基因的RNA干擾。本系列中含有新霉素抗性基因的載體用于穩(wěn)定表達siRNA，可以在更長時間內(nèi)對基因表達抑制后的細胞功能和生理現(xiàn)象進行觀察和分析。插入寡核苷酸設(shè)計pRI系列載體的使用需要將人工設(shè)計的寡核苷酸片段插入pRI系列載體中特定的酶切位點之間，寡核苷酸片段中包含了針對目標(biāo)基因的mRNA設(shè)計的長度為19nt的干擾片段。合成時需要化學(xué)合成正向和反向兩條寡核苷酸。正、反向寡核苷酸退火后與載體連接，插入載體Xhol,Bglll位點之間，位于載體上H1啟動子下游正確的位置上。連接后的載體轉(zhuǎn)入哺乳動物細胞在H1啟動子作用下轉(zhuǎn)錄產(chǎn)生shRNA。選擇干擾序列在RNA干擾實驗中，RNA干擾序列的選擇會顯著影響RNA干擾效果。我們建議您按照以下幾點指導(dǎo)原則選擇RNA干擾序列：推薦長度為19nt,采用21nt序列也可以取得良好效果。RNA干擾序列中不包含大于3nt的連續(xù)相同堿基。RNA干擾序列的GC含量為低到中等水平（推薦GC含量在35%到50%之間）。不要將RNA干擾序列設(shè)計在已知的RNA-蛋白質(zhì)結(jié)合位置附近。確保RNA干擾序列與其它基因沒有較高的同源性。方向：在編碼mRNA的正義鏈上選擇RNA干擾序列。設(shè)計RNA干擾序列是RNAi實驗的關(guān)鍵。這里提供的設(shè)計原則可以為您設(shè)計RNA干擾序列提供幫助。但是，值得注意的是，遵循這些原則不能確保設(shè)計的RNA干擾序列對目標(biāo)基因有好的抑制效果。針對一個目標(biāo)基因，我們建議您至少設(shè)計3條干擾序列并且從中篩選出干擾效果好的序列。寡核苷酸設(shè)計。（1）設(shè)計正義寡核苷酸鏈（5'-3'方向）。a） 5'TCGACCCb） 19nt干擾序列正向序列（與目標(biāo)mRNA—致）。c） TTCAAGAGA（環(huán)狀結(jié)構(gòu)）。d）19nt干擾序列的反向互補序列。e）TTTTT。（2）設(shè)計反義寡核苷酸鏈（5'-3'方向）。a）去掉正義鏈寡核苷酸中5'TCGAb） 將步驟a）中得到的序列做反向互補。c） 在步驟b）中得到的序列的5'端加上堿基GATC。一個設(shè)計好的例子見下圖：實驗流程概述：以下為使用pRI載體的方法概述。將合成的正義和反義寡核苷酸鏈退火。用Bglll和Xhol雙酶切載體。將退火的寡核苷酸鏈與酶切后的線性載體連接。連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌。轉(zhuǎn)染細胞。觀測熒光表達（含有GFP的載體）或篩選穩(wěn)定表達細胞（含有抗性的載體）。檢測目標(biāo)基因蛋白或mRNA表達水平載體構(gòu)建對于實驗中的很多步驟，您可以使用您實驗室中常用的方法，或者您的實驗經(jīng)驗證實有效的方法。對于酶切、DNA純化以及轉(zhuǎn)化等步驟，您可以參照《分子克隆實驗指南》進行，也可以參照您購買的試劑盒中生產(chǎn)商提供的使用說明進行。步驟1：退火寡核苷酸鏈根據(jù)我們的經(jīng)驗，脫鹽純化的寡核苷酸足以滿足連接和克隆需要。但是不同供應(yīng)商提供的引物純度差別很大，如果您連接和克隆遇到困難，可以考慮換用PAGE純化或HPLC純化的引物，或者使用其他供應(yīng)商提供的引物。用水將寡核苷酸稀釋為100pM。按以下體系配制退火反應(yīng)體系：正義寡核苷酸（100pM）5pl反義寡核苷酸（100pM）5plNaCl100mMTris-ClpH7.450mM加水補足50pl將配制好的退火反應(yīng)緩沖液重復(fù)混合，短暫離心后放置PCR以上，運行以下程序：90°C4min，70C10min，55C10min，40C10min，25C10min。退火后的寡核苷酸可以立刻使用或者在-20C長期保存。步驟2：酶切載體用XhoI和BglII雙酶切2pg載體。酶切方法和體系參照您購買的內(nèi)切酶說明書或者按照您的實驗室習(xí)慣的方法進行。通常情況下用大約20-30單位的酶在大約3小時可以酶切完全。酶切后我們建議用瓊脂糖凝膠回收線性化載體。將回收后的載體體積稀釋為30pl。對線性化的載體進行去磷酸化處理是沒有必要的。充分酶切后的載體具有不匹配的末端，一般不會發(fā)生載體自連。步驟3：連接載體用水將退火后寡核苷酸稀釋100倍備用。按照以下體系配制連接反應(yīng)體系：T4DNA連接酶5U線性化載體 2pl稀釋后寡核苷酸2pl10X連接酶Buffer1pl加水補足10pl接連反應(yīng)條件和時間參照您購買的連接酶說明書進行。為了減少空載體自連，連接反應(yīng)完成后，在連接反應(yīng)體系中加入1plBglll,37°C反應(yīng)30min,切割連接上的空載體。（選做）步驟4：轉(zhuǎn)化大腸桿菌感受態(tài)用連接后產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌感受態(tài)細胞。市場上常見的大腸桿菌感受態(tài)細胞（例如Top10，DH5-a）均可以使用，您也可以按照分子克隆中的方法自己制備感受態(tài)細胞。轉(zhuǎn)化方法按照供應(yīng)商的說明書或者您實驗室中常用的方法進行。在氨芐抗性的瓊脂平板上37C培養(yǎng)轉(zhuǎn)化后細菌，大約14-16小時后，平板上出現(xiàn)單個細菌菌落。挑取多個菌落至氨芐抗性的培養(yǎng)基中培養(yǎng)后進行鑒定。鑒定方法可以采用PCR鑒定或酶切鑒定。PCR鑒定采用引物M13F（TGTAAAACGACGGCCAGT和M13R-48（AGCGGATAACAATTTCACACAGGA）進行鑒定，空載體擴增產(chǎn)物長度為308bp,陽性克隆擴增產(chǎn)物為361bp。酶切鑒定采用HindIII和EcoRI雙酶切。空載體酶切產(chǎn)物長度為235bp，陽性克隆酶切產(chǎn)物長度為288bp。鑒定正確的克隆可以用引物M13R-48測序驗證插入的寡核苷酸序列是否正確無誤。步驟5：轉(zhuǎn)染細胞pRI系列載體可用常用的轉(zhuǎn)染方法進行細胞轉(zhuǎn)染。包括：磷酸鈣轉(zhuǎn)染、脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染、電穿孔轉(zhuǎn)染等。您可以購買市售的商品化轉(zhuǎn)染試劑并且參照供應(yīng)商說明書進行細胞轉(zhuǎn)染實驗。步驟6：觀測GFP熒光和穩(wěn)定表達細胞系篩選如果細胞轉(zhuǎn)染成功，并且您使用了帶GFP的載體，根據(jù)細胞生長速度的不同，在轉(zhuǎn)染后3-5天能在熒光顯微鏡下觀察到細胞發(fā)出綠色熒光。請注意，綠色熒光蛋白的表達表明轉(zhuǎn)染細胞成功，不能說明RNA干擾實驗成功。如果您使用了帶有真核抗性標(biāo)簽如Neo-R的載體，這時您可以加入合適濃度的相應(yīng)藥物如G418進行穩(wěn)定表達細胞株的篩選。步驟7：檢測RNA干擾效率您可以在蛋白水平或mRNA水平檢測RNA干擾效率。一般情況下蛋白的表達變化與mRNA水平的表達變化一致，也有少數(shù)情況下mRNA表達水平變化不及蛋白表達下降明顯。為檢測蛋白表達情況，您可以使用Western-Blot。為檢測